академия НАУК СССР
ЗООЛОГИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ
В ПОМОЩЬ РАБОТАЮЩИМ ПО ЗООЛОГИИ
В ПОЛИ И В ЛАБОРАТОРИИ
4
И. А. РУБЦОВ
МЕТОДЫ ИЗУЧЕНИЯ МОШЕК
ИЗДАТЕЛЬСТВО АКАДЕМИИ ПАУК СССР
М О (! К В А
1 9 5 6	.1 Е II И II Г Р А Д
академия наук
СССР
ЗООЛОГИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ
В ПОМОЩЬ РАБОТАЮЩИМ ПО ЗООЛОГИИ
В ПОЛЕ И В ЛАБОРАТОРИИ
4
И. А. РУБЦОВ
МЕТОДЫ ИЗУЧЕНИЯ МОШЕК
ИЗДАТЕЛЬСТВО АКАДЕМИИ НАУК СССР
М о с к в а	1956 Ленинград
Главный редактор акад. Е. Н, Павловский
Редакционная коллегия: А. И. Иванов, О. Л. Примаковский.,
А. С. Мончадский, А, А. Стрелков
Редактор выпуска А. А. Штакелъберг
ГДЕ И КОГДА СОБИРАТЬ МОШЕК
Мошки развиваются в текучих водоемах и встречаются
всюду, где имеются текучие водоемы, от Гренландии и Огнен-
ной Земли до тропиков. Заселяются ими все типы текучих
водоемов: родники, ручьи, средние и крупные реки, арыки,
керизы, высокогорные потоки, начиная от границы их выхода
из-под ледников, на всех высотах, от береговой линии до 5000 м
над уровнем моря, временные, пересыхающие летом ручейки
в полупустынях и пустынях, мелиоративные канавы в боло-
тах, водопады и др. Нет текучего водоема, кроме эфемерных
дождевых потоков, в которых бы не развивались мошки. Ско-
рость течения потока не ограничивает возможностей заселения
его личинками; напротив, чем выше скорость течения воды,
тем обильнее в данной точке личинки и куколки. Мошки не
могут развиваться лишь в стоячей воде. Вместе с тем почти
все виды мошек крайне стенотопны, т. е. каждый вид разви-
вается лишь в немногих, свойственных ему биотопах
п не встречается в других рядом текущих и нередко внешне
сходных. Тем более различаются по видовому составу мошек
различные по характеру водоемы.
Календарь жизни, т. е. время появления и сроки развития
отдельных фаз — взрослого насекомого, яйца, личинки, куколки,
своеобразны у каждого вида. Большинство видов развивается
в течение года в одном поколении. Из 20—40 видов, развиваю-
щихся в водоемах любой местности, нападает для кровосо-
сания всего 1—2—3 вида, остальные же рассеиваются по
территории и обнаруживаются с трудом. Для успеха поисков
и сборов необходимо знакомство с календарем жизни мошек,
который закономерно меняется в различных зонах нашей
обширной страны.
Календарь жизни мошек для семейства в целом отличается
необычайным разнообразием. Личинок, яйца и куколок мошек
можно обнаружить в некоторых водоемах в течение всего
года. Взрослые насекомые на южных окраинах нашей страны
встречаются с марта и до ноября. Вместе с тем время появле-
ния и сроки развития отдельных видов строго определенны.
1*
3
Сроки окукления и появления взрослых насекомых у многих
видов сильно сжаты во времени, сокращаясь до двух-трех
недель. Период окукления и лёта взрослых, особенно важный
для коллектора и исследователя, а также для реализации
мероприятий по борьбе, для большинства видов фиксирован
фенологически, и вне этих фенологических сроков обнаружить
взрослое насекомое в природе невозможно. Закономерности
в циклах развития зависят главным образом от условий суще-
ствования водных фаз развития и прежде всего от термиче-
ского режима водоема. Географическая широта, на которой
находится местность, высота расположения над уровнем моря,
рельеф и размеры водоема представляются главнейшими
факторами, определяющими режим термических и иных усло-
вий отдельных водоемов. На северных окраинах нашей страны,
в зоне тундры и по северным окраинам зоны тайги период
окукления, сроки вылета и продолжительность лёта взрослых
насекомых разных видов мошек сжаты во времени и падают
на июль—август. То же наблюдается в горных районах
для всей зоны тайги на высотах от 600 м над ур. м. и выше.
В зоне лесостепи и степи подобные условия обнаруживаются на
высотах около 1000 м, а на южных окраинах нашей страны — на
Кавказе и в Средней Азии — на высотах от 1500 до 4000 м над
ур. м. В равнинных частях лесостепной и степной зон окук-
ление и вылет растягиваются с мая до октября. При этом чаще
всего развивается одно поколение, реже — два и более. Одно
поколение в течение года развивается преимущественно
в небольших холодных родниках и ручьях. В средних и круп-
ных реках чаще всего бывает два поколения, из которых пер-
вое вылетает в июне, второе — в августе. Зимовка подавляю-
щего числа видов лесостепной и степной зон, как и у всех
видов на северных окраинах нашей страны, протекает в фазе
яйца. В небольших речках, хорошо прогреваемых летом
(до 25—30°), с резко выраженными суточными колебаниями
температуры, изредка развивается два-три поколения одного
вида. Сроки окукления и вылета таких видов резко изменяются
у отдельных видов в зависимости от особенностей температур-
ного режима мест выплода. Следует подчеркнуть, что кален-
дарная последовательность появления отдельных видов до-
вольно определенна и постоянна и выражена в разных водое-
мах иногда на обширной территории, в некоторых случаях
от Карелии до Дальнего Востока. Примером подобной по-
следовательности окукления и вылета отдельных видов
в небольших таежных речках Восточной Сибири могут служить
данные по фенологии ряда видов, приведенные на рис. 1.
При этом календарный срок вылета отдельного вида может
сильно сдвигаться в зависимости от погодных условий данного
4
года. С понижением температуры воды срок вылета затяги-
вается, обратное наблюдается при повышении температуры.
Сдвиги срока вылета могут быть значительными даже на неболь-
шом пространстве, например при подъеме от устья реки к ее
истокам, при поднятии в горы или при приближении к берегам
морей или крупных озер. Пример подобного сдвига сроков
вылета у обыкновенной мошки (Simulium vulgare Rubz.) при-
веден на рис. 2. Здесь показано развитие одного вида в ряде
названия видов
Qaagmia ornata Mg.
Euslmullum talipes Mg.
Prosimullum hirtpes Fries
Stmulium uulgare Rubz.
Eusunulium Ысогпе Dor. et Rubz.
SimuUum oemulum Rubz.
Cnus rellctum Rubz.
oaagmla frlglda Rubz.
Рис. 1. Последовательность и сроки окукления мошек в речке Бурда-
ковке Иркутского района в 1953 г. (сплошная линия). Пунктиром обозна-
чены последовательность и сроки окукления тех же видов в р. Ситенке
и р. Каменке Лужского района Ленинградской области в 1955 г.
сходных водоемов (притоков р. Ангары), расположенных на
протяжении 60 км от Иркутска до Байкала. На этом неболь-
шом относительно пространстве по мере приближения к оз. Бай-
кал температура воздуха и воды заметно понижается. Срок
вылета одного и того же вида все более запаздывает, и у озера
Байкал вид уже дает не два, а всего одно поколение в течениегода.
На южных окраинах нашей страны в низинных, сильно
прогреваемых водоемах в летние месяцы (июнь—август)
наблюдается перерыв окукления и вылета взрослых. В этот
период летней диапаузы мошки могут быть обнаружены лишь
в водоеме и притом только в фазе яйца. Развитие личинок,
окукление и вылет взрослых насекомых здесь протекает пре-
имущественно весной, с марта по май, и осенью, с сентября
по ноябрь
В мелких холодных водоемах, например в родниках с посто-
янным гидро-термическим режимом, где в течение года
5
развивается, как правило, одно поколение, сроки окукления
и вылета отдельных видов сжаты во времени. Напротив, в круп-
ных реках, где в течение всей теплой половины года имеются
подходящие и сходные условия, сроки развития, окукления
и вылета сильно растянуты. Отдельные поколения нередко
налегают одно на другое, резкой границы между ними нельзя
провести, и в водоеме в одно и то же время можно встретить
разные фазы и разные стадии развития одного и того же вида,
как это наблюдается, например, у мошки Холодковского
{Gnus cholodkovskii Rubz.). Неодновременность отрождения,
а следовательно, и растянутость сроков развития изредка
Названия речек
Половина
Еловка
Уладово
Каролог
Бурдаковка
Бурдугуз
Черная
Безымянная
Никулию
черемшанка
Крестовка
						
						
						
						
						
						
						
						
						
						
31	10	20	30	10	20	31						
Мой И ю н ь
Июль
Рис. 2.Сдвиги в сроках окукления Simulium vulgare Rubz. в речках верх-
него Приангарья. Речки расположены в порядке их впадения в р. Ангару
от Иркутска по направлению к истокам р. Ангары. Ручей Половина
летом пересыхает.
наблюдаются и у обитателей родников {Eusimulium ontium
Rubz. и др.), но здесь это связано с нарушением условий зи-
мовки. Некоторые виды, как например украшенная мошка
{Odagmia ornata Mg.), могут одновременно зимовать и в фазе
яйца и в фазе личинки. На северных окраинах ареала зимует
преимущественно яйцо, на южных — преимущественно ли-
чинка. У украшенной мошки, у мошки волосатой (Prosimulium
hirtipes Fries), широконогой {Eusimulium latipes Mg.) и других
личинки отрождаются еще зимой (в январе—феврале). Таким
образом, зимовка протекает частью в фазе яйца, частью в фазе
личинки (рис. 3).
Из изложенного ясно, что для успешности сборов, продук-
тивности изучения и эффективности мероприятий по борьбе
с мошками их необходимо проводить в разные, хотя и строго
определенные сроки.
6
Для установления календаря жизни мошек в каждой от-
дельной местности нужно изучить прежде всего сроки разви-
тия водных фаз (яйца, личинки, куколки). Наилучшим време-
нем для сбора полноценных материалов по мошкам является
самый кратковременный в их цикле развития период окукле-
О яиио
□ личинка
А куколка
□ взрослое насекомое
О t=j А □ Prosimulium hirtipes Fries
• м А  Simulium uulgare Rubz,
О Ез A О Odagmia fngida Rubz.
вылет взрослых насекомых
Рис. 3. Календарь жизни (циклы развития) разных видов
в одном и том же водоеме.
ния. В период окукления легко добываются и зрелые личинки,
необходимые для определения; облегчается решение ряда
вопросов биологии взрослых насекомых, например, уточняются
•сроки появления, лёта и нападения кровососов. Из куколок
легко выводятся взрослые насекомые. Это позволяет иметь
не только самок, но и самцов, которые во многих случаях
необходимы для определения видов.
Таким образом, самый первый этап исследования — соби-
рание материала, на северных окраинах нашей страны целе-
7
сообразно ограничить летними месяцами, в средней полосе
европейской части СССР и Сибири этот период длится с ранней
весны и до поздней осени, а на юге он находится в зависи-
мости от высоты над уровнем моря. В низинах — это ранняя
весна и осень, в предгорьях — с весны до осени, в высоко-
горьях — лишь летние месяцы, как и на севере.
СБОР ВЗРОСЛЫХ МОШЕК
Взрослых насекомых легко собрать вокруг человека и до-
машних животных в течение всего периода лёта (см. выше,
стр. 4).
Основной инструментарий, необходимый при ловле насе-
комых, посуда и способы хранения — следующие.
Рис. 4.
А — способ прикрепления сачка к палке; Б —
пробирка с воронкообразным дном; В — схемати-
ческий разрез морилки.
1. Энтомологический сачок; диаметр кольца сачка около
25 см. Толщина проволоки, употребляемой для обода сачка, —
4—5 мм. Желательно брать латунную проволоку. Длина
ручки сачка около 0.75 м. Сачок длиной около 0.5 м изго-
товляется из марли (мягкой), густого тюля или газа. Мешок
сачка к вершине закругляется, но не остро. Мешок сачка
прикрепляется к обручу вдвое сложенной полосой более плот-
ной материи. Способ прикрепления обруча показан на рис. 4, А.
2. Морилка (рис. 4, В). Изготовляется из стеклянной
широкогорлой банки, объемом около 100 см1 2 3, или из стеклян-
8
ного цилиндра, диаметром около 2—3 см, длиной около 10 см.
На дно морилки кладется пропускная бумага, собранная
гармошкой (для впитывания излишней влаги). Пробка к мо-
рилке должна быть хорошо пригнана. Желательно пробку
к морилке предварительно пропитать в расплавленном пара-
фине или воске. Отравляющее насекомых вещество (хлоро-
форм или уксусный эфир) помещается в маленькую пробирку,
которая заделывается в пробку морилки (рис. 4, В, п) открытым
отверстием внутрь. В пробирочку плотно заталкиваются там-
поны гигроскопической ваты, смачиваемые, по мере высыха-
ния, хлороформом или уксусным эфиром. Пробка прикреп-
ляется на веревочке, обвязанной вокруг горлышка стеклянной
банки.
3.	Пробирки химические или пробирные цилиндрики, диа-
метром около 1 см, длиной 7—15 см.
4.	70%-й спирт или раствор формалина (1 часть формалина
на 8 частей воды) для консервирования взрослых насекомых.
5.	Блокнот и черный мягкий карандаш (не химический)
для писания этикеток.
6.	Пробирка с воронкообразным дном (рис. 4, 5), эксгау-
стер (рис. 10).
7.	Гигроскопическая вата для закупорки пробирок.
8.	Экскурсионная сумка. Удобна охотничья сумка, в кото-
рой имеется патронташ, заполняемый пробирками.
Насекомые ловятся на лету вокруг человека или животных
сачком. Для перевода пойманных насекомых в морилку конец
сачка после резкого взмаха быстро захватывается левой ру-
кой; правой рукой подносится морилка, открывается пробка;
левая рука просовывается через сачок п обруч, подводится
вплотную к отверстию морилки и постепенно разжимается.
Положительно фототропичное насекомое влетает в морилку.
Таким образом, в природе можно поймать почти исключительно
только самок. Самцов можно добыть в начале массового от-
рождения у берегов реки кошением по траве или прибрежным
кустам, а также во время роения. Последнее наблюдается
редко, но сборы роящихся насекомых представляют особый
интерес. Насекомых, сосущих кровь, удобнее собирать про-
биркой. Для этого нужно использовать простую химическую
пробирку или более короткий пробирный цилиндрик, но в этих
случаях каждую пробирку с пойманным насекомым необходимо
затыкать пробкой или ватой. Во время сосания крови самки
могут быть легко накрыты пробиркой. Особенно удобна для
этой цели специальная пробирка с воронкообразным дном,
(рис. 4, Б). На конце воронки имеется отверстие диаметром
около 4—5 мм. Широкое отверстие пробирки закрывается
пробкой. Накрывая подобной пробиркой сидящих на теле
9
хозяина кровососов, можно поймать десятки особей в одну
пробирку. Весьма удобен для этой цели эксгаустер.
В зависимости от задач, с которыми собираются насеко-
мые, их или замаривают по возвращении в лабораторию,
переводя из пробирок в морилки, или, при необходимости
содержания живыми, переводят в специальные садки (см.
ниже, стр. 26).
Во всех случаях необходимо точное этикетирование соби-
раемого материала, которое лучше всего производить на месте,
во время сбора. В этикетке должны быть записаны данные
о месте, времени и, по возможности, других условиях сбора
насекомых. Среди других условий сбора желательно отмечать
время дня, точное местонахождение сбора (опушка, лес, откры-
тое пространство, на животном, на какой части тела), часы
дня, погодные условия. В конце этикетки ставится фамилия
сборщика. Не этикетированный материал не имеет научной
ценности. Этикетка пишется на небольшом кусочке плотной
белой бумаги. Для упрощения можно перенумеровать про-
бирки; данные этикетки при таком способе заносятся в запис-
ную книжку под соответствующим номером. По возвращении
в лабораторию этикетки переписываются из записной книжки.
Хранить пойманных насекомых можно на вате и в спирте.
Для ватных сборов мошек можно использовать обыкновенные
энтомологические ящики. Однако в практике дальнейшей
обработки и определения оказывается более удобным скла-
дывать заморенных насекомых в небольшие коробки. Вполне
пригодны для этой цели спичечные коробки или коробки
из-под папирос. В спичечной коробке рекомендуется помещать
не более одного слоя ваты. Удобно при этом обертывание
самой коробки с ватой полоской бумаги, концы которой высту-
пают за края коробки (рис. 5, В). Этикетка пишется на полоске
бумаги. На слое ваты больших размеров насекомые склады-
ваются группами. Отдельные группы разделяются нитками.
На листке бумаги, прикрывающем весь ватный слой, пишутся
этикетки, разделенные в соответствии с тем, как насекомые
разделены на вате (рис. 5, Б). Работа облегчается, если насеко-
мые раскладываются небольшими группами; каждая группа
накрывается отдельным кружочком, на котором ставится
номерок; под этим номерком на общем, прикрывающем сборы
листе бумаги пишутся этикетки (Рис. 5, Я). При длительном
хранении папиросные коробки должны быть заклеены во
избежание попадания туда вредителей. Кроме того, на ватный
слой в уголке насыпается нафталин. Еще лучше нафталин
насыпать под ватный слой. Сборы можно сохранять в 70 %-м
спирте или 2—4%-м формалине в отдельных химических
пробирках, хорошо закрытых плотно пригнанными пробками.
ю
Более компактным представляется хранение спиртовых сборов
в материальных банках объемом 250—500 см На дно банки
кладется вата. Сбор из крупной пробирки переводится в мел-
кую, однако с таким расчетом, чтобы объем жидкости не менее
чем в 10 раз превышал объем хранимых насекомых. В каждую
пробирку вкладывается этикетка, написанная черной тушью
на пергаментной бумаге; после этого пробирка закрывается ват-
ным тампоном так, чтобы под тампоном не было пузырьков
воздуха. Тщательно сложенные, поставленные открытым концом
вниз пробирки сверху прикрываются гигроскопической ватой
А, Б — Способы хранения и этикетпровкп мошек на вате; В — Способ укупорки
в спичечной коробке.
(чтобы не болтались) и заливаются спиртом (70 % -м) или форма-
лином (4%-м) доверху. При перевозке или пересылке плотно
пригнанная пробка заливается воском или парафином либо
привязывается шпагатом. В экспедиционных условиях удобно
пользоваться материальными банками с навинчивающимися
крышками. Необходимо обращать внимание на то, чтобы
крышка плотно прикрывала отверстие материальной банки
и жидкость не вытекала. Для этой цели служат пробковые
или резиновые кружки, прокладываемые между горлышком
банки и навинчивающейся крышкой.
Научную ценность представляют сборы, производимые
систематически подекадно, в течение всего периода лёта.
В связи с крайне слабой изученностью кровососущих мошек
11
научный интерес представляют и случайные отдельные сборы.
При сборе взрослых насекомых коллектору попадают почти
исключительно одни самки, притом немногих активно нападаю-
щих кровососов. Определение видов мошек по самкам крайне
затруднено. Кроме того, самки одного и того же вида,
выплаживающиеся в разных водоемах, могут резко разли-
чаться по активности. Активность нападения одного и того же
вида мошек может меняться из года в год. Таким образом,
по кратковременным и отрывочным сборам одних самок еще
нельзя делать заключений о видовом составе мошек данной
местности. Для полного выявления и точного определения
состава кровососущих видов мошек необходимо планомерное
обследование водоемов.
УЧЕТ ЧИСЛЕННОСТИ И АКТИВНОСТИ НАПАДЕНИЯ
Простейшим способом учета численности и активности
нападения кровососущих мошек может быть сбор энтомологиче-
ским сачком. Сравнивая каждый раз определенное количество
взмахов — 10—25—50—100 в зависимости от обилия нападаю-
щих кровососов или, что предпочтительнее, определяя коли-
чество пойманных насекомых на один взмах (делением общего
количества пойманных особей на количество взмахов) можно
получить уже сравнимые цифровые данные. Из массы окружаю-
щих человека мошек, лишь немногие особи завершают напа-
дение уколом и сосанием крови, а активность нападения сильно
зависит от ряда внешних условий (ветер и другие факторы).
В связи с этим рекомендуются более точные методы количествен-
ного учета. Предлагается вылавливание кровососов на себе
или на животном в течение определенного промежутка вре-
мени: 5, 10 или 20 мин., в зависимости от активности нападе-
ния. Абсолютное количество пойманных особей при разных
сроках учета для сравнимости лучше относить к 1 мин. Для
сбора кровососов на наблюдателе или на животных может
служить пробирка с конусообразным отверстием на одном
конце и пробкой на другом (рис. 4, Б) либо эксгаустер (рис. 10).
При обилии нападающих кровососов, когда один человек
не в состоянии собрать всех садящихся на него насекомых,
Мончадский и Радзивиловская (1948) рекомендуют накрывание
наблюдателя колоколом из ткани. Колокол представляет собой
матерчатый цилиндр из белой бязи около 160 см в диаметре
и 190 см в высоту. По нижнему краю колокола вшивается
металлическое кольцо, посредине — кольцо из ивовых прутьев
или также металлическое для того, чтобы цилиндр был в рас-
правленном состоянии. Верхняя часть конуса заканчивается
конусом с распорками против спадания купола. Колокол
12
крепится к веревке через кольцо па вершине купола. Веревка
привязывается к концу длинной жерди, которая посредине
своей длины прикрепляется к дереву на высоте, примерно
вдвое превосходящей рост человека. Наблюдатель в качестве
приманки садится под колоколом, колокол поднимается на
Рис. 6.
А — конец палочки-крючка для добывания растительности
из водоемов; Б — то же, иного устройства; В — грабли для
добывания растительности с лодок в крупных реках; Г — прибор
для доставания камней со дна водоемов; Д — схема проволочного
остова ловушки по Скуфьпну: к — кол, на котором крепится ло-
вушка; м — матерчатый мешок, покрывающий остов; р — ру-
кав, через который выбираются насекомые; яр — проволочный
остов.
другой конец жерди на высоту около 3 м. После появления
кровососов колокол быстро опускается и закрывает наблюда-
теля вместе с кровососами. Вылов насекомых производится
указанными выше способами (пробиркой или эксгаустером)
под колоколом.
Для круглосуточного количественного учета кровососов
в природе можно использовать ловушку Скуфьина, предложен-
ную им для учета численности слепней.
13
Ловушка в простейшем виде (рис. 6, Д) представляет собой
проволочный каркас в виде цилиндра диаметром и высотой
около 30 см. Внутрь цилиндра снизу также из проволоки
прикрепляется остов воронки. Каркас (за исключением от-
верстия снизу в воронке) обшивается материей. Сбоку или
сверху прикрепляется матерчатый рукав, через который насе-
комые вытряхиваются из ловушки в пробирку. При этом
отверстие снизу закрывается ватным тампоном. Ловушка слу-
жит вместо приманки. Нападающие насекомые, предпочитая
брюшную поверхность животных, попадают снизу через во-
ронку в цилиндр.
Известно, что взрослые насекомые, в частности мошки,
по-разному реагируют на разноокрашенных животных. Темные
животные для мошек обладают большей привлека-
тельностью, нежели белые. Поэтому для изучения реакции
на окраску можно поставить в разных внешних условиях
серию ловушек, обшитых материалом разного цвета.
Ловушки должны располагаться в некотором удалении от
лаборатории, на открытом месте. Учет может производиться
через определенный промежуток времени (1—3 часа) или раз
в сутки, в зависимости от задач, которые ставятся. Для оценки
суточного ритма активности учеты должны производиться
каждый час или через 2—3 часа. При этом необходимо учи-
тывать температуру, ветер, солнечное освещение, барометри-
ческое давление и другие условия с помощью принятых для
этой цели приборов. Описание их выходит за рамки настоящей
инструкции и может быть найдено в других специальных
руководствах.
ЯЙЦО, ЛИЧИНКА, КУКОЛКА
Развитие яйца, личинки и куколки протекает в текучих
водоемах. В стоячих водоемах мошки не развиваются. Наи-
большую ценность при изучении мошек любой местности
представляют куколки. Из куколок легко могут быть выведены
взрослые насекомые и не только самки, но и самцы. Кроме
того, во время окукления встречаются зрелые личинки. Во
многих случаях самцы и зрелые личинки абсолютно необхо-
димы для уточнения и облегчения определения видов. В связи
с этим сбор куколок, особенно зрелых, а также зрелых личи-
нок является наиболее простым и в то же время надежным
путем выявления фауны мошек любой местности.
Важнейшее снаряжение, необходимое на водных экскур-
сиях, сводится к следующему.
1.	Приборы для доставания раститель-
ности, камней и иного субстрата в текучих водоемах.
14
При обследовании родников, ручейков и небольших речек,
субстрат, на котором помещаются личинки и куколки, легко
может быть добыт просто руками. Это наиболее простой и вер-
ный способ, особенно если имеются резиновые сапоги. В сред-
них по размерам водоемах и особенно в ^больших крупных
мутных реках задача сбора значительно усложняется. Самым
простым приспособлением, пригодным для добывания расти-
тельности в реках среднего размера, может служить проволоч-
ный крючок, изготовляемый из проволоки, диаметром 5—6 мм
и длиной 2—3 м. Конец проволоки, длиной около 5—7 см,
загибается под острым углом. В прозрачной воде таким крюч-
ком легко добывается растительность, на которой распола-
гаются яйца, личинки и куколки мошек. Для той же цели
может служить палка длиной около 2—3 м, на конце которой
под острым углом с помощью двух винтов или шурупов плотно
прикрепляется кусок стальной пластинки (например, из грам-
мофонной пружины) длиной около 10 см (рис. 6, Я). Прибор
этот особенно удобен для вытаскивания растительности вдоль
берегов при прозрачной воде. Шест можно сделать складным.
Последнее удобно при передвижениях.
Тем же целям может служить Г-образный крючок из про-
волоки, приделываемый к тонкому шесту на жестяном цилиндре
<(рис. 6, Б). Проволока изгибается, как указано на рисунке,
и крючок должен легко двигаться вдоль цилиндра в специаль-
ных пазах. К концам проволочного крючка привязывается
бечевка, длиной с шест (2—3 м). При опускании в воду крючок
ювоим весом спускается вниз. При захватывании раститель-
ности последняя прижимается с помощью бечевки к деревян-
ной пятке (рис. 6, Б, /г), после чего вытаскивается на поверх-
ность.
В крупных реках при необходимости добывания раститель-
ности с более значительной глубины и 'в некотором удалении
•от берега, притом с лодки, удобной оказывается гребенка,
изображенная на рис, 6, В. Такая гребенка изготовляется
из сплошного куска железа, например из полосы железа,
употребляемой для колесного обода. Длина подобной гребенки
около 0.6 м, длина зубцов 5—6 см. Толщина полосы железа
1.5—2 см. Ширина зубцов у основания 4—5 см, к вершине
.зубцы приострены. По краям гребенки приделываются проч-
ные ушки. К ушкам прикрепляется проволочный канатик
или проволока в виде равностороннего треугольника. К углу
проволоки против средины гребенки прикрепляется трос,
длиной 5—10—15 м. Подобная гребенка сбрасывается с лодки
в воду там, где желают добыть растительность. Лодка дви-
жется против течения. Гребенка протаскивается по дну и сры-
□вает при этом растительность. При изготовлении гребенки
15
из тонкого листового железа необходимо ее утяжеление желез-
ным бруском, иначе гребенка при движении в быстром течении
легко всплывает.
Для добывания камней могут служить щипцы, изображен-
ные на рис. 6, Г Щипцы (в литературе — камнещуп Рубцова)
раздвигаются пружинкой, крепятся на цилиндре из тонкого
листового, лучше оцинкованного железа. Цилиндр вместе
с щипцами прикрепляется на длинном шесте (2—3 м), с по-
мощью его щипцы подводятся к камню, который необходимо
извлечь. При натягивании веревки щипцы закрываются; при-
держивая веревку натянутой вдоль шеста, камень вытаски-
вают на поверхность.
2.	Посуда для сбора и хранения. В экскур-
сиях на стационарной работе пригодна полевая сумка с полу-
литровой банкой и пробирками. В длительных поездках удобен
небольшой чемодан. При экскурсиях в жаркую погоду, осо-
бенно на юге, при необходимости сохранения материала живым,
хорошо иметь термосы; они предварительно ополаскиваются
в водоеме, из которого производится сбор. Обвертывание ведра
войлоком, белой бумагой и смачивание его водой предохра-
няют материал от перегревания. Материальные банки разме-
ром 100—250 см3 с навинчивающимися крышками, пробирки
химические или другие стеклянные цилиндрики, затыкаю-
щиеся ватными тампонами или плотными пробками — все эта
желательно иметь при собирании личинок и куколок прямо
в спирт. При небольших сборах живого материала удобны
пробирки, стеклянные цилиндрики, банки и особенно спи-
чечные или другие деревянные или картонные коробки. Для
массового сбора живого материала можно пользоваться вед-
ром. В лаборатории для размещения материала удобны широ-
когорлые стеклянные банки различных размеров (0.5—1.0 л),,
а для индивидуального выведения — пробирки (1x6 см).
3.	Инструме нт арий для отделения от
субстрата и для сбора личинок, куколок,
и взрослых насекомых. Остро отточенный пинцет.
Ножницы. Перочинный нож.
4.	Лупа с 10- кратным увеличением.
5.	Термометр для измерения темпера-
туры воды.
6.	Бумага, карандаш.
7.	В качестве консервирующей жидко-
сти — 96% - й спирт.
8.	Прибор для измерения скорости те-
чения. Существует много различных приборов для измере-
ния скорости течения. Простейшим из них является тахиметр*
Глушкова (рис. 7, Л), представляющий собой резиновую
16
камеру с металлической трубкой, кончающейся отверстием,
строго определенного диаметра. Если расположить прибор
в потоке воды отверстием против течения, то количество воды,
поступающей через трубку в резиновую камеру, определяется
в основном скоростью течения и временем пребывания прибора
в воде. Тахиметр опускается в воду на определенное время
течения), так
от скорости
5
—ЮОсн
-90
— 80
— 70
-60
— 50
-30
— 20
-10
(на 5—10—20 сек., в зависимости
чтобы камера наполнялась при-
мерно на половину. Определен-
ному количеству воды, посту-
пающему в камеру в среднем
за 1 сек., соответствует опреде-
ленная скорость течения. От-
дельной частью прибора являет-
ся мензурка (рис. 7, В) для
измерения количества воды, по-
ступающей за определенный
промежуток времени в .резино-
вую камеру. Прибор (камера
с трубкой) прикрепляется на
шесте, с помощью которого из-
мерение скорости течения мож-
но производить не только у бе-
рега или на поверхности во-
ды, но и в толще потока, у дна
и т. п. Определение скорости
течения производится по спе-
циальной таблице, где указана
•скорость течения в зависимости
от количества поступившей в
прибор воды. Таблица уточняет-
ся эмпирически для каждого
отдельного прибора и прила-
гается к нему.
Для измерения скорости течения в небольших водоемах
со спокойным течением нами предложен очень простой прибор,
изображенный на рис. 8, А. Его применение основано на прин-
ципе расхождения волн по параболе от точки соприкосновения
острия с водой (рис. 8, Б). Чем быстрее течение, тем более
вытянута парабола. При соприкосновении с поверхностью
воды двух игл, расставленных на определенном расстоянии,
встреча двух волн будет происходить тем далее от места
соприкосновения игл с водой, чем быстрее течение. Прибор
представляет собой линейку, на одном конце которой перпен-
дикулярно к линейке прикреплен брусок с двумя иглами.
При расстоянии между иглами в 10 см ускорение течения
2 И. А. Рубцов	17
А — Тахиметр Глушкова; Б — мен-
зурка.
на 0.1 м/сек. при скоростях свыше 0.2 м/сек. будет удлинять
расстояние встречи волн на 2.9 см. При скорости 0.2 м/сек.
встреча волн произойдет на расстоянии 2.3 см от прямой линии,
соединяющей иглы. Дальнейшее деление на линейке нано-
сится через каждые 2.9 см. Для измерения скорости течения
на поверхности воды (которая близка к средней скорости
течения в небольших водоемах) достаточно прикоснуться
иглами к поверхности воды и против встречи волн прочесть
показания скорости течения на линейке (рис. 8, Л). В гидро-
Рис. 8. Прибор для измерения скорости течения.
биологической практике широко применяются различного рода
вертушки и поплавки.
При отсутствии приборов скорость течения можно измерять,
бросая сухой листок (или поплавок) на поверхность воды
и измеряя расстояние, проходимое листком в течение некото-
рого времени (3—5 сек.).
9.	Диск Секки, применяемый в гидробиологической
практике, может служить для определения мутности воды.
Два последних прибора необходимы при специальном изу-
чении биологии водных фаз развития мошек. В соответствии
с другими специальными задачами может возникнуть необхо-
димость и в другом, более сложном и специальном оборудо-
вании, какое, например, требуется для гидрохимической
характеристики водоема (газовый режим, химизм, окисляе-
мость и т. п.). Описание этой аппаратуры выходит за рамки
настоящей инструкции. Скорость течения и температура воды
являются важнейшими условиями существования водных фаз
развития мошек и должны определяться по возможности
постоянно.
18
Успех поисков и продуктивность сборов будут зависеть
в значительной мере от знания местообитаний и умелого ис-
пользования некоторых приемов при сборе и транспортировке
материала.
Первое важнейшее правило при поисках личинок и куко-
лок — обращать внимание на участки реки с самым быстрым
течением. Даже на перекатах необходимо выбирать точки,
где струя воды протекает с наибольшей скоростью, и особенно
места, где наблюдается завихрение, падение воды и в связи
с этим захват пузырьков воздуха. Шум падения воды или
пена—верные показатели местообитания, богато заселенного
личинками мошек.
Личинки и куколки встречаются на самом различном
субстрате, однако наиболее подходящим являются листья вод-
ных растений, особенно узколистных, ветви спускающихся
с берега древесных и кустарниковых растений, а также камни.
Свежие, попадающие с берега ветки растений как древесных,
так и травянистых избегаются. Для поселения предпочитается
субстрат, находящийся в воде достаточно длительное время
и обрастающий характерной для данного водоема микрофло-
рой. Избегаются тонкие слизистые субстраты, водоросли,
тряпки и гниющие куски дерева или травянистых растений.
Яйцекладки мошек встречаются чаще всего у берега, на
урезе воды, на листьях плавающих в воде растений, преиму-
щественно на перекатах или в начале их, нередко на камнях,
на глубине до 0.5 м, на расстоянии до 2—3 м от берега. При
откладке яиц под водой предпочитаются прочно лежащие
в воде камни у берега или свисающие с берега в воду каме-
нистые стенки, омываемые водой или увлажняемые брызгами.
При сборах в поле рекомендуется 96%-й спирт, а не 70%-й,
потому что в крепком спирте личинки чаще выпячивают
ректальные придатки и иногда раскрывают веера, что очень
облегчает их определение. Личинки некоторых видов не выпя-
чивают ректальных придатков даже в крепком и подогретом
спирте. В таких случаях следует слить из часового стекла
(или другой подходящей посуды), куда собраны личинки,
воду и залить их горячим 96%-м спиртом. Лучше, если перед
заливкой спиртом личинки остаются 1—2 мин. без воды. Личи-
нок, не выпячивающих ректальные придатки и в горячем
спирте, можно сразу после умерщвления сжать пинцетом
у заднего конца тела и подержать в спирту некоторое время
с выпяченными сжатием ректальными придатками. После
этого ректальные придатки остаются выпяченными.
Иногда, несмотря на все меры, ректальные придатки не
выпячиваются и снаружи не заметны. В таких крайних слу-
чаях их можно добыть путем осторожного препарирования.
2*
19
Ректальные придатки сохраняют свои веточки и в сокращен-
ном состоянии, будучи скрыты в кармане над хитиновой рамой.
Вскрытие кармана можно вести снаружи, приподымая верхнюю
стенку наружных покровов, либо изнутри, вытаскивая ки-
шечник, а затем и ректальные придатки. Вскрытие лучше
вести на черном фоне.
Сбором материала прямо в спирт можно ограничиваться
только при крайнем недостатке времени, например при пере-
движении или при изобилии материала, позволяющем одно-
временно отбирать личинок и куколок не только в спирт,
но и в живом виде. Обследование и разборку добытого из
воды субстрата, при его изобилии, рационально производить
в лаборатории или, при передвижении, на остановках. Добы-
тая из воды растительность или иной субстрат складывается
в ведро, таз или на кусок брезента, в мешок или чемодан и
доставляется в лабораторию с возможными предосторожно-
стями против перегревания. Для этого вместилища с живым
материалом должны помещаться в тень или в самое прохлад-
ное место (на дне лодки, в ведре воды и т. д.). При подсыхании
материал обрызгивается водой. Для экскурсий, ставящих
целью сбор живого материала из воды летом, лучше выбирать
пасмурные и прохладные дни.
Живой материал нужно собирать при всякой возможности.
При этом и личинки и куколки кладутся не в воду, а в увлаж-
ненную посуду, с растительностью, но без воды. И личинки
и куколки из-за высокой требовательности к кислороду во
влажной атмосфере, без воды, выживают значительно дольше,
чем в стоячей, лишенной кислорода, воде. Сбор живого мате-
риала особо рекомендуется потому, что наибольшую ценность
при определении мошек представляют зрелые куколки. Из-за
краткости срока развития зрелые куколки по сравнению
с личинками в водоеме встречаются в относительно небольшом
количестве, почему важно прибегать к массовому сбору жи-
вых куколок в различную посуду (см. выше), в которой может
протекать их дозревание. Даже спиртовые сборы лучше
разбирать на остановке или в лаборатории: это позволяет
отобрать более зрелый и разнообразный материал. При не-
больших сборах на экскурсиях удобны спичечные коробки
или для отдельных особей — пустые папиросные гильзы.
Спичечная коробка с живым материалом при транспортировке
снаружи заворачивается в мокрую бумагу для предотвращения
высыхания и для поддержания в ней влажности. При соби-
рании куколок с камней нужно снимать их с особой осторож-
ностью, захватывая остро отточенным пинцетом за самый
задний конец кокона, не сжимая при этом брюшка куколки
(рис. 9). Если куколку снимать, беря ее пинцетом посредине
20
или за передний конец тела, — она в большинстве случаев
погибает.
Для выделения отдельных куколок на растительном суб-
страте можно пользоваться ножницами или перочинным ножом.
И в этом случае живой материал по куколкам лучше и дольше
сохраняется живым, если его собирать с субстратом вместе.
Транспортировка личинок до лаборатории в живом виде со-
провождается тем, что значительная часть их подвигается
вперед в своем развитии, и таким образом легче отобрать
и для спиртовых сборов зрелых личинок. Последние . отли-
Рис. 9. Способ снятия куколки с субстрата.
чаются наличием двух темных или черных пятен по бокам
груди (свернутые клубком дыхательные нити будущей ку-
колки).
При наличии массового материала необходимо произво-
дить выбор. Разные виды и внешне отличаются по размерам,
окраске, форме кокона. Одновременно в водоеме может встре-
чаться от одного до пяти—десяти видов. При этом подавляю-
щую массу составляет один-два вида. Часто кровососом
является именно редкий в водоеме вид. Поэтому нужно при-
бегать к помощи лупы и выбирать отличающиеся по внешнему
виду и, по возможности, зрелые особи.
Каждый отличающийся по своему гидрохимическому ре-
жиму водоем населен особыми видами. Куколки одного вида
сменяются куколками другого в одном и том же водоеме не-
редко в течение одной декады. Смена видов длится в умерен-
ной зоне в течение всей теплой половины года. В одном и том же
водоеме, особенно небольшом, одни виды могут сменяться
другими на протяжении не более чем один километр. Поэтому
для полноты исследования видового состава мошек в данной
местности необходимы стационарные наблюдения в течение
21
всего вегетационного периода. Пробы должны производиться
через декаду, притом в разных точках одного водоема.
ВЫВЕДЕНИЕ И СОДЕРЖАНИЕ МОШЕК В ЛАБОРАТОРИИ
Выведение мошек в лаборатории требуется прежде всего
для целей определения. Как было отмечено выше, добывание
в природе самцов, крайне необходимых для точного определе-
ния, сопряжено с большими трудностями. Самый простой
и надежный способ получения самцов — выведение их в лабо-
ратории. Содержание мошек живыми в лаборатории необхо-
димо также при изучении их биологии, в частности при изу-
чении их как переносчиков специфических заболеваний.
Посуда и инструментарий, необходимые при выведении
взрослых насекомых из куколок, в основном те же, что и при
сборе материала в полевых условиях: стеклянные цилиндры,
пробирки, спичечные, картонные и деревянные коробки.
При изобилии субстрата с куколками мошек и необходи-
мости массового выплода в лаборатории можно воспользоваться
подоконниками окон. Субстрат с куколками (трава, камни
ит. п.) раскладывается на окне, выходящем на северную
сторону или защищенном от попадания прямых солнечных
лучей. Окно при этом должно быть плотно заклеено и не иметь
щелей, через которые могли бы ускользнуть вылетающие
насекомые. Благодаря положительной реакции на свет (поло-
жительному фототаксису) вылетающие насекомые скопляются
на стеклах окна и не способны оторваться от них до наступле-
ния темноты. Нужно следить, чтобы куколки не высыхали,
для чего один или несколько раз в течение дня субстрат с ку-
колками обрызгивается водой. Для уменьшения испаряемости
хорошо прикрыть живой материал бумагой.
Для собирания насекомых с окна используется их другая
реакция — падение при прикосновении к ним. Ползающих
на окне насекомых не следует накрывать пробиркой, лучше
осторожно подводить пробирку снизу. При прикосновении
к насекомому или еще до прикосновения оно само падает в про-
бирку. Таким образом, в одну пробирку, особенно если она
узкая и длинная, может быть собрано несколько насекомых.
Вылетающих насекомых необходимо собрать с окон до наступ-
ления темноты, так как ночью они могут разлететься.
Для массового выведения взрослых насекомых из разных
проб во избежание смешивания удобно использовать эксика-
торы или другие стеклянные банки с крышками. Для выбора
вылетевших насекомых можно их предварительно выпустить
на окно, дать облетаться и затем собрать описанным выше
способом. Весьма удобен для сбора насекомых и с окна и из
22
стеклянных банок, а также в природе простой прибор, назы-
ваемый эксгаустером (рис. 10). Для эксгаустера может быть
использована широкогорлая пробирка, диаметром 2.5—3 см,
длиной 10—12 см. В плотно пригнанной пробке проделывается
два отверстия. В одно отверстие вставляется изогнутая под
углом стеклянная трубочка, диаметром около 5—6 см. На-
ружный конец этой трубочки слегка приостряется, в виде
пипетки с диаметром наружного отверстия около 3—4 мм.
Конец трубочки, опускающийся внутрь примерно до поло-
вины длины пробирки, ос-
тается открытым. В другое
отверстие такой же вели-
чины вставляется другая
стеклянная трубка, анало-
гичным образом изогнутая.
Спущенный внутрь про-
бирки конец завязывается
газом, густым тюлем или
марлей. На наружный ко-
нец надевается резиновая
трубка длиной около 0.5 м.
В свободный конец рези-
новой трубки вставляется
стеклянный мундштук
с хорошо опаянными края-
ми. Подводя приостренный
конец эксгаустера к насе-
комому и втягивая воздух
через мундштук, удается
легко собирать мелких и
нежных насекомых, не
повреждая их.	Рис. 10. Эксгаустер.
Для индивидуального
выведения можно пользоваться стеклянными пробирками,
чашками Петри или спичечными коробками.
При любом способе выведения для поддержания куколок
живыми в течение длительного времени необходимо избегать
перегревания, излишней сырости и подсыхания. Погибших
куколок, прорастающих грибами, необходимо удалять. Выле-
тевших, но погибших насекомых, желательно собирать
в спирт.
Выведение личинок из яиц, если последние не диапаузи-
руют, не представляет особых трудностей. Для этого яйце-
кладка вместе с субстратом помещается в воду. Если яйце-
кладка находится на листе растения, то такой лист лучше
всего помещать в чашке Петри, не закрывая ее для лучшей
23
аэрации. Яйцекладку на камнях нужно заливать водой, так
чтобы она покрывала яйцекладку, но слой воды над яйцеклад-
кой должен быть небольшим — около 2—3 мм. Желательно,
чтобы до отрождения вода менялась ежедневно. Просмотр
яйцекладок для выяснения отрождения личинок ведется под.
лупой или бинокуляром, так как простым глазом личинки
первого возраста плохо заметны. Длительность развития яиц
(если они не находятся в состоянии диапаузы) от 5 до 15 дней.
В зависимости от стадии развития, на которой яйца собраны,
отрождение может произойти в течение указанного срока или
ранее.
Воспитание личинок в лаборатории представляет большие
трудности. В литературе имеются лишь единичные указания
на успешное воспитание личинок от первой до последней
стадии. Удачные опыты воспитания личинок осуществлены
с пластичными видами, выдерживающими загрязнение и
значительные колебания температуры, — с украшенной мошкой
(Odagmia ornata Mg.) и красноголовой (Boophthora erythro-
cephala De Geer). Для воспитания личинок требуются специаль-
ные аквариумы, через которые пропускается воздух. Струя
воздуха, нагнетаемая через трубку вентилятором, приводит
воду в движение и насыщает ее кислородом. Для того, чтобы
вода была богата пищей, ее берут из обыкновенного аквари-
ума, в котором размножаются микроорганизмы (одноклеточные
водоросли, бактерии и простейшие). Простое приспособление
подобного рода изображено на рис. 11, А. В большой стеклян-
ный сосуд, объемом около ведра, вставляется цилиндрическая
трубка, открытая с обоих концов. Диаметр большого цилиндра
около 20 см, его высота около 60 см. Диаметр трубки — около
4—5 см, длина — около 45 см. Большой цилиндр наполняется
водой из аквариума. Трубка помещается в цилиндр верти-
кально. Внутрь трубки вносится несколько десятков личи-
нок. Воздух в трубку с личинками подводится снизу. Поступ-
ление воздуха обеспечивается непрерывным действием венти-
лятора. Воспитание личинок старших возрастов с помощью
подобных приспособлений значительно облегчается. На
рис. 11, 5, В изображена схема сдвоенного прибора, сконстру-
ированного на том же принципе. Для увеличения площади,
на которой могут располагаться личинки, узкий вертикальный
цилиндр заменяют рядом фарфоровых или стеклянных пласти-
нок, которые укрепляются в специальных пазах в более ши-
роком цилиндре. Воздух подводится во многих точках через
дно сосуда. Схема подобного прибора изображена на
рис. И, Г, Д.
Предлагалось воспитывать личинок в водоеме, где они
нормально развиваются. Для этого личинки помещаются
24
в открытые с двух сторон цилиндры, затягиваемые плотным
газом или металлической сеткой, которые не пропускают
личинок. Цилиндры затем прикрепляются к деревянным пла-
вающим плотикам или привязываются к колышкам. Благо-
приятным обстоятельством для развития при этом является
тождество или, по крайней мере, большое сходство темпера-
Рис. И. Приборы для содержания и выращивания личинок
в водоеме.
А— простейший приборе виде одного вертикального цилиндра
60x20 см; Б, В — тот же прибор с двумя пазухами у стенок (сп);
Б — схематический вертикальный разрез; В — разрез горизон-
тальный; Г, Д — аналогичный прибор, в котором цилиндры за-
менены решеткой из стеклянных пластинок (сп) в фарфоровых
или металлических пластинках с пазами (обп). Прочие обозна-
чения: в— вода с водорослями и простейшими; н — ножки при-
бора; л — личинки; сб — стеклянный бак; т — трубка, через ко-
торую нагнетается воздух; ц — цилиндр для личинок, вставляе-
мый в бачок; в цилиндр (ц) через трубку (т) накачивается
воздух, доставляющий вместе с током воды кислород и пищу
личинкам (л) на стенке цилиндра.
туры и химизма воды с теми, к которым личинка данного вида
приспособлена. Препятствием при этом способе воспитания
личинок служит быстрое засорение сетки илом, детритом и мик-
роорганизмами. В цилиндр перестает поступать ток воды,
вместе с тем прекращается поступление пищи. В стоячей воде
личинки мошек не могут питаться и развиваться нормальным
юбразом.
Для биологических наблюдений нередко требуется содер-
жать в лаборатории пойманных в природе или выведенных
2fr
из куколок взрослых насекомых. Такие наблюдения требуются,,
например, при выяснении условий и особенностей развития
половых продуктов, при поисках возбудителей заболеваний,
для которых мошки являются промежуточными хозяевами,
и т. п.
Пойманных в природе самок можно содержать поодиночке.
Как правило, пойманные в природе самки бывают оплодотво-
лочной сетки для содержания взрослых насекомых;
Д — пробирка для индивидуального и коллектив-,
ного содержания взрослых насекомых..
ренными. Их сравнительно легко заставить пить кровь^ и у них
могут развиваться половые продукты в лабораторных усло-
виях. Для содержания одиночных особей (или небольшого*
количества их) может служить садочек, изображенный на
рис. 12, Д. Он представляет собою открытый с двух сторон
цилиндр, диаметром около 4 см, длиной около 20 -см. Цилиндр
затыкается с обеих сторон тампонами гигроскопической ваты.
Между стенкой цилиндра и верхним тампоном пропускается
ниточка, на которой подвешивается маленький мешочек с са-
26
харом. Нижний тампон проталкивается в цилиндр поглубже,
и через него пропускается стеклянный капилляр. Вершина
капилляра находится на уровне поверхности тампона внутри
пробирки. Конец капилляра завязывается редким газом. Весь
цилиндр опускается в сосуд диаметром около 5 см, на дне
которого находится вода. Поступающая через капилляр вода
служит для питья находящимся внутри цилиндра насекомым.
Подвешенный сверху сахар служит для подкормки насеко-
мых. Подобное расположение воды и сахара исключает воз-
можность прилипания, что случается, если сахар и вода нахо-
дятся на дне садка открыто. В то же время в таких садочках
поддерживается достаточная оптимальная влажность. В подоб-
ном садке можно содержать от 1 до 35 насекомых.
Для одновременного содержания большого количества особей
могут служить марлевые садочки, размерами от 10x10x10 см
(рис. 12, Г) до более крупных — 1x1x1 м. Крупные садки
рекомендуются для содержания отродившихся из куколок
и неоплодотворенных самок вместе с самцами. Дело в том,
что неоплодотворенные самки не нападают для кровососания.
Оплодотворение в тесных садках происходит с трудом. Однако
оно иногда происходит и в небольших садках описанного
типа (например, у украшенной мошки). Для видов, которые
не спариваются в мелких садочках, рекомендуются обширные
садки и даже вольеры из газа и марли, устанавливаемые на
открытом воздухе или даже над ручьем. Подкормка и вода
в таком садке могут быть устроены по схеме, только что опи-
санной для садочка, изображенного на рис. 12, Д.
Садочки нельзя оставлять на солнце, так как насекомые
при этом быстро погибают. Необходимо также следить за
подкормкой и наличием воды для питья. В опыте, в лаборатор-
ных условиях, отмечено, что самки, насосавшиеся крови
частично, живут дольше, нежели особи, напившиеся крови
-с избытком. При благоприятных условиях насекомые в садках
могут жить около 3—4 недель. Для созревания половых про-
дуктов при благоприятных условиях требуется не более недели.
Искусственное кормление самок производится следующим
образом. Голодные оплодотворенные самки рассаживаются
по 5—10 особей в один стеклянный цилиндр. Размеры стек-
лянного цилиндра должны быть таковы, чтобы в него свободно
проходила голова птицы, например утки, и после надевания
открытый конец цилиндра достигал бы половины шеи. Стек-
лянный цилиндр с самками мошек быстро надевается на голову
птицы, и его надетый конец завязывается плотной тканью
вокруг шеи птицы. Ца другой, закрытый конец цилинд-
ра до половины его надевается темный колпачок из материи.
Положительно фототропичные мошки избегают оставаться
27
в затемненном конце цилиндра и охотнее сосут кровь. Пред-
варительное частичное выщипывание или выстригание перьев
у птицы позади головы облегчает проникновение самок к коже.
Для привлечения самок к коже и питания здесь кровью реко-
мендуется также обрызгать кожу 10%-м раствором сахара.
Самки нападают обычно в первую четверть часа. Если нападе-
ния не происходит, то цилиндр заменяется другим, с свежими
голодными самками. Кровососание длится около двух минут.
Если необходимо иметь самок, лишь частично насосавшихся
крови, то своевременно снимают колпачок и передвигают
цилиндр, прерывая кровососание.
В некоторых опытах и биологических наблюдениях, напри-
мер при изучении расстояний, на которые мигрируют личинки
в водоемах, а также для изучения разлета взрослых,
насекомых от мест выплода, требуется мечение насекомых.
Для мечения личинок использован радиоактивный фосфор.
Для мечения собираются массы личинок, переносятся в спе-
циальный аквариум с слабо проточной или перемешиваемой
водой, в которой растворен радиоактивный фосфор. Личинки
выдерживаются в подобном аквариуме в течение 24 часов.
Затем личинки переносятся обратно в водоем, из которого
они были взяты. Для определения расстояния, на которое
личинки мигрировали, производится отлов личинок ниже
места выпуска. Регистрация обработанных радиоактивным
фосфором личинок производится с помощью специально раз-
работанных для этой цели счетчиков (установка «Б» или
«Севан»).
Тот факт, что взрослые насекомые охотно питаются сахар-
ным раствором, позволяет предложить мечение их неядо-
витыми радиоактивными изотопами, растворенными в сиропе.
Насколько нам известно, на практике подобный способ еще
не испытывался. Для мечения взрослых насекомых до сих
пор применялись некоторые анилиновые краски. Среди них
рекомендуется сафранин голубоватый. Насекомые перед вы-
пуском в природу опыливаются порошком краски. Краска
растворяется в абсолютном алкоголе, в глицерине или хлоро-
форме. Вылавливаемые в природе насекомые обрабатываются
одним из этих растворителей. На белом фоне меченые подоб-
ным образом насекомые легко обнаруживаются по пятну соот-
ветствующей краски.
Изучение миграций личинок и взрослых может произво-
диться и более простыми способами. В небольших водоемах г
где распространение отдельных видов ограничено по течению
(иногда десятками-сотнями метров), перемещение популяций
вида можно выяснить регулярными наблюдениями через
2—3—5 дней за нижней границей распространения данного
28
вида. Для учета мигрирующих вниз по течению личинок реко-
мендуется расставлять улавливающий субстрат в виде веток
или стеклянных пластинок с определенной поверхностью (для
уточнения числа оседающих на единицу поверхности личинок).
Ветки желательно брать с деревьев, растущих вдоль обследуе-
мого водоема, и лучше из погруженных в водоем: на таких
ветках личинки оседают охотнее. Хорошо заселяются ветви
ивы, сосны, стебли злаков и осок. Для ясности картины при
специальном исследовании миграций нужно очистить водоем
от личинок, что можно сделать с помощью ларвицида (например,
эмульсии ДДТ). Для очистки 1—2 км водоема по протяжен-
ности достаточно влить в реку 20%-ю эмульсию ДДТ, объем
которой составляет около одной стотысячной секундного рас-
хода воды в водоеме. Учетные ветви или пластинки расстав-
ляются в небольших водоемах на расстоянии 5—10 м одна от
другой, преимущественно на перекатах, вниз по течению от
места выливания в воду эмульсии.
В больших реках, где подобная очистка водоемов с по-
мощью эмульсии затруднена, можно воспользоваться обнаже-
нием прибрежных лугов и островов в результате спада воды
после весеннего половодья или летних наводнений.
Значительное число видов, особенно кровососов, достигает
к этому времени стадии зрелой личинки или даже куколки.
Для обследования надо выбирать участки луга протяжением
около километра или более, так как в крупных реках миграции
личинок происходят на значительные расстояния. Обследуя
обнажающуюся травянистую растительность на территории
затопления сверху вниз по течению воды, можно обнаружить
куколок, а вначале и личинок. Так как личинки могут попасть
на затопляемую весной пойму реки лишь из ее русла, то по
расстоянию от постоянного ложа реки можно заключать о про-
тяженности миграций. Подсчитывая количество особей на одно
растение или на единицу поверхности (1 см2), можно составить
представление о количественной стороне миграции личинок
из водоема.
Для учета разлета кровососущих мошек можно собирать
их сачком вокруг себя в различном удалении от мест выплода.
Строгая стенотопность мошек, т. е. приуроченность личинок
каждого вида к определенньш местообитаниям, позволяет
в большинстве случаев судить с достоверностью о происхожде-
нии пойманных в воздухе кровососов, если, конечно, места
выплода изучаемых видов в данной местности предварительно
установлены. Как правило, виды крупных рек не развиваются
в мелких речках и обратно. Подобный учет для сравнимости
желательно производить либо в один день с помощью ряда
наблюдателей, расположенных в разных точках и в разном
29
удалении от мест выплода, либо одному наблюдателю с помощью
автомашины. Учет надо делать в разных точках на расстоянии
до 50 км по прямой от мест выплода.
ВСКРЫТИЕ МОШЕК
Вскрытие мошек требуется при изучении их как проме-
жуточных хозяев и переносчиков заболеваний для выявления
их внутренних паразитов, а также при изучении цикла раз-
вития мошек.
Инструментарий, необходимый для вскрытия свеже умерщ-
вленных мошек при изучении их органов и тканей, сводится
к следующему.
1.	Препаровальные иглы. Для целей препари-
рования пригодны обычные препаровальные иглы, употреб-
ляемые при микроскопии, или прямые хирургические иглы.
Препаровальные иглы с иглодержателем имеют то преимуще-
ство, что затупившуюся иглу легко сменить новой, острой, от-
винчивая винтовую шайбу. Можно также пользоваться гладким
оселком для затачивания игл. Обычные препаровальные иглы
слишком толсты и пригодны преимущественно для придержи-
вания объекта. На практике удобными оказываются более
тонкие энтомологические минуции, которые втыкаются тупым
концом в деревянный иглодержатель или попросту спичку.
2.	Копьевидная препаровальная игла
(рис. 13, В) для разрезывания объектов.
Копьевидный конец иглы или тонкого копьеца для удобства
загибается под углом 45°, как показано на рис. 13, Г Жела-
тельно затачивать конец копьеца в виде округлой лопаточки,
как рекомендует акад. Е. Н. Павловский (1935).
3.	Глазной пинцет с тонкими прямыми
остро отточенными концами.
4.	Тонкие прямые с острыми концами
ножницы или ножницы Беккера (рис. 13, Д').
5.	Стекла с округлыми гладкими углуб-
лениями (рис. 13, Л).
6.	Физиологический раствор. На 100 г дистил-
лированной воды растворяют 0.7—0.8 г чистой поваренной
соли.
7.	Бинокуляр с увеличением около х40.
8.	Микроскоп.
Свеже пойманных взрослых насекомых перед вскрытием
слегка замаривают хлороформом или серным эфиром. Замари-
вание следует прекращать как только у насекомого прекра-
тятся движения. Не следует замаривать более чем 2—3 особи
за раз, так как либо насекомые за время вскрытия 1—2-й особи
зо
оживут, либо, если погибнут, ткани их успеют деформиро-
ваться в своем тонком строении.
Чтобы покровы насекомого хорошо смачивались водой,
не плавали на ней, насекомое (Павловский, 1935) перед вскры-
тием берут пинцетом за крыло, на 1—2 сек. опускают в 96%-й
спирт, после чего тотчас же погружают в физиологический
раствор и выдерживают в растворе несколько секунд, пока
не прекратятся диффузионные токи. После этого насекомое
Рис. 13.
А — предметное стекло с углублениями для препаровки и изготовления микроско-
пических препаратов из насекомых; В — микроскопический препарат на предмет-
ном стекле и способ этикетирования; В, Г — копьецо для препарирования, сбоку
и сверху; Д— ножницы Веккера; Е— способ монтировки и этикетировки насе-
комого п препаратов из отдельных органов на энтомологической булавке.
переносится в небольшую каплю физиологического раствора
на предметное стекло с углублением.
Дальнейший способ препарирования зависит от целей,
которые преследуются вскрытием. Если изучению подлежит
средняя кишка, мальпигиевы сосуды, половые органы или
жировое тело с гемолимфой, то можно рекомендовать следую-
щие приемы. Левой рукой препаровальная игла втыкается
в грудь насекомого; ею придерживается тело мошки. Правой
иглой, по возможности более тонкой, надрываются х:итиновые
покровы брюшка между 8-м и 9-м сегментами брюшка. Если
считать сзади, то это будет за первым видимым сверху сегмен-
том (тергитом) (рис. 17, У). Надрыв постепенными движениями
увеличивается, пока межсегментальная перепонка не будет
разорвана вокруг всего брюшка. Лучше начинать разрыв
31
со спинной стороны и отсюда же расширять его вокруг тела.
Далее необходимо осторожными движениями вытянуть кишеч-
ник вместе с половыми органами из брюшка. Это удается легко,
если средняя
it
Рис. 14. Личинка, за-
раженная мермисом.
кишка не переполнена кровью. В последнем
случае желательно сделать надрыв брюшка
между 2-м и 3-м сегментами брюшка, счи-
тая сзади. Отрыв кишечника от его перед-
ней части происходит обычно в области
пищевода. Если зоб не переполнен, то
он вытаскивается неповрежденным вместе
с кишечником. Если зоб переполнен (об
этом можно судить по раздуванию брюшка
снизу в области 2-го стернита), то первый
надрыв следует делать между 2-м и 3-м
сегментами (считая спереди); второй над-
рыв делается, как обычно, между 8-м и
9-м сегментами (рис. 17, F), и кишечник
вытаскивается не из всего тела, а из ос-
тавшихся сегментов брюшка. Извлечен-
ный из тела кишечник вместе с задним
концом брюшка остается в физиологи-
ческом растворе; остальное удаляется.
Если исследованию подлежат средняя
кишка, мальпигиевы сосуды, зоб, то даль-
нейшего препарирования можно не произ-
водить, необходимо лишь расправить че-
тыре мальпигиевых сосуда и освободить
внутренние органы от излишних трахей.
В небольшой капле физиологического
раствора внутренние органы накрываются
покровным стеклом, и полученный таким
образом временный препарат исследуется
под микроскопом, сперва под малым, за-
тем под большим увеличением. На рис. 18
изображены важнейшие внутренние орга-
ны взрослого насекомого.
Если исследованию подлежат половые
органы, например яичник, семеприемник, придаточные железы
и др., то следует до накрывания покровным стеклом удалить
9-й сегмент, осторожно разрывая или разрезая его вдоль по
спинной стороне и отделяя затем с боков и снизу. В стенках
средней кишки развиваются оокинеты Leucocytozoon — простей-
шего, паразитирующего в крови птиц и передаваемого мош-
ками. Оокинеты можно изредка обнаружить лишь при большом
увеличении микроскопа (рис. 15, з, и). В среднем отделе задней
кишки или конце средней кишки, а иногда и прямо в полости
32
Рис. 15.
А — жизненный цикл Leucocytozoon simondi: а, б, в — развитие макрога-
мет; г, д, е — развитие микрогамет; ж— оплодотворение; а—оокинета; и,
к — оокинета проникает в стенки кишечника мошки; л, м — развитие спо-
розоитов; н — спорозоиты проникают в эндотелиальные клетки утки; о, п,
р, с — шизогония. Б — Г — стадии развития микрофилярий из р. Onchocerca;
Б — в теле хозяина; В — в переносчике (мошке) вскоре после кровососания;
Г—к концу развития в переносчике (стадия сосиски). А — по Кудо,
Б — по Гнединой.
тела (на позднейших стадиях развития) обнаруживаются пара-
зитические черви — мермисы (рис. 14). На свежем препарате
при соответствующем подборе освещения можно рассмотреть
(при увеличении микроскопа Х400—600) детали строения
клеток различных отделов кишечника и других органов.
Если необходимо проследить позднейшие стадии развития
возбудителей заболевания крови у птиц, передаваемых мош-
ками, необходимо выделение слюнных желез. С этой целью
вскрытие ведется несколько иначе. У насекомого, подготов-
ленного указанным выше образом, с помощью копьеца в фи-
зиологическом растворе срезается спинка (рис. 17, /). Насе-
комое придерживается левой иглой, воткнутой в нижний
отдел 1?руди. Правой иглой осторожно отрывается голова
и оттаскивается от тела. Вместе с головой при этом выделяются
•слюнные железы (рис. 17, VII). В слюнных железах при боль-
шом увеличении микроскопа иногда удается обнаружить даль-
нейшие стадии развития Leucocytozoon (рис. 15, м). В редких
случаях в голове обнаруживаются микрофилярии оихоцерк
в последних стадиях развития перед нападением насекомого
для кровососания.
Чтобы обнаружить личинок онхоцерк на более ранних
стадиях развития, необходимо обследовать передний отдел
кишечника и мускулатуру груди. Микрофилярии попадают
в тело мошки в момент кровососания. В первые же часы ли-
чинки онхоцерк из передних отделов кишечника, после пробо-
дения его стенки, проникают в мускулатуру груди, где проте-
кает их дальнейшее развитие, около 20 дней. Форма личинок
онхоцерк в различные моменты развития показана на рис. 15,
Б, Г. С целью отыскания этих паразитов препаровка ведется
в следующем порядке. Первым разрезом отсекается брюшко
(рис. 17, IV); вторым — отсекается голова; третьим — отсе-
кается верх груди. Передняя часть головы, спинка и брюшко
удаляются из капли. Из оставшейся части груди извлекаются
тонкой иглой мускулатура и средняя часть кишечника, за-
ключенная в груди, по возможности с слюнными железами.
После этого из капли удаляется нижняя часть груди с ногами.
Остаток, т. е. части кишечника, мускулатура груди, расщеп-
ляются иглами, заключаются под покровное стекло в физио-
логическом растворе и исследуются под микроскопом, сперва
при малом, затем при большом увеличении.
Для исследования половых органов и гонотрофического
цикла развития у мошек в препарат заключаются половые
органы (рис. 18, я) и жировое тело (рис. 18, вжт).
Для изучения токсических свойств слюны мошек могут
быть использованы методы изготовления эмульсий, разработан-
ные Е. Н. Павловским с сотрудниками для комаров и других
~34
кровососущих двукрылых. С этой целью вся посуда, в которой
ведется работа, а также инструментарий, стерилизуются.
Слюнные железы отпрепаровываются из насекомого в стериль-
9т
Рис. 16. Схема наружного строения взрослого на-
секомого (самца).
б— бедро; бо — бороздка на 2-м членике задней лапки;
в — вертлуг; г — голень; гк — гонококсит; гс — гоностиль;
гт — гоностерн; ад — заднее дыхальце; ж — жужжальцы;
к — коготки; кр — крыло; л — лапка; ли — лицо; ма —
макроомхматидии; 4te — мезоплевра; ми — микроомматидии;
п — парамеры; пд — переднее дыхальце; пя — пятка; с —
стернит; сп — спинка; т — тергит; та—тазик; ч,— 1-й
членик передней лапки; ч3 — 1-й членик задней лапки;
щ — щиток; шу — щупики; у — усики. Арабскими цифрами
обозначены по порядку сегменты брюшка (тергиты — т,
стерниты — с).
ном физиологическом растворе. Когда накоплено необходимое
количество органов (слюнных желез 10—20), их соединяют,
проверяют под лупой чистоту органов, удаляют лишнее
и растирают органы стеклянной оплавленной палочкой,
3*
35
предварительно обожженной на пламени горелки. Растирание-
удается, когда физиологического раствора в углублении пред-
метного стекла очень мало. После раздавливания органов
добавляется небольшое, но определенное (отсчитанное) коли-
чество капель физиологического раствора и все тщательно
перемешивается. Особенно необходимо следить за тем, чтобы
выделяемые слюнные железы или другие органы, временно
сохраняемые в небольшом количестве физиологического рас-
твора, не подсыхали. Если эмульсия испытывается не сразу,
то ее хранят на холоду или во влажном термостате (во избе-
жание высыхания). Эмульсию можно хранить не больше су-
Рис. 17. Схема препарирования взрослого насекомого (самки) при
вскрытии.
Цифрами 1—VI обозначен порядок расчленения насекомого ;1 VII — по-
ложение иглы при выделении слюнных желез; VIII — положение иглы при
выделении половых органов; ап—анальная пластинка; ц—церки.
ток. Для изучения действия слюны на кожу она вводится
иглами в поверхностные слои кожи, после чего производится
соответствующее исследование патологических изменений
покровов и подкожной ткани.
В некоторых случаях возможно использование эмульсий
из сухого материала. Для этой цели собираются части тела
насекомого, например, при изучении действия секрета слюнных
желез — грудь (голова, ноги, крылья и брюшко удаляются).
Для изготовления эмульсий .из сухих остатков тела их осто-
рожно растирают пестиком в порошок, прибавляют к нему
определенное количество капель физиологического раствора,
хорошо смешивают и оставляют на сутки во влажной камере.
Опыты Е. Н. Павловского и его сотрудников с экстрактами,
приготовленными подобным образом из слюнных желез кома-
ров, показали сравнимость получаемых результатов с дей-
ствием свежих эмульсий из тех же органов.
Методом вскрытия ведется (в его первоначальных этапах)
исследование внутренних паразитов тела мошек. Паразиты
тела мошек, особенно если учитывать не только взрослых
36
насекомых, но и личинок, очень многочисленны и разнооо-
разны. В кишечнике мошек найдены различные спирохеты
и жгутиковые. Помимо упомянутого выше Leucocytozoon у них
встречаются виды родов Crythidia, Herpetomonas и др. Из
споровиков грегарины (Tetraedrospord), Lankesteria и особенно
большое количество видов микроспоридий из родов Telohania,
Glugea, Serumsporidium и др. Из паразитических червей осо-
бенно разнообразны мермисы (сем. Mermitidae). Мермисы встре-
чаются как в личинках и куколках мошек, так и во взрослых
насекомых. Повидимому, все виды мошек заражаются этими
паразитами, судя по тому, что почти во всех обследован-
ных видах они обнаружены. Однако мермисы, заражающие
мошек, до сих пор совершенно не изучены. Крайне слабо
(известны только немногие виды) изучены также и микроспо-
ридии. Помимо мсрмисов в мошках развиваются уже упоми-
навшиеся выше онкоцерки, для которых самки мошек являются
промежуточными хозяевами-переносчиками. Во взрослых на-
секомых обнаружены также представители других круглых
червей (Diplogaster sp. и др.). В теле мошек развивается зна-
чительное число паразитических грибов; в личинках: Наг-
pella, Entomorpha, Achorion, Saprolegnia и др.; во взрослых —
весьма своеобразные паразитические сумчатые грибы. Все они
практически совершенно не изучены.
Изучение клеточных элементов гемолимфы, а также микро-
скопических паразитов крови насекомых можно проводить
на свежих препаратах, которые приготовляются, как было
указано выше, а также на срезах (см. ниже) и мазках, изго-
товляемых обычным образом на предметных стеклах и окра-
шиваемых различными красками, в зависимости от задач,
которые ставятся исследованием.
ИЗГОТОВЛЕНИЕ МИКРОСКОПИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ И ОПРЕДЕ-
ЛЕНИЕ МОШЕК
Определение мошек до вида по внешним признакам в боль-
шинстве случаев невозможно из-за необычайного внешнего
сходства близких видов. Особенно трудно определение самок
и личинок, т. е. тех фаз развития, в которых насекомые чаще
всего попадают в руки исследователя. Определение самок
к тому же и практически наиболее существенно. Наибольшее
затруднение вызывает определение одноцветно черных самок
в родах Eusimulium, Cnephia и Schonbaueria. Самки родов
Odagmia, Simulium и других с желтоватыми и серебристыми
пятнами на ногах различаются лучше. Однако значительная
индивидуальная изменчивость делает затруднительным раз-
личение самок близких видов и в этих родах. Надежные
37
различительные признаки почти всегда отчетливо выражены
лишь в строении наружных половых придатков самца. У са-
мок хорошие отличительные признаки обнаруживаются также
в строении некоторых деталей половых органов (вилочка,
анальные пластинки и др.). Отличительные признаки видов
у личинок сосредоточены в строении ротовых органов и в хе-
тотаксии. Все перечисленные признаки при наружном осмотре,
даже при больших увеличениях бинокуляра, нельзя рас-
смотреть. В связи с этим для различения близких видов мо-
шек приходится прибегать к изготовлению микроскопических
препаратов. Лишь у куколок отличительные признаки видов
проявляются в строении кокона и дыхательных нитей, которые,
можно рассмотреть и под бинокуляром. Однако и здесь
близкие виды по строению этих органов иногда слабо разли-
чаются. Нередко виды, хорошо различимые в одной фазе,
плохо различаются в другой. Это требует одновременного
исследования различных фаз развития данного вида. Пере-
численные обстоятельства тормозили систематическое изучение
видов семейства мошек, и видовой состав их до настоящего
времени еще недостаточно полно выявлен, особенно в горных
районах. Все изложенное требует при определении видов,
наряду с детальным внешним осмотром различных фаз раз-
вития, изготовления микроскопических препаратов. Только
под микроскопом обнаруживаются надежные различительные
признаки близких видов.
В практике определения различных фаз развития мошек
до последнего времени используются только хитиновые струк-
туры. Поэтому перед изготовлением микроскопического пре-
парата из личинки или взрослого насекомого его вываривают
в едком кали. При этом все мягкие внутренние ткани мацери-
руются, а сохраняющиеся хитиновые покровы приобретают
необходимую при препаровке мягкость и упругость. Для
мацерирования пользуются 8—10 %-м раствором едкого кали.
Удобнее всего помещать объект в указанный раствор едкого
кали на сутки. При кипячении в едком кали срок мацерации
сильно сокращается, но это сопряжено с некоторыми неудоб-
ствами и иногда сопровождается гибелью или порчей матери-
ала. Для обработки едким кали необходимо отбирать подхо-
дящие или пригодные особи из всего сбора. Личинки должны
быть зрелыми, о чем заключают по наличию на боках груди
черных грушевидных пятен (свернутые в клубок дыхательные
нити будущей куколки). Желательно, чтобы такая личинка
имела выпяченные ректальные придатки. Перед опусканием
личинки в едкий кали у нее отрезаются ректальные придатки
и заключаются в бальзам на то же предметное стекло, на кото-
ром будут впоследствии заключены прочие детали строения
38
дичинки. О способе заключения в бальзам см. ниже. Можно
также сохранять в спирте отрезанные ректальные придатки
до тех пор, пока вся личинка не будет подготовлена для пре-
парирования и заключения в бальзам. В этом случае ректаль-
ные придатки заключаются позднее, вместе с прочими деталями
строения. Куколки, отбираемые для микроскопических пре-
паратов, должны быть зрелыми, т. е. содержать вполне раз-
вившихся и сформировавшихся взрослых насекомых. Зрелые
куколки отличаются черной окраской; органы взрослого насе-
комого (глаза, ноги и др.) отчетливо просвечивают сквозь
хитиновые покровы.
Из взрослых насекомых для изготовления микроскопических
препаратов предпочтительно брать особи из спирта, а среди
сухих сборов — выбирать помятые или обтертые экземпляры,
так как хорошо сохранившиеся особи потребуются для изу-
чения внешних признаков. Личинка (после отделения рек-
тальных придатков) и куколка самки погружаются в едкий
кали целиком. Куколок самцов лучше накалывать на энто-
мологические булавки, отделяя для микроскопического пре-
парата лишь задний конец их тела. То же необходимо дейать
и с взрослыми насекомыми-самцами, в связи с тем, что отли-
чительные признаки у них сосредоточены на заднем конце
тела, в половых придатках. Сухие сборы предварительно
помещаются во влажную камеру (эксикатор), после чего конец
брюшка под бинокуляром отрезается ножницами Беккера.
Вынутые из едкого кали особи или части тела куколки
или самца предварительно промываются в воде в течение
10—15 минут. Если одновременно изготовляется несколько
препаратов и притом не из целого насекомого, а из отдельных
частей его тела, то необходимо перенумеровать баночки с ед-
ким кали и дальнейшую обработку водой, спиртами и маслом
для заключения в бальзам сопровождать номером данной
особи. После промывки насекомого в воде оно переносится
на предметное стекло с углублениями (рис. 13, Я).
Перед препарированием необходимо тщательно ознако-
миться с общим планом строения взрослого насекомого (рис. 16),
личинки (рис. 19) и куколки.
Расчленение насекомого ведется в определенной последова-
тельности, которая показана на рис. 17 и 20. Разрезы удоб-
нее всего производить с помощью тонкого и острого лопато-
видного копьеца, конец которого загнут под углом около
45° по отношению к ручке (рис. 13, В). Расчленение насекомого
ведется под бинокуляром при увеличении около х 40. Левой
рукой с помощью препаровальной иглы насекомое придержи-
вается на предметном стекле. Копьецом в правой руке произво-
дятся разрезы по линиям, указанным на рисунке. Для этого
39
следует слегка прижать копьецо и покачать его вправо и влево
по линии разреза, придерживая насекомое левой препароваль-
Рис. 18. Схема внутреннего строе-
ния взрослого насекомого (самки).
а — аорта; 1 ао — анальное отверстие;
бц — брюшная цепочка; вжт — внутрен-
ний слой жирового тела; гг — грудные
ганглии; гл — глотка; глн — глоточный
насос; з — зоб; ак—задняя кишка; ксп—
канал семеприемника; мг — мышцы гру-
ди; мс — мальпигиевы сосуды; нг — над-
глоточный ганглий; нжт—наружный
ялой жирового тела; п—пищевод; пг—
подглоточный ганглий; пж—придаточ-
ные железы; по — половое отверстие;
пск — передний отдел средней кишки;
ра — ректальная ампула; ро — ротовое
отверстие; с — сердце; сж — слюнные же-
лезы; ск — средняя кишка; сп — семе-
приемник; я — яичник.
а—аорта; ао—анальное отвер-
стие; в — веера; гн — грудная но-
га; эк — задняя кишка; мд — ман-
дибула ; мк — максилла; мс —
мальпигиевы сосуды; — нерв-
ная цепочка; п— пищевод; пг —
подглоточный ганглий; пж— пау-
тинные железы; ро — ротовое от-
верстие ; ск—средняя кишка; тр —
трахейные стволы.
ной иглой. Препарирование ведется в воде, а еще лучше в воде
с небольшим количеством глицерина (для предотвращения
40
быстрого высыхания), но не в спирте (быстро высыхает). У ли-
чинки первым разрезом отрезается задний прикрепительный
орган. Затем отделяется голова. Далее тонкой иголкой из груд-
ного отдела выделяются дыхательные нити, удаляются лишние
части, не заключаемые в препарат (остаток тела). Очищают
каплю от излишних и ненужных обрывков. После этого присту-
пают к препаровке головы. Первым разрезом голова разре-
зается продольно, параллельно горизонтальной плоскости,
приблизительно на высоте глаз. После разреза обе половины
головы кладутся наружными поверхностями на стекло, раз-
резом вверх. Дальнейшая препаровка ведется с помощью
двух тонких пгл, лучше всего минуций. Придерживая левой
иглой хитиновую оболочку половины головы, правой — от-
деляют максиллы, мандибулы, гипофаринкс. У нижней поло-
вины головы должен быть хорошо очищен субментум. Если
края головной капсулы с двух сторон срезаны неровно или
сильно загибаются, их необходимо симметрично надрезать по
краям субмептума, в сагиттальном направлении, чтобы суб-
ментум на препарате лежал в строго горизонтальном положе-
нии. Верхнюю половину головной капсулы необходимо очи-
стить, действуя иголками правой и левой рук. Здесь важно
добиться раскрытия вееров. Для этого левой иглой стебелек
прижимается у его основания, правой — нажимом на стебелек я
отгибанием щетинок расправляются веера. Далее, нужно по воз-
можности расправить дыхательные нити так, чтобы можно было
сосчитать их число и получить представление о характере их
ветвления. После того как все детали отпрепарованы и лишние
части удалены за пределы предметного стекла, всё остающееся
и подлежащее заключению в препарат проводится через спирты.
Для проведения через спирты и масло удобно пользоваться
упомянутым выше стеклом с тремя углублениями. В первом
углублении производится препаровка, во втором — проведение
через спирты: пипеткой последовательно прибавляется сперва
70%-й, затем 96%-й и, наконец, абсолютный спирт. Кусочком
пропускной бумаги оттягивается сменяемый спирт. Из спирта
детали переводятся тонкой иглой или тонкой лопаточкой в третье
углубление предметного стекла с гвоздичным маслом. В каждом
из спиртов хитиновые детали выдерживаются около 3—5 мин.
и в гвоздичном масле — около 10 мин. После этого детали пере-
носятся на предварительно подготовленное предметное стекло.
Подготовка предметного стекла сводится к тому, что оно чисто
протирается, в центр стекла наносится капля негустого канад-
ского бальзама, на стекле капля расширяется до размеров
покровного стекла, подготовляется (протирается) покровное
стекло. Тонкой иглой детали из масла переносятся в канадский
бальзам, располагаются в желательном порядке, под биноку-
41
ляром проверяется их расположение, расправляются веера,
и после этого капля осторожно накрывается покровным стек-
лом. Временный номер препарата должен быть заменен
этикеткой, которая пишется на двух полях предметного
стекла: слева — место, время, сборщик, справа — номер
и название вида. При отсутствии хорошего клея (канцеляр-
ский клей для этой цели не пригоден) можно наносить тонкую
пленку канадского бальзама по двум сторонам предметного
Рис. 20. Примерный порядок рассечения
личинки (А), куколки (Б) и взрослого
насекомого (самца) (В) при изготовлении мик-
роскопического препарата.
Цифрами обозначен порядок рассечения.
стекла, тонко растирая его. После высыхания такой пленки
на стекле можно писать тушью содержание этикетки. В связи
с тем, что размеры заключаемых в препарат деталей строения
личинки очень мелкие, мы в своей практике пользуемся не-
большими покровными стеклами, размерами около 1x1 см.
Для получения подобных стекол или близких к ним по раз-
меру можно разрезать крупные покровные стекла на четыре
части.
Изготовление микроскопических препаратов из куколки
для самки ведется по схеме, указанной на рис. 20, Б. Предва-
рительно куколка извлекается из кокона. Затем у куколки
•отделяются дыхательные нити и голова. Голова разрезается
42
в поперечном направлении, а орюшко — в продольном, гори-
зонтальном. Все части хитиновой оболочки куколки, в особен-
ности же головной склерит, спинную и брюшную половину
брюшка необходимо сохранить для препарата. У зрелых ку-
колок-самцов следует выделять лишь половые придатки. За-
ключение отдельных детален в препарат ведется по топ же
схеме, что выше описана для личинок.
Препарирование взрослого насекомого, пойманного в воз-
духе, отличается тем, что перед заключением его в едкий кали
для мацерации необходимо отделить крылья и заключать их
в препарат отдельно. У взрослых самок, вынутых из едкого
кали и рассеченных по схеме, указанной на рис. 20,5, отбрасы-
вается лишь грудь, а также некоторые хитиновые остатки
внутренних органов брюшка и, в частности, трахеи. Все осталь-
ное должно быть заключено в препарат. В особой дополнитель-
ной препаровке нуждаются голова у самок и половые придатки
у обоих полов. Из головы после разреза необходимо выделить
верхнюю и нижнюю челюсти (максиллы и мандибулы), а также
ротоглоточный склерит и гипофаринкс. В половых придатках
самки особого внимания требует препаровка так называемой
вилочки и анальных пластинок (рис. 21). В связи с тем, что на-
званные склериты располагаются в разных плоскостях, их
необходимо разделить, чтобы в препарате можно было располо-
жить их в горизонтальном положении. С этой целью иголками
делается разрыв межсегментальной перепонки брюшка, между
8-м и 9-м тергитами. После разрыва иглой оттягивается 9-й
тергит. Вместе с 9-м тергитом отделяется вилочка. Далее
должны быть отделены и расположены в горизонтальной
плоскости генитальные и анальные пластинки. У самцов
особо детальной препаровки для изготовления микроско-
пического препарата требуют наружные половые придатки
>(рис. 22). Необходимо хорошо усвоить план их строения и взаим-
ного расположения отдельных склеритов, чтобы не потерять
их при препаровке. Почти все склериты мужских половых
придатков устроены своеобразно и характерно для каждого
вида. В связи с тем, что детали эти очень мелкие, рекомен-
дуется выделить копулятивный аппарат или гениталии целиком
и провести через спирты до масла, не расчленяя на отдельные
склериты. Расчленение производится в масле, перед заключе-
нием отдельных деталей описанным выше образом в канадский
бальзам. У многих видов гоностили и гоностерн (см. рис. 22)
имеют сложное строение; иногда гоностили спирально изогнуты
и для целей определения их важно изучить в двух раккурсах —
снизу и сбоку. Поэтому гоностили и гоностерн нужно рассмо-
треть (и в необходимых случаях зарисовать) еще в масле
до заключения в бальзам. Желательно, чтобы в препарате
43
гоностили располагались в двух раккурсах: один с вентраль-
ной стороны, другой — в профиль.
При изготовлении препарата только из гениталий самцов
их рекомендуется заключать в бальзам не на предметном стекле,
а среди двух покровных стекол, размерами 6х6мми6х12 мм.
Рис. 21. Схема строения
наружных половых при-
датков самки.
ап—анальные пластинки;
в — ветви вилочки; гп — ге-
нитальные пластинки; с8 —
8-й стернит; се — стебелек
вилочки; т9 — 9-й • тергит;
ц — церкп.
Рис. 22. Схема строения наружных поло-
вых придатков самца.
ао — анальное отверстие; гк — гонококсит; гп —
гоноплеврит; ас—гоностиль; гт—гоностерн;
гф — гонофурка; по — половое отверстие; пп —
парамеры; св — 9-й стернит; шв—9-й тергитг
Сю—10-й стернит; т10— 10-й тергит; ц—церкп.
К большему стеклу приклеивается из плотной белой бумаги
обойма. Через обойму препарат возможно подколоть на энто-
мологическую булавку к той самой особи, из которой сделан пре-
парат гениталий. На обойме ставится номер препарата, который
повторяется и подкалывается на особой небольшой квадратной
этикетке на той же самой булавке (рис. 13, Е), Это необходимо
во избежание путаницы препаратов.
44
Для временных препаратов в полевой обстановке пользуются
глицерином. Чтобы объект не сморщивался, необходимо перед
опусканием в глицерин проводить его через смесь глицерина
с водой в равных объемах.
Вместо канадского бальзама иногда пользуются гуммиара-
биковыми смесями. Это значительно упрощает изготовление
микроскопических препаратов, так как при этом нет надобности
проводить их через спирты и масло. После расчленения в воде
хитиновые детали переносятся сразу в гуммиарабиковую смесь.
Примером подобных смесей может быть следующий: смеши-
ваются 40 частей гуммиарабика, 20 частей глицерина, 50 ча-
стей хлорал-гидрата и 50 частей дистиллированной воды. Недо-
статком гуммиарабиковых смесей является то, что в них
хитиновые детали слабо просветляются. При загрязненном
гуммиарабике иногда выпадают кристаллы, что совершенно
портит препарат. Поэтому при стационарной работе с редким
или ценным материалом лучше пользоваться канадским бальза-
мом.
После изготовления препаратов можно приступать к опре-
делению видов. С этой целью вначале насекомые изучаются
со стороны их внешних признаков, после чего изучаются
микроскопические препараты. Только после этого можно при-
ступить к определению. При определении мошек нельзя ограни-
чиваться определительными таблицами. Необходимо сравнивать
строение рассматриваемых на микроскопическом препарате
деталей с изображениями их. Далее следует изучить диагноз
вида. В сомнительных случаях нельзя ограничиваться изу-
чением одной какой-либо фазы. Во многих случаях необхо-
димо проверять определение по другим фазам развития, если
они, конечно, имеются в распоряжении исследователя.
При затруднениях в определении или его невозможности
материал следует переслать для определения по адресу: Ле-
нинград, 164, Зоологический институт АН СССР.
Пробирки и банки со спиртовыми сборами должны быть
плотно закрыты хорошо пригнанными пробками, залиты во-
ском или парафином во избежание высыхания. При необходи-
мости пересылки они завертываются в несколько слоев бумаги
или ваты и перекладываются стружками. Стеклянные банки
не должны прикасаться к стенкам ящиков, в которые они
упаковываются. Их необходимо отделять от стенок слоем
стружек или ваты. Сухие сборы монтируются на энтомологи-
ческие булавки, как показано на рис. 13, Е. При отсутствии
минуций (очень тонких булавочек) насекомые могут приклеи-
ваться канадским бальзамом или рыбьим клеем к острым бу-
мажным треугольникам, укрепляемым на энтомологических бу-
лавках. Булавки с насекомыми при пересылке должны быть
45
хорошо воткнуты в торфяное дно специально изготовляемых:
для этой цели коробок. В коробки с сухими сборами желательно-
класть в пакетиках нафталин. Снаружи коробки должны быть
заклеены ленточками бумаги, чтобы в них не проникали на-
секомые — вредители коллекций.
Иногда требуется изучение внутреннего строения мошек
па срезах, например при развитии половых продуктов, при
поисках внутренних паразитов у переносчиков и т. д. В этих
случаях необходимо пользоваться специальными методами
фиксирования насекомых в специальных жидкостях, заливкой
их в парафин, изготовлением срезов на микротоме, окраской
их с последующим заключением в микроскопический препарат.
Наиболее простым и доступным фиксатором, который здесь
можно упомянуть, может быть жидкость Карнуа. Смешивают
60 частей абсолютного спирта, 30 частей хлороформа и 10 ча-
стей ледяной уксусной кислоты. Фиксируют от 5 до 30 мин.,
в зависимости от размеров объекта. Фиксированный объект
выдерживают в 96%-м спирту, который сменяется несколько
раз. Способы заливки объекта в парафин, изготовления срезов,
их наклейки и окраски не отличаются каким-либо своеобра-
зием от общепринятых приемов. Они описываются в пособиях
по микроскопической технике, среди которых можно упомя-
нуть книгу Г. И. Роскина «Микроскопическая техника» (Москва,.
1945).
МЕТОДИКА ИСПЫТАНИЯ ИНСЕКТИЦИДОВ ДЛЯ БОРЬБЫ
С ЛИЧИНКАМИ МОШЕК
Растения с личинками извлекаются из водоема и в ведре
переносятся в лабораторию. В лаборатории личинки разби-
раются по стадиям развития, т. е. практически по размерам.
Рационально разбить популяцию личинок на четыре катего-
рии: 1) самые мелкие, размерами до 1 мм, 2) мелкие — длиной
около 2—3 мм, 3) средние — размером около 3—4 мм и 4) зре-
лые личинки с имагинальными зачатками, размерами 5—7 мм.
Личинки выбираются мягким пинцетом или кисточкой в 4 чашки
Петри с водой, в соответствии с размерами личинок. После
того, когда собрано достаточное количество личинок (200—300
особей), можно приступить к испытанию инсектицида. Заранее
заготовляется: 1%-й раствор или эмульсия инсектицида (ДДТ
и др.), которая перед самым опытом разводится до необходи-
мой концентрации (1 1000 000—1 10 000000 и др.); открытые
с двух сторон стеклянные цилиндры диаметром около 3 см,
длиной около 15 см; кусочки газа размером 6x6 см с резино-
выми кольцами для закрывания одного из концов цилиндра
(рис. 23, Л); стеклянные стаканы для растворов, суспензий.
46
я эмульсий инсектицида, размером около 500 см3. Перед нача-
лом опыта цилиндры с одного конца покрываются кусочками
газа, не бывшего ранее в употреблении. Цилиндр ставится
в стакан закрытым концом вниз, и в него опускается 25 личинок
Д
Рис. 23. Посуда и схема опытов
по испытанию инсектицидов против ли-
чинок.
А — стеклянный цилиндр (си), у которого один конец с помощью резинки (р) завязан
газом (г); Б — цилиндр опускается в чистый стакан (с) и заполняется из пипетки (п)
личинками (л); В — цилиндр с личинками опускается в раствор инсектицида (и);
Г—в цилиндр опускается листок (л), после чего второй конец его завязывается
газом; Д — в цилиндр с обработанными личинками подводится вода через стеклян-
ную трубку (ст) в пробке (пр), покрытой кусочком газа (г); Е — три связанных
вместе цилиндра прикрепляются бечевкой (б) к колышку в текучей воде. Стрелкой
показано направление тока воды.
испытываемой стадии. Выбор личинок из чашек Петри для пе-
реноса в цилиндры лучше всего производить с помощью круп-
ной пипетки, которой засасываются личинки вместе с водой
(рис. 23, Б). Одновременно заполняется по меньшей мере три
47
одинаковых цилиндра — один для контроля и два для испы-
тания в инсектициде. После этого цилиндры с личинками для
опыта вынимаются из воды и выдерживаются некоторое время
над стаканом, чтобы дать стечь воде через газ полностью.
Личинки при этом оказываются на газовой покрышке. Затем
цилиндр с личинками погружается в испытываемый раствор
инсектицида на 30 мин. Один из трех цилиндров оставляется
в воде для контроля, два других — помещаются в другие
стаканы с растворами одной или двух различных испытывае-
мых одновременно концентраций (рис. 23, В). В то время, когда
цилиндрыжс личинками находятся в растворе инсектицида,
подготовляются следующие партии личинок в чистых цилин*
драх. Опыт желательно ставить в двух-трех повторностях.
После 30-минутной экспозиции цилиндр с личинками выни-
мается из раствора инсектицида и промывается водой из-под
крана. Затем в цилиндр вносится кусочек листа в 1—3 см2
в качестве субстрата для прикрепления личинок. Далее цилиндр
переносится в текучий водоем или под кран, если к этому
имеются возможности в лаборатории. С этой целью завязы-
вается газом второй, до сих пор открытый конец цилиндра,
указанным выше образом, т. е. с помощью резинового кольца
(рис. 23, Г). Если дальнейшие наблюдения ведутся в лабора-
тории, то в ранее открытый конец цилиндра для удобства может
быть введена пробка с стеклянной трубкой, подводящей воду
(рис. 23, Д). Поступающая в цилиндр вода стекает через ниж-
ний конец цилиндра, который в свою очередь находится в не-
глубоком стеклянном стакане или в чашке Коха. Если для даль-
нейшего наблюдения цилиндр переносится в водоем (жела-
тельно в тот самый, из которого личинки были взяты для опыта),
то цилиндры связываются бечевкой (рис. 23, Е), которая при-
крепляется к колышку в струе воды таким образом, чтобы
вода проходила через цилиндры и омывала находящихся в них
личинок. Учет производится через 36—48 часов. Смертность
личинок выражается в процентах по отношению к контролю.
Кусочки газа, однажды побывавшие в опыте с инсектици-
дами, не могут употребляться вторично. При повторном упо-
треблении стеклянные цилиндры нуждаются в тщательной про-
мывке, прокаливании или даже специальной химической обра-
ботке.
Весьма важным является вопрос о растворителях инсекти-
цида в тех случаях, когда он не растворяется в воде. Для орга-
нических препаратов рекомендуется ацетон и этиловый алко-
голь, которые при разведении до 1:1 000 000 не оказывают за-
метного токсического влияния на личинок.
Практически более определенные результаты могут быть
получены полевыми испытаниями инсектицида. Наиболее при-
48
годен для этой цели ДДТ в форме эмульсии (10—20%), изго-
товляемый на заводах. Эмульсия вводится в водоем, в месте
массового -заражения его личинками. Опыты осуществлены
пока в небольших водоемах с расходом воды до 5 м3/сек.
Эффективными оказываются концентрации инсектицида около
1 1 000 000, действующие в течение 5—6 минут. Для расчета
количества потребной эмульсии нужно знать средний расход
воды в секунду в куб. м. Он определяется умножением среднего
поперечного сечения водоема в кв. м на среднюю скорость те-
чения в м в сек. Одна миллионная секундного расхода воды
помножается па 300—360 (время действия эмульсии), что дает
количество инсектицида (в чистом виде, в тоннах), необходи-
мого для обработки водоема. Для вычисления количества
инсектицида в форме 20% эмульсии полученная цифра умно-
жается на 5, для 10% — на 10. Эмульсия предварительно
разводится в 2—3 раза и все потребное количество выливается
в водоем в течение 3—5 минут. Учет смертности личинок
производится через 24 часа после опыта.
МЕТОДИКА ИСПЫТАНИЯ И ТЕХНИКА ПРИМЕНЕНИЯ ИНСЕКТИ-
ЦИДОВ ДЛЯ ЗАЩИТЫ И БОРЬБЫ СО ВЗРОСЛЫМИ МОШКАМИ
Защита против кровососов и борьба с ними давно при-
влекают внимание человека. После появления органических
контактных инсектицидов они становятся важнейшим и ос-
новным средством борьбы с малярийными комарами и не-
которыми другими кровососущими двукрылыми. Детально
разработаны меры защиты от окрыленных комаров и способы
истребления их пе только в помещениях, но и вне жилища
человека, в природной обстановке. Выяснены дозировки,
разработана методика и техника, создана специальная аппара-
тура для истребления комаров. Существуют аппараты для при-
менения высокотоксичных инсектицидов в виде жидкостей,
порошков, аэрозолей и дымовых шашек. Существует обшир-
ная литература по методике и технике применения инсекти-
цидов. Опыт, приобретенный в борьбе с малярийными кома-
рами, переносится сейчас и на борьбу с мошками.
Способы полевого испытания и прпменения инсектицидов
сопряжены со специальной техникой: пульверизаторами,
опрыскивателями, распылителями, аэрозольными генерато-
рами, с автомобилями и самолетами. Способы лабораторного
испытания инсектицидов в связи с высокой токсичностью
препаратов требуют относительно точного химического и фи-
зиологического анализа. Вместе с тем, интересующая нас
здесь специфика применения инсектицидов против малярий-
ных комаров в качестве средства борьбы с мошками пока
4 И. А. Рубцов	49г
должным образом не выяснена. То же можно сказать и про при-
менение отпугивающих веществ (репеллентов). Существующая
методика и техника испытания и применения многочисленных
отпугивающих веществ разработана преимущественно против
кровососущих двукрылых вообще. Гораздо слабее разработаны
все эти вопросы применительно к мошкам. Для ознакомления
с вопросом достаточно указать на работу Набокова (1952). Свой-
ства, применение и методы испытания ДДТподробно освещаются
в книге Мельникова, Набокова и Покровского (1954). В двух
названных книгах приведена литература вопроса. Изложение
всех этих данных выходит за рамки настоящей инструкции,
ориентированной преимущественно на вопросы биологического
исследования мошек. Дополнительные сведения по защите
от кровососов и методам борьбы с летающими кровососами,
в частности с мошками, можно найти в книге Павловского,
Первомайского п Чагина (1951).
ОЧЕРЕДНЫЕ ВОПРОСЫ ИССЛЕДОВАНИЯ МОШЕК
Мошки среди других кровососущих двукрылых — одна из
весьма слабо изученных групп. Для начинающего работника
полезно знать, какие вопросы изучения этой группы представ-
ляются первоочередными на современном этапе.
1.	Видовой состав мошек данной местности (по материалам
из водоемов).
2.	Видовой состав кровососущих видов изучаемой области
(по нападающим насекомым).
3.	Фенология важнейших видов (прежде всего даты и сроки
окукления, вылета, лёта и откладки яиц).
4.	Биология яиц (время, местонахождение, характер яйце-
кладок, продолжительность развития яиц).
5.	Зимовка (выяснение фазы, в которой зимуют мошки).
6. Питание личинок.
7.	Миграции личинок.
8.	Влияние колебаний уровня водоемов, загрязнения,
вырубки леса и других хозяйственных мероприятий на колеба-
ния численности мошек в водоемах и в воздухе.
9.	Активность нападения в зависимости от погодных ус-
ловий.
10.	Миграции взрослых от мест выплода (расстояние,
направление, зависимость от внешних условий).
И. Биология факультативных кровососов (места укрытия
и дневок, кормовые растения, роль дополнительного питания
нектаром, условия и факторы факультативности кровососания,
роль голодания).
.50
12.	Гонотрофический цикл у облигатных и факульта-
тивных кровососов, количество гонотрофических циклов.
13.	Специализация кровососов. Роль птиц и диких живот-
ных в природе как допоров крови.
14.	Ограничивающие факторы (абиотические и биотические).
Паразиты и хищники личинок. Факторы смертности взрослых
насекомых.
15.	Медико-ветерпнарное значение мошек. Экономический
ущерб от мошек (потери от снижения трудоспособности человека
и продуктивности животных). Роль мошек как переносчиков
онхоцеркозов и заболеваний крови у птиц.
16.	Испытание ларвицидов для борьбы с мошками в водо-
емах.
17.	Усовершенствование методики и техники борьбы со взрос-
лыми насекомыми в природе, вокруг человека и животных.
ЛИТЕРАТУРА
Абусалимов Н. С. 1947. Кровососущие мошки в Азербайджане.
Ветеринария, 7 : 41—42.
Алычев Е. С. 1952. Интоксикация лошадей мошками кровососами
Simulium pusilium Fries и Simulium subpusilium Rubz. Tp. Ере-
ванского зоовет. ин-та, 14 163—169.
Андреев К. П. и А. М. Митрофанов. 1955. Возможности
применения и эффективность дымовых гексахлорановых шашек
для уничтожения гнуса в открытой природе. Тезисы докл. VIII
Совещ. по паразитолог, пробл., М.—Л.: 8—10.
Андреев К. П. и С. Д. Павлов. 1955. К вопросу о накожном при-
менении ДДТ и гексахлорана сельскохозяйственным животным
для борьбы с гнусом и профилактики трансмиссивных болезней.
Тезисы докл. VIII Совещ. по паразитолог, пробл., М.—Л.: 10—12.
Андреев К. П. и Г. И. Янович. 1955. Новые средства для хими-
ческой защиты людей и животных от нападения гнуса. Тезисы
докл. VIII Совещ. по паразитолог, пробл., М.—Л.: 14—16.
Бельтюкова К. Н. 1954. Онхоцеркоз крупного рогатого скота
в Молотовской области. Уч. зап. Молотове к. Гос. унив. им.
А. М. Горького, 8,4 103—107.
Бельтюкова К. Н. 1955. К изучению кровососущих мошек
(Simuliidae) Молотовской области, ч. 1. Фауна и экология мошек
Кишертского района и меры борьбы с ними. Уч. зап. Молотовск.
Гос. унив. им. А. М Горького, 7, 3 : 23—43.
Бенинг А. Л. 1924. О мошках нижней Волги. Русск. гидробиол.
журн., 7, № 3.
Берзина А. Н. 1953. Нападение мошек на человека в природе. Па-
разитолог. сб. ЗИН’.^.Н СССР, 15 353—385.
Бреев К. А. 1950. О поведении кровососущих двукрылых и оводов при
нападении их на северного оленя и ответных реакциях оленей.
Паразитолог, сб. ЗИН АН СССР, 12 167—198.
Бреев К. А. 1951. II. Стадность у северного оленя, как фактор защиты
от нападения кровососов и оводов. Паразитолог, сб. ЗИН АН
СССР, 13 : 343—354.
Гладей к о И. Н. и В. А. Фортушный. 1952а. Широкий опыт
борьбы с кровососущими двукрылыми насекомыми с помощью
ДДТ и гексахлорана. Научи, тр. Укр. ин-та эксперим. ветер., 19
182—185.
Гладенко И. Н. иВ. А. Фортушный. 19526. Авиаопыление
биотопов контактными ядами как метод борьбы с кровососущими
двукрылыми насекомыми в открытой природе. Научн. тр. Укр.
ин-та эксперим. ветер., 19 186—200.
Гнедина М. П. 1948. К изучению этиологии онкоцеркоза крупного
рогатого скота. Сб. работ по гельминтолог., М., 91—97.
52
Гнедина М. П. 1949. Онхоцеркозы кожи крупного рогатого скота и
борьба с ними. Ветеринария, 9 : 31—32.
Гнедина М. П. 1950. К биологии нематоды Onchocerca gutturosa
Neumann, 1910, паразитирующей у крупного рогатого скота. ДАН
СССР, 70, 1 169—171.
Горбань Н. И. пМ. М. Воробьев. 1949. Заболевание крупного
рогатого скота и лошадей от укусов мошек («мелюзино-токсикоз»).
Ветеринария, 6 : 30—31.
Грунин К. Я. 1949. Ошибки инстинкта при паразитарной кастрации
у Prosimulium hirtipes Fries (Diptera, Simuliidae). ДАН СССР,
н. с., 66, 2 : 305-307.
Г у ц е в и я А. В. 1937. Материалы по изучению гнуса (кровососущие
двукрылые насекомые) на Дальнем Востоке. Тр. Военно-мед. акад.
РККА им. Кирова, 8 : 151—169.
ГуцевичА. В. 1939. Кровососущие двукрылые Забайкалья. Тр.
Военно-мед. акад. РККА им. Кирова, 19 : 35—47.
Гуцевич А. В. 1940. Материалы по изучению кровососущих двукры-
лых (гнуса) Северо-Уссурийской тайги. Зоолог, журн., 19, 3 : 428—
444.
Гуцевич А. В. 1943. Кровососущие двукрылые насекомые Присур-
ского лесного массива (Чувашская АССР). Зоолог, журн., 22, 1
19—26.
Давыдов Ю. Н. 1939. Ответные реакции организма лошади при сеп-
сисе на почве онхоцеркоза. Ветеринария, 2 : 23—26.
Джафаров Ш. М. 1952. Мошка Знойко (Eusimulium znoikoi Rubzov)
из р. Куры. ДАН Азерб. ССР, 10 559—562.
Джафаров Ш. М. 1953. Два новых вида мошек (Simuliidae, Diptera)
из водоемов Малого Кавказа. ДАН Азерб. ССР, 9, 11 : 675—681.
Джафаров Ш. М. 1954а. Описание двух новых видов мошек (Si-
muliidae, Diptera) из Азербайджана. ДАН Азерб. ССР, 10, 4 : 285—
290.
Джафаров Ш. М. 19546. Новые виды кровососущих мошек в районе
р. Ахсу и ее родников. Изв. АН Азерб. ССР, 1 85—93.
Джафаров Ш. М. 1954в. Распространение мошек (Simuliidae, Di-
ptera) в АзССР в связи с их экологией. Тезисы док л. III Эколог,
конф., Киев, 1 : 51—54.
Джафаров Ш. М. 1955. Биология, экология и вредоносность мошек
(сем. Simuliidae) в Азербайджане и х^еры борьбы ними. Тр.
Инет. Зоол. АН Азерб. ССР, 18 : 131—176.
Дорогостайский В. Ч.. И. А. Рубцов и Н. М. Вла-
сенко. 1935. Материалы для рзучения систематики, географи-
ческого распространения и биологии '^шек в Восточной Сибири.
Паразитолог, сб. ЗИН АН СССР, 5 jx>7—204.
Манафов И. И. 1950. Симулидетоксикоз сельскохозяйственных жи-
вотных в Азербайджанской ССР. Ветеринария, 5 34.
Мельников Н. Н., В. А. Набоков, Е. А. Покровский.
1954. ДДТ, свойства и применение. М. : 1—204.
М о н ч а д с к и й А. С. 1949. Семейство Melusinidae. В сб. «Жизнь
пресных вод», 1 : 251—252.
М|о нчадский А. С. 1952. Летающие кровососущие двукрылые —
гнус. Серия «В помощь работающим на полезащитных лесных
полосах и на великих стройках коммунизма», 16, М.—Л.: 1—66.
Мончадский А. С. иЗ. А. Радзивиловская. 1948. Но-
вый метод количественного учета активности нападения. Паразп-
толог. сб. ЗИН АН СССР, 9 : 147—166.
Набоков В. А. 1952. Руководство по борьбе с малярийным комаром.
Медгиз. М. 1—402/
53
Оленев Н. О. 1936. Заметки по паразитологии Карелии. Мед. пара-
зит., 5, 6 : 957.
Оленев Н. О. 1940. О мошках Simuliidae Нижней Волги. Природа,
6 : 109—110.
Оленев Н. О. 1945. О кровососущих двукрылых насекомых Нижнего
Поволжья. Природа, 2 : 74—75.
Павловский Е. Н. 1935. Методы изучения кровососущих кома-
ров (Gulicidae). Изд. АН СССР, М.—Л.	1—176.
Павловский Е. Н. 1941. Защита от гнуса. М.—Л. : 1—65.
Павловский Е. Н. 1946. Динамика кровососущих двукрылых,
методы и значение их изучения. Изв. АН СССР, сер. биолог., 2—3 :
211—232.
Павловский Е. Н. 1948. Руководство по паразитологии человека,
II. М.—Л. : 834—841.
Павловский Е. Н., Г. С. Первомайский и К. П. Ча-
гин. 1951. Гнус (кровососущие двукрылые), его значение и меры
борьбы. Л., Медгиз, 120 стр.
Петрищева П. А., В. М. Сафьянов а, А. П. Будак,
Б. А. Гайко, И. Д. Виноградова и В. А. Потоцкая.
1955. Опыт применения препаратов НИУИФ в борьбе с гнусом.
Тезисы докл. VIII Совещ. по паразитолог, пробл., М.—Л.:
121—122.
Проневич Т. А. 1945. К биологии, экологии и видовому составу се-
мейства Simuliidae центральной части северных склонов Кавказ-
ского хребта. Тр. Горского с.-х. ин-та, V 191—194.
Радзивиловская 3. А. 1948. К фауне и экологии мошек (Simu-
liidae) Южно-Уссурийской тайги. Паразитолог. сб.ЗИН АН СССР.
10 131—150.
Радзивиловская 3. А. 1950. К экологии личинок и куколок мо-
шек (Simuliidae) горных районов Южно-Уссурийской тайги. Па-
разитолог. сб. ЗИН АН СССР, 12 : 199—224.
Рачинский Ф. 10., Г. С. Первомайский иК. П. Чагин.
1951. Диметилфталат как средство защиты от гнуса. Зоолог, журн.,.
30 (1) : 69—72.
Рубцов И. А. 1935. Материалы по биологии и экологии мошек (Si-
muliidae). Изв. Биолог.-геогр. инет. Ирк. ун-та, 1,2—4 : 109—133.
Рубцов И. А. 1936. К биологии и экологии мошек (Simuliidae) Восточ-
ной Сибири. Паразитолог, сб. ЗИН АН СССР, 6 169—200.
Рубцов И. А. 1937. Опыты применения нефтяных и карболовых
эмульсий для борьбы с мошками (Simuliidae). Тр. Военно-мед.
акад. РККА им. Кирова, 8 : 171—220.
Рубцов И.А. 1939а. Средства защиты от мошек и комаров. Тр. Военно-
мед. акад. РККА им. Кирова, 19 61—74.
Рубцов И. А. 19396. Условия массового размножения мошек (Si-
muliidae). Тр. Военно-мед. акад. РККА им. Кирова, 19: 177—207.
Рубцов И. А. 1939в. К фауне мошек (Simuliidae) Забайкалья. Парази-
толог. сб. ЗИН АН СССР, 7 : 193—201.
Рубцов И. А. 1939г. О миграциях у личинок мошек (Simuliidae).
Паразитолог, сб. ЗИН АН СССР, 17 : 202—209.
Рубцов И. А. 1940. Мошки (сем. Simuliidae). «Фауна СССР», Дву-
крылые, VI, 6 : 1—533.
Рубцов И. А. 1945. К систематике, экологии и географическому рас-
пространению мошек (Simuliidae) Средней Азии. Рефераты н.-и.
работ за 1944 г., Отд. биолог, наук : 129—130.
Рубцов И. А. 1947. Состав, связи, географическое распространение
и вероятное происхождение фауны мошек Средней Азии. Изв. АН
СССР, сер. биолог., 1 : 87—116.
54
рубцов И.А. 1949а. Сожительство личинок и куколок мошек с поден-
ками. Природа, 10 : 78—80.
рубцов И. А. 19496. Новое о зимовке мошек (Simuliidae, Diptera).
ДАН СССР, 66, 3 : 511—513.
рубцов И. А. 1949в. Колумбацкая мошка. Энтомолог, обозр., 30 г
3—4 : 410—417.
рубцов И. А. 1950. О массовом размножении мошек и его вероятном
объяснении. Природа, 2 : 16—22.
рубцов И. А. 1951а. Экологические и биологические особенности мо-
шек Средней Азии. Паразитолог, сб. ЗИН АН СССР, 13 328—
342.
рубцов И.А. 19516. К систематике мошек (Simuliidae, Diptera) Сред-
ней Азии. Тр. ЗИН АН СССР, 9 743—860.
Рубцов И. А. 1952. Кровососущие мошки поймы р. Урала. Тр. ЗИН
АН СССР, .11 : 182—189.
Рубцов И. А. 1953. К морфологии наружных половых придатков дву-
крылых. Зоолог, журн., 32, 4 608—625.
Рубцов И. А. 1954. Мошки и меры борьбы с ними. М.—Л. 1—88.
Рубцов И. А. 1955а. Новые виды мошек из Закавказья. Тр. Инет, зоо-
лог. АН Азерб. ССР, 8 : 109—130.
Рубцов И. А. 19556. Об изменениях активности кровососущих мо-
шек в связи с гонотрофическим циклом. Тр. ЗИН АН СССР,
21	.353—364.
Рубцов И. А. 1955в. Новые своеобразные виды мошек (Diptera,
Simuliidae) из Восточной Сибири. Энтом. обозр., 34 323—339.
Рубцов И. А. и Ш. М. Джафаров. 1951. Новый вид кровососу-
щей мошки из р. Куры. Изв. АН Азерб. ССР, 9 : 33—39.
Рубцов И. А. и А. Е. Тертерян. 1952. Малоизученные и новые
виды мошек (Diptera, Simuliidae) из Армянской ССР. ДАН Армян-
ской ССР, 15, 2 : 57—64.
Скрябин К. И. и Н. П. Ш и х о б а л о в а. 1948. Филярии живот-
ных и человека, 41—43, 80—83.
Стуколкина Н. Н. 1939. Материалы по биологии мошек (Simuli-
idae) Забайкалья. Тр. Военно-мед. акад. РККА им. Кирова, 19
49—60.
Тертерян А. Е. 1949. Описание двух новых видов мошек (Diptera,
Simuliidae) из Армении. ДАН Армянской ССР, 11, 3 : 93—97.
Тертерян А. Е. 1952а. Описание двух новых видов мошек (Diptera,
Simuliidae). ДАН Армянской ССР, 1: 49—55.
Тертерян А. Е. 19526. Новые виды мошек (Diptera, Simuliidae)
из Армянской ССР. ДАН Армянской ССР, 15, 3 : 89—95.
Топчиев А. Г. 1954. Кровососущие мошки на юго-востоке УССР и
меры борьбы с ними. Тезисы докладов III Эколог, конференции,
Киев, 1 : 263—265.
Усова 3. В. 1955а. Некоторые вопросы биологии мошек (сем. Simuli-
idae). Тезисы докл. VIII Совещ. по паразитолог, пробл., М.—Л.:
154—155.
Усова 3. В. 19556. Биология окукления мошек. ДАН СССР, 105т
4 846—847.
СОДЕРЖАНИЕ
Стр.
Где и когда собирать мошек .................................... 3
-Сбор взрослых мошек .......................................... 8
Учет численности и активности нападения ...................... 12
Яйцо, личинка, куколка ....................................... 14
Выведение и содержание мошек в лаборатории ................... 22
Вскрытие мошек ............................................... 30
Изготовление микроскопических препаратов и определение мошек 37
Методика испытания инсектицидов для борьбы с личинками мошек 46
Методика испытания и техника применения инсектицидов для за-
щиты и борьбы со взрослыми мошками ........................... 49
Очередные вопросы исследования мошек ......................... 50
Литература ................................................... 52
Утверждено к печати
Зоологическим институтом
Академии Наук СССР
*
Технический редактор К. С. Тверитинова
Корректоры А. И. Бартулева и М. П. Казарновский
*
РИСО АН СССР № 61—44 В. Подписано к печати 19/V 1956.	М-09285.
Бумага 60х92/1в. Бум. л. 13/4. Печ. л. 31/2- Уч.-изд. 3.18. Тираж 3000.
Цена 1 р. 60 к. Зак. № 553.
1-я тип. Изд. АН СССР, Ленинград, В. О., 9-я линия, д. 12.