/
Автор: Гробов О.Ф. Лихотин А.К.
Теги: разведение и содержание насекомых и прочих членистоногих ветеринария пчеловодство пчелы разведение пчел содержание пчел пчеловодная техника
ISBN: 5-10-001306-0
Год: 1989
Текст
< УЧЕБНИКИ ДЛЯ ТЕХНИКУМОВ
веТРеринария
о. ф. гробов
А.К.ЛИХОТИН
БОЛЕЗНИ
И ВРЕДИТЕЛИ
ПЧЕЛ
УЧЕБНИКИ И УЧЕБНЫЕ ПОСОБИЯ
ДЛЯ УЧАЩИХСЯ ТЕХНИКУМОВ
О. Ф. ГРОБОВ
А.К.ЛИХОТИН
БОЛЕЗНИ
И ВРЕДИТЕЛИ
ПЧЕЛ
Допущено Управлением высшего и среднего спе-
циального образования Государственного агро-
промышленного комитета СССР в качестве учеб-
ного пособия для учащихся средних специальных
учебных заведений по специальности «Пчеловод-
ство»
МОСКВА ВО «АГРОПРОМИЗДАТ» 1989
ББК 48
Г86
УДК 638.15(075.3)'
Редактор: П. И. Тихонов
Гробов О. Ф., Лихотин А. К.
Г86 Болезни и вредители пче^.— М.: Агропромиз-
дат, 1989. — 239 с.: ил.— (Учебники и учеб. посо-
бия для учащихся техникумов).
ISBN 5—10—001306—0
В учебнике приведены сведение об инфекционных, инва-
зионных болезнях, а также вред.итедях медоносных пчел.
Основное внимание обращено на диагностику и лечебно-оз-
доровительные мероприятия. Темы занятий сопровождаются
рекомендациями по проведению лабораторных занятий и
контрольными вопросами для самопрОверКИ.
Для учащихся техникумов п<3 специальности «Пчело-
водство».
Г
3706000000—330
035(01)—89
251—90
ББК 48+46.9
ISBN 5—10—001306—0
© ВО «Агропромиздат», 1989
ВВЕДЕНИЕ
Пчеловодством человек занимается с древнейших
времен. Аристотель (384—322 гг. до н. э.) в труде «Ис-
тория животных» обобщил знания, накопленные в ан-
тичный период о пчелах, сведения о гнильце, некото-
рых вредителях и способах лечения. О болезнях пчел
упоминается в работах древнеримских ученых Барро-
на, Вергилия и Плиния.
Первые отечественные сведения о пчеле относятся
ко времени Святослава, хотя продукты пчеловодства
играли заметную роль еще в экономике скифских пле-
мен (УГГ в. до н. э. — ((( в. н. э./. Пасеки на Руси по-
явились в X—XI вв., а права на владение бортями пчел
были закреплены «Русской правдой» Ярослава Мудро-
го (ок. 978—1054) и «Литовским статутом». В «Перепис-
ных книгах государевых отписных пасек» за 1621—
1675 гг. приведены сведения о гибели пчел от гнильца,
уничтожении слабых семей, смене мест пасек из-за их
массового поражения.
В работах П. Рачкова «О содержании пчел», А. К.
Нартова «О разведении пчел», опубликованных в тру-
дах Вольного экономического общества (1767), имеют-
ся также сведения о болезнях пчел. П. И. Прокопович
в статье «О гнильцах пчел» (1827) показал пути пере-
дачи возбудителя через соты и мед, доказал возмож-
ность борьбы с гнильцом путем пересадки пчел в новый
улей и уничтожения рамок с сотами.
Во второй половине прошлого столетия пчеловодство
как отрасль сельского хозяйства стало быстро разви-
ваться. В этот же период стали более детально изучать
патологию пчел. В 1857 г. Д. Денхов обнаружил споры
.ноземы. В 1882 г профессор Н. Сорокин выявил споры
ноземы и считал их аналогичными возбудителю пеб-
рины шелкопряда. И. Джерзон (1882) описал доброка-
чественную и злокачественную формы гнильцов.
3
В 1885 г. Чашейр и Чайн выделили и описали возбу-
дителя европейского гнильца. Академик А. М. Бутле-
ров в работе «О болезни пчел — гнильце» (1873) впер-
вые указал на необходимость применения дезинфици-
рующих средств для борьбы с этим заболеванием.
Интенсивное изучение болезней пчел началось в
XX столетии. Работами американского исследователя
Г. Ф. Уайта были показаны специфические возбудите-
ли американского (1906) и европейского (1912) гниль-
цов и даны существующие названия заболеваниям.
Впервые была подробно описана вирусная болезнь —
мешотчатый расплод (1913, 1917). Немецкие исследо-
ватели Цандер, Маассен и другие детально изучили воз-
будителей протозойной и бактериальной инфекций.
Большой вклад в разработку методов ветеринарно-
санитарной экспертизы меда внес И. А. Каблуков. В ра-
ботах «Гнилец пчел и борьба с ним» (1910) и «Зараз-
ные болезни пчел» (1922) И. П. Сербинов описал меро-
приятия по оздоровлению пасек от инфекционных бо-
лезней. К. А. Горбачев в 1910 г. для борьбы с гнильцом
предложил метод перегона пчелиных семей.
В апреле 1929 г. на совещании при Наркомземе
РСФСР была разработана первая техническая инструк-
ция по борьбе с болезнями пчел, а обслуживание пасек
возложено на ветеринарную службу. В 1933 г. Коллегия
Наркомзема СССР вынесла постановление о необхо-
димости разработки системы специальных мероприятий
по борьбе с эпизоотиями пчел. Развертывается работа
по эпизоотологическому обследованию пасек на терри-
тории страны, устанавливаются новые, ранее неизвест-
ные болезни и разрабатываются способы борьбы с ними.
Значительный вклад в организацию научно-исследо-
вательской и педагогической работы по изучению бо-
лезней пчел внес В. И. Полтев (1900—1984). Написан-
ный им учебник «Болезни пчел» (1934) выдержал 4 из-
дания; совместно с Е. В. Нешатаевой выпущен учебник
«Болезни и вредители пчел» для средних специальных
учебных заведений, трижды переизданный за послед-
ние 14 лет.
В нашей стране много делается по совершенствова-
нию мероприятий по борьбе с болезнями пчел. В 1973 г.
в штаты областных, краевых и республиканских учреж-
дений по пчеловодству введена должность ветеринарно-
го врача, изданы инструкции, наставления, методиче-
4
ские указания по диагностике и мерам борьбы с бо-
лезнями пчел..
Медоносные пчелы совершают 80—90% всей рабо-
ты по опылению сельскохозяйственных растений, повы-
шают урожайность энтомофильных культур на 25—40%.
Продукты пчеловодства благотворно влияют на орга-
низм человека, и задача отрасли состоит в том, чтобы
обеспечить население целебным медом, а медицину —
маточным молочком, прополисом, пчелиным ядом и
цветочной пыльцой. Наша страна занимает первое ме-
сто в мире по количеству пчелиных семей.
Настоящий учебник поможет учащимся средних спе-
циальных учебных заведений изучить болезни пчел:
причины их возникновения и распространения, методы
диагностики, профилактики, лечения и дезинфекции;
использовать рекомендации по обследованию пчелиных
семей, взятию патологического материала для иссле-
дования, постановке предварительного диагноза, опре-
делению возбудителей заболеваний и вредителей пчел,
своевременному проведению дезинфекции и лечебно-оз-
доровительных мероприятий на пасеке.
ОСНОВЫ МИКРОБИОЛОГИИ
МОРФОЛОГИЯ МИКРООРГАНИЗМОВ
Микробиология изучает мельчайшие организмы —
вирусы, риккетсии, микоплазмы, бактерии, грибы, дрож-
жи, простейшие. Их размеры, находящиеся на клеточ-
ном уровне, настолько малы, что необходимы соответ-
ствующие единицы измерения. К применяющимся еди-
ницам длины относятся микрометр (мкм) и нанометр
(нм). 1 мкм равен 10~6 м, а 1 нм равен 10-’2 м, или
миллионной части миллиметра.
Весь органический мир делится на два надцарства:
прокариоты (доядерные организмы) и эукариоты (ядер-
ные организмы) (рис. 1). Прокариоты не имеют
ядра с мембраной, и генетический материал сосредо-
точен в нуклеотиде. Дезоксирибонуклеиновая кислота
(ДНК) образует единственную нить, замкнутую в коль-
цо (генофор). Половой процесс отсутствует, а обмен
генетическим материалом иногда осуществляется во вре-
мя других процессов, называемых парасексуальными.
Отсутствуют центриоли и митотическое веретено, пла-
стиды и митохондрии. Деление клеток а митотическое.
Каркасообразующим элементом оболочки является
глюкопептид. Прослойка его у разных микроорганиз-
мов неодинакова, что связано с полиморфизмом, фильт-
руемостью и различным отношением к окраске по Гра-
му. Он отсутствует у микоплазм и галлобактерий. Жгу-
тиков нет, или они очень простые. Многие представи-
тели фиксируют молекулярный азот, питательные ве-
щества всасываются через клеточную стенку. Пищевые
вакуоли отсутствуют, но часто встречаются газовые.
К прокариотам относятся сине-зеленые водоросли, рик-
кетсии, бактерии, актиномицеты и микоплазмы.
Эукариоты — организмы с настоящим ядром, ок-
руженным ядерной мембраной. Генетический материал
заключен в хромосомах, состоящих из нитей ДНК и
белков. Для эукариотов характерен типичный половой
6
PROCARYOTA - ДОЯДЕРНЫР
1. Схема классификации живых организмов.
процесс с чередующимся слиянием ядер и редукцион-
ным делением; иногда размножаются без оплодотво-
рения, но при наличии половых органов (партеноге-
нез). Клетка имеет центриоли, митотическое веретено,
пластиды, митохондрии и хорошо развитую эндоплаз-
матическую мембранную систему. Деление клеток ми-
тотическое. Если имеются жгутики или реснички; то
они очень сложно устроены. Атмосферный азот они не
фиксируют, как правило, аэробы, редко вторичные ана-
эробы. Питание абсорбтивное или автотрофное, когда
пища заглатывается и переваривается внутри организ-
ма. Имеются пищевые вакуоли.
7
В лаборатории для определения вида микроорга-
низмов устанавливают его основные свойства: морфо-
логию, рост на питательных средах, биохимические
свойства, отношение к различным красителям, антиген-
ные свойства, патогенность и др. По полученным дан-
ным проводят идентификацию и дифференциацию и по
определителю находят место микроба в классификаци-
онной таблице.
Видовое название является бинарным и состоит из
двух слов: первое обозначает род и пишется с пропис-
ной буквы, второе—вид и пишется со строчной буквы.
Например, возбудитель американского гнильца — Bacil-
lus larvae, возбудитель септицемии — Pseudomonas
apisepticum.
Вирусы. Относятся они к облигатным внутриклеточ-
ным паразитам, их размеры варьируют в широких пре-
делах— от 10 до 200 нм и более. Величину их опреде-
ляют фильтрованием через фильтры с известным раз-
мером пор, центрифугированием в скоростных центри-
фугах и исследованием под электронным микроскопом.
Бактериофаги. Это вирусы, развивающиеся в микро-
организмах. Подобного рода вирусы распространены в
природе повсюду, где встречаются бактерии.
Риккетсии. Относят их к болезнетворным организ-
мам, занимающим промежуточное положение между ви-
русами и бактериями. Они значительно меньше бакте-
рий, но крупнее вирусов и едва видны в световой мик-
роскоп. Это, как правило, облигатные внутриклеточные
паразиты размером от 300 до 2000 нм. По своему строе-
нию риккетсии сходны с бактериями и подразделяются
на кокковидные, палочковидные и нитевидные. Послед-
ние мобут достигать длины 40 мкм. По строению напо-
минают грамотрицательные бактерии.
Микоплазмы (спироплазмы). Размеры их от 100 до
700 нм, спор не образуют. Растут на сложных пита-
тельных средах с высоким осмотическим давлением.
Колонии врастают в плотные среды. Отсутствие истин-
ной клеточной оболочки (ее заменяет трехслойная мем-
брана из стериновых липидов) у микоплазм ведет к вы-
раженному полиморфизму — шаровидным, зернистым,
кольцевидным и нитевидным формам. Способность про-
никать через бактериальные фильтры свидетельствует
об их морфологической пластичности. Микоплазмы ши-
2. Основные формы бактерий.
/ — стафилококки; 2, 3 — диплококки; 4 — стрептококки; 5 — тетракоккн;
6 —сарцины; 7, 8, 9—различные виды палочек; 10— вибрионы; // — спи-
риллы; 12 — спирохеты.
роко распространены в природе и имеют важное значе-
ние в патологии животных, птиц, а также пчел.
Бактерии (рис. 2). По форме их подразделяют на
шаровидные (кокки), палочковидные (бациллы, бакте-
рии, клостридии), извитые (вибрионы, спириллы), ни-
тевидные (хламидобактерии). Это группа преимущест-
венно одноклеточных микроорганизмов, имеющих кле-
точную стенку. Содержат ДНК и рибонуклеиновую кис-
лоту (РНК), размножаются простым делением, лише-
ны хлорофилла. Форма и размер бактерий в зависимо-
сти от внешних условий могут изменяться. При ста-
бильных условиях бактерии сохраняют присущую виду
морфологию, выработанную в ходе эволюции. Размеры
бактерий колеблются от 0,1 до 20 мкм и более.
9
Кокки, как правило, имеют форму шара. В зависи-
мости от характера деления они по-разному располага-
ются относительно друг друга, и поэтому их подраз-
деляют на следующие группы: 1) микрококки — беспо-
рядочно расположенные одиночные клетки; 2) дипло-
кокки— попарно сцепленные, образовавшиеся в резуль-
тате деления клеток в одной плоскости; 3) стрептокок-
ки — цепочки клеток, образующиеся в результате после-
довательного деления в одной плоскости; 4) тетракок-
ки— сцепленные по четыре клетки, появляющиеся в ре-
зультате деления,клеток в двух взаимно перпендикуляр-
ных плоскостях; 5) сарцинные — пакетообразные сцеп-
ления клеток в несколько рядов, объединяющие 8 и бо-
лее клеток как результат последовательного деления
клеток в трех взаимно, перпендикулярных областях;
6) стафилококки — скопления клеток в виде гроздей
винограда в результате их деления в различных плос-
костях.
Палочковидные (цилиндрические) бактерии, бацил-
лы и клостридии бывают короткие и длинные, с закруг-
ленными, заостренными и обрубленными концами. Раз-
личают палочки, расположенные бессимптомно, стрепто-
бактерии (цепочки), диплобактерии (парные). Мелкие
бактерии иногда именуют коккобактериями.
Извитые спиралевидные бактерии объединяют виб-
рионы (изогнутость их тела не превышает четверти
оборота), спирохеты и спириллы (от одного до несколь-
ких оборотов).
Нитевидные — серо- и железобактерии, обитают в во-
доемах.
Строение бактерий. Бактериальная клетка со-
стоит из оболочки, цитоплазмы, нуклеотида, рибосом и
других структур (рис. 3). Оболочка бактерий состоит
из клеточной стенки и цитоплазматической мембраны.
Она придает определенную форму, защищает бактерии
от вредных воздействий среды, и через нее в клетку
поступают вещества, необходимые для ее жизнедея-
тельности.
Цитоплазма — безоболочная часть клетки, представ-
ляющая собой коллоидную систему из воды, белков,
нуклеиновых кислот и других веществ. Нуклеотид пред-
ставлен единственной гигантской хромосомой, не изо-
лированной от цитоплазмы мембраной, и расположен в
центральной части бактериальной клетки.
10
3. Строение бактериальной клетки (схема):
/ — слизистый слой; 2— оболочка; 3 — ядро в начальной стадии деления;
4 — цитоплазматическая мембрана; 5 —начало образования поперечных пе-
регородок; 6 — эписомы; 7 — жгутик; 8 — включение; 9— частицы рибону-
клеиновой кислоты; /0 — периферическое тельце; //—спора.
Капсула — слизистый слой вокруг бактериальной
клетки, в который входят полисахариды, глюкопротеи-
ны или полипептиды. Капсула играет защитную роль,
предохраняя бактерии от фагоцитоза и действия анти-
тел. Наличие капсул используют в качестве дифферен-
цирующего морфологического признака. Для обнаруже-
ния капсул применяют специальные методы окраски.
Жгутики — нитевидные трубочки, совершая движе-
ния вокруг своей оси, перемещают клетку в простран-
стве. По количеству и расположению жгутиков (рис. 4)^
подвижные бактерии делят на монотрихи (бактерии о
одним полярно расположенным жгутиком), лофотрихи
(с пучком жгутиков на конце клетки), амфитрихи (о
двумя полярно расположенными жгутиками), перетри-
хи (с расположением жгутиков по всей поверхности
бактериальной клетки). С целью определения подвиж-
ности используют молодые культуры микробов и спе-
циальные методы висячей или раздавленной капли.
Микробы способны к пассивному или броуновскому
движению. Это необходимо иметь в виду при опреде-
лении подвижности микроорганизмов.
Споры — одна из стадий развития бацилл и клост-
ридий, выработанная в процессе эволюции в борьбе за
11
сохранение вида. Споры образуют возбудитель амери-
канского гнильца и др. В ходе образования споры
уплотняется цитоплазма и формируется плотная мно-
гослойная оболочка. Спорообразование происходит при
отсутствии питательных веществ, воздействии неблаго-
приятных факторов, при определенной температуре и
степени аэрации. Споры способствуют сохранению мик-
робов длительное время во внешней среде (выдержи-
вают высушивание, кипячение, низкие температуры и
высокие концентрации дезинфицирующих веществ).
Микроорганизмы состоят из азота (8—15%), угле-
рода (45—55 %), кислорода (25—30 %), солей в виде
макро- и микроэлементов. Из органических веществ
бактериальная клетка содержит белки, нуклеиновые
кислоты, углеводы, липиды, ферменты и другие соеди-
нения. Белки делятся на простые (протеины) и слож-
ные (протеиды — комплекс с небелковыми группами —
нуклеопротеиды, глюкопротеиды, липопротеиды). К бел-
кам принадлежат и ферменты. Углеводы в клетках на-
ходятся в виде полисахаридного комплекса с белками
и липидами.
Грибы (рис. 5). Относятся они к обширной группе
организмов, насчитывающей более 100 тыс. видов. Зна-
чительно крупнее бактерий, достигают 2—8 мкм в по-
перечнике, 50 мкм и более в длину, лишены хлорофил-
ла и питаются готовыми органическими соединениями
(гетеротрофы). По способу питания и неограниченному
росту они напоминают растения. Грибы разнообразны
йо внешнему виду, местам обитания и физиологическим
особенностям.
! 2 3 4
4. Жгутики бактерий:
/ — монотрихи; 2 — амфитрихи; 3 — лофогрихи; 4 — перетрихн.
5. Грибы:
a — Penicilllum; б — Aspergillus; в— Mucor.
Размножение у грибов вегетативное, бесполое и
половое. Первое осуществляется отделением от мице-
лия его частей, образованием оидий (артроспор) и хла-
мидоспор. Артроспоры появляются в результате распа-
да гиф на короткие клетки. Хламидоспоры образуются
примерно так же, но они имеют толстую темноокрашеи-
ную оболочку и хорошо переносят неблагоприятные ус-
ловия.
Бесполое размножение происходит при помощи
специальных образований, называемых спорами. Спо-
ры развиваются эндогенно (внутри специальных споро-
вместилищ) или экзогенно (на концах особых вырост-
ков мицелия — конидиеносцах). У многих низших гри-
бов грибница не имеет перегородок. Бесполое раз-
множение посредством конидий отмечается у сумчатых,
базидиальных, несовершенных и некоторых низших
грибов.
Половое размножение состоит в слиянии мужских
и женских гамет, в результате чего возникает зигота.
Гаметы гаплоидны, т. е. имеют половинный набор хро-
мосом. Половой процесс у сумчатых грибов заканчива-
ется образованием сумки, а у базидиальных грибов —
базидиоспор.
В патологии медоносной пчелы наибольшее значе-
13
12
ние имеют аскомицеты и несовершенные грибы, вызы-
вающие аскосфероз, аспергиллез и др.
Дрожжи. Филогенетически они связаны как с сум-
чатыми, так и с базидиальными грибами. Размеры оди-
ночных дрожжевых клеток лежат в пределах 1 —10 мкм.
При образовании мицелия или вытянутых клеток псев-
домицелия длина их может достигать 50 мкм, в то вре-
мя как ширина не превышает 10 мкм. Форма дрожже-
вой клетки в значительной степени зависит от способа
вегетативного размножения. Оно происходит путем поч-
кования, деления и почкующегося деления. При почко-
вании возникают круглые, яйцевидные или овальные
клетки. Это наиболее характерный и широко распрост-
раненный у дрожжей способ вегетативного размноже-
ния. Деление у дрожжей встречается реже, чем почко-
вание. Клетки после деления могут оставаться одиноч-
ными или образовывать мицелий, который иногда рас-
падается на артроспоры. Для рода кандида характер-
но образование ложного мицелия с бластоспорами и
бластоконидиями. Это результат почкования без отде-
ления клеток.
Дрожжи могут существовать в гаплоидной и дипло-
идной фазах. Смена ядерных фаз рассматривается как
чередование поколений у дрожжей. Оно связано с об-
разованием половых спор и может происходить по аско-
мицетному или базидиомицетному типу.
Простейшие (Protozoa). Это одноклеточные организ-
мы со сложной функциональной организацией (рис. 6),
подвижны, имеют ядро, цитоплазму. Для выполнения
разнообразных функций у многих простейших имеются
органеллы: реснички и жгутики, вакуоли, нейрофибрил-
лы, стигмы (глазные пятна) и т. д. Размеры их 6—
20 мкм, но некоторые амебы достигают в длину до
1 мм. Размножаются, как правило, простым делением
клетки, хотя встречается и половое размножение, свя-
занное со скрещиванием двух индивидуумов.
Лабораторно-практическое занятие 1
Для определения вида микроорганизмов необходимо
определить его морфологию, способности к окраске,
культуральные, биохимические, патогенные свойства, а
также антигенную структуру. Морфологию изучают с
применением оптических приборов.
6. Простейшие:
а — саркодовые; б — жгутиковые; в —ресничные; г— споровики.
Цель занятия. 1. Ознакомиться с устройством мик-
роскопа. 2. Провести исследование готовых препаратов
под различными увеличениями. 3. Приготовить мазки
из культур микробов и мазки-отпечатки из грудной
мышцы и средней кишки пчелы. Освоить способы фик-
сации мазков. 4. Освоить методы простой окраски, ок-
раски по Романовскому—Гимза, Граму. 5. Исследова-
ние без окраски и измерение микроорганизмов.
Оборудование и материалы: микроскопы, иммерсионное масло,
окрашенные мазки микроорганизмов (кокки, палочковидные микро-
организмы, культуры микроорганизмов: кишечная палочка, микро-
кокки и т. д.), живые пчелы, бактериологические петли, обезжи-
ренные предметные и покровные стекла, стекла с луиками, спир-
14
15
товки, карандаши по стеклу, физиологический раствор, сппрт-эфир,
ванночки для фиксации мазков, фильтровальная бумага, сосуды с
дистиллированной водой, краска Романовского — Гимза, набор ре-
активов для окрашивания по Граму (карболовый раствор генциан-
виолета, раствор Люголя в глицерине, спирт-ректификат, карболо-
вый фуксин), вазелин, стаканы с 2 %-ным раствором фенола, объек-
тивный и окулярный микрометры, таблицы.
Место проведения занятия. Учебные классы.
Методика проведения занятия. Преподаватель пока-
зывает микроскоп, объясняет устройство и правила ра-
боты с ним. Учащиеся зарисовывают схему микроско-
па и записывают результаты исследования мазков. Пре-
подаватель знакомит учащихся с методикой приготов-
ления красителей, демонстрирует технику приготовле-
ния мазков, их фиксацию и различные способы окраски.
Учащиеся готовят мазки из культур, мазки-отпечат-
ки из органов пчелы, фиксируют их и окрашивают ра-
створом Циля, разведенным наполовину дистиллирован-
ной водой, по Романовскому—Гимза и по Граму. Отыс-
кивают и зарисовывают микроорганизмы. Преподава-
тель объясняет способы исследования микроорганизмов
без окраски и определения их размеров, учащиеся ис-
следуют молодые культуры на подвижность методом
висячей и раздавленной капли. В приготовленных пре-
паратах определяют размер микроорганизмов.
Микроскоп служит для рассмотрения мельчай-
ших организмов и предметов, невидимых глазом чело-
века. Для биологических исследований производят сле-
дующие марки микроскопов: МБР, МБП. Устройство
микроскопа, состоящего из
двух основных систем: меха-
нической и оптической, пред-
ставлено на рисунке 7. Ме-
ханическая система состоит
10 из штатива (ножка и тубу-
содержатель). К тубусодер-
жателю (колонке) прикреп-
лена трубка (тубус) свраща-
7 ющимся диском — «револь-
9
7. Схема устройства микроскопа:
» 1 — ножка; 2 — тубусодержатель; 3 —
° тубус; 4 — револьвер; 5 — микрометри-
ческий винт; 6 — микрометрический
винт; 7 — предметный столик; -8 —
зеркало; 9 — конденсор; 10 — объек-
тив; 11 —> окуляр»
16
верой» на нижнем конце. Тубус передвигается макро-
метрическим винтом (для грубой наводки) и микромет-
рическим (для тонкой наводки). Оптическая система
микроскопа состоит из зеркала, конденсора с ирисовой
диафрагмой, объективов и окуляра. Объективы разде-
ляют на сухие и иммерсионные. При работе с иммерси-
онным объективом используют кедровое масло, иногда
вазелиновое или касторовое. Окуляры микроскопов
обозначаются 7Х, Юх, 15Х. Умножив цифру оправы
объектива на цифру окуляра, получим число, показы-
вающее примерное увеличение микроскопа.
Работа с микроскопом. Перед работой с мик-
роскопом проверяют взаимодействие частей и устанав-
ливают освещение. С этой целью ставят объектив наи-
меньшего увеличения и, наблюдая в окуляр, зеркалом
улавливают источник света с максимальным освещени-
ем. Регулируют освещение при помощи ирисовой диаф-
рагмы конденсора. При дневном освещении пользуются
плоским зеркалом, а при слабом и искусственном осве-
щении— вогнутым. При работе со слабым и средним
увеличением конденсор опускают и диафрагму прикры-
вают. Работая с иммерсионной системой, конденсор
поднимают до одной плоскости с предметным столиком
и полностью открывают ирисовую диафрагму. Микро-
скоп следует предохранять от пыли и сырости.
При помощи фазово-контрастного устройства можно
видеть микроорганизмы, не применяя окраски, благо-
даря различной их оптической плотности.
Люминесцентная микроскопия предназначена для ис-
следования объектов, обладающих свечением. Различа-
ют первичную и вторичную люминесценцию. Первая
возникает при облучении необработанного объекта за
счет свечения вещества этого объекта. В биологии, ве-
теринарии и медицине чаще применяют вторичную лю-
минесценцию, возникающую при обработке объекта спе-
циальными флюоресцирующими красителями.
Электронный микроскоп дает возможность получить
увеличение до 300 тыс. раз. Вместо световых лучей в
них используют поток движущихся электронов, а вме-
сто оптических линз обычного микроскопа — электро-
магнитные.
Приготовление мазков из культуры мик-
робов. Для этого необходимы чистые обезжиренные
предметные стекла. Не использовавшиеся ранее стекла
2—381
17
моют до 10 мин в 1 %-ном растворе соды, промывают
в дистиллированной воде с добавлением 0,5 % соляной
кислоты, а затем ополаскивают в чистой дистиллиро-
ванной воде. Стекла, бывшие в употреблении, выдер-
живают 2 ч в 20 °/о-ном растворе серной кислоты, про-
мывают водой и кипятят в мыльной воде, ополаскива-
ют чистой водой и хранят сухими или в спирте-эфире
(1:1), Перед приготовлением мазка предметное стекло
проводят несколько раз над пламенем спиртовки.
Материал из культуры берут прокаленной над пла-
менем бактериологической (платиновой) петлей. Про-
бирку с культурой берут в левую руку и удерживают
в наклонном состоянии большим, указательным и сред-
ним пальцами. Петлю берут в правую руку, как пишу-
щую ручку. Этой же рукой над пламенем вынимают
ватную пробку и зажимают ее между мизинцем и ла-
донью. Открытый конец пробирки обжигают над пла-
менем, петлю прожигают еще раз и вводят в пробир-
ку, не касаясь ее стенок. Остудив петлю, захватывают
ею каплю культуры. Пробирку в это время держат не-
много в стороне от пламени. Пробирку закрывают над
огнем ватной пробкой, предварительно проведенной че-
рез пламя. Взятый материал наносят на предметное
стекло и размазывают тонким слоем, а петлю прокали-
вают и ставят в штатив. Для приготовления мазков из
культур, выращенных на плотных средах, на предмет-
ное стекло наносят каплю стерильного физиологическо-
го раствора или бульона.
Для приготовления мазка из грудных мышц или
кишечника внешние покровы дезинфицируют йодиро-
ванным спиртом, стерильно срезают кутикулу и захва-
тывают стерильным пинцетом часть органа, прижимают
к стеклу в нескольких местах. Приготовленные мазки
высушивают на воздухе и фиксируют спиртом-эфиром
(1:1) в течение 10—15 мин.
Для изучения формы и структурных элементов мик-
роорганизма готовят окрашенный препарат, применяя
различные анилиновые красители. Наиболее часто в
микробиологии применяют следующие красители; крас-
ные— нейтральрот, метиловый красный, сафранин, фук-
син основной; фиолетовые — кристаллвиолет, генциан-
виолет, метилвиолет; синие—метиленовая синь; зеле-
ные—малахитовая зелень, бриллиантовая зелень.
Для окраски микробов готовят водные и спиртовые
18
растворы, которые хранятся гораздо дольше. Чтобы
усилить действие красящих растворов на клетку, к по-
следним добавляют протравитель (фенол, едкое кали).
Спиртово-водные растворы. Карболовый
фуксин (фуксин Циля): 1 г основного фуксина расти-
рают в ступке с 5 г фенола и несколькими каплями
глицерина. Добавляют 10 мл спирта-ректификата
.и 100 мл дистиллированной воды. Полученный раствор
фильтруют через фильтровальную бумагу.
Генцианвиолет получают смешиванием метилвиолета
и кристаллвиолета с добавлением декстрина. К 1 г ген-
цпанвиолета добавляют несколько капель глицерина
и 10 мл спирта-ректификата и растирают в ступке, смесь
оставляют на сутки. Затем к полученному спиртовому
раствору добавляют 100 мл 2 %-кого раствора карболо-
вой кислоты (фенола). Через сутки раствор фильтруют
и разливают по флаконам.
Раствор Люголя готовят растворением 2 г йодистого
калия в 25 мл дистиллированной воды. К полученному
раствору добавляют 1 г кристаллического йода и дово-
дят общий объем дистиллированной водой до 300 мл.
Методы окрашивания мазков. Препараты
окрашивают простым и сложным методами. При прос-
том методе окраски используют один краситель. На
фиксированный препарат, помещенный над сливной
чашкой, наносят несколько капель раствора метилено-
вой сини на 4—5 мин или карболового фуксина Циля
в разведении 1 : 10 (фуксин Пфейффера) «а 1—2 мин.
Краску смывают водой из бутыли или под краном, пре-
парат высушивают фильтровальной бумагой. На препа-
рат наносят каплю иммерсионного масла, помещают на
предметный столик и микроскопируют.
Сложные (дифференцирующие) методы окраски от-
личаются от простых тем, что препарат окрашивают
несколькими красками, а иногда еще применяют специ-
альные реактивы (раствор Люголя, кислоты и др.).
Окраска по Романовскому — Гимза. В чашку Петри
на стеклянные палочки или спички помещают препарат
мазком вниз и под препарат подливают краску азур-
эозин (Гимза), разбавленную перед использованием
дистиллированной водой (1:10). Время окраски 40—
50 мин. Краску смывают, просушивают фильтровальной
бумагой и микроскопируют. Этот метод используют при
исследовании гемолимфы насекомых, определяют нали-
2* 19
7
чие капсул у микроорганизмов. Тело микробной клетки
окрашивается в синий цвет, капсула — в бледно-розовый.
Окраска по Граму. Фиксированный препарат окра-
шивают карболовым фуксином 2—3 мин, сливают крас-
ку и на препарат наносят раствор Люголя на 2—3 мин,
который затем сливают, и препарат обрабатывают в
течение 30 с спиртом-ректификатом, а затем хорошо
промывают водой. Дополнительно окрашивают в тече-
ние 1—2 мин фуксином Пфейффера, второй раз промы-
вают водой, высушивают фильтровальной бумагой и
микроскопируют. Этот метод позволяет делить микро-
организмы на две группы: грамположительные и грам-
отр.ицательные. Первые окрашиваются в фиолетовый,
а вторые— в красный цвет.
Для окраски спор при исследовании мазков из тка-
ней можно использовать фуксин Циля, разведенный
пополам с водой. Время окраски 30—60 с. Вегетативные
формы окрашиваются в ярко-красный цвет, а споры —
в розовый. Этот метод часто используют при исследо-
вании патологического материала (погибших личинок)
при американском и европейском гнильцах пчел.
Подвижность микроорганизмов определяют методом
висячей и раздавленной капли. Для изготовления вися-
чей капли берут чистое предметное стекло с лункой
(рис. 8). На края наносят тонкий слой вазелина. На
обезжиренное покровное стекло охлажденной бактерио-
логической петлей наносят Каплю культуры. Для иссле-
дования культуры с твердых сред на покровное стекло
наносят каплю физраствора и в него вносят немного
культуры. Затем переворачивают предметное стекло и
опускают его на покровное стекло, чтобы капля нахо-
дилась в центре лунки. Препарат перевертывают покров-
ным стеклом вверх и микроскопируют.
Для получения раздавленной капли на обезжиренное
предметное стекло наносят
небольшую каплю исследуе-
мой культуры и осторожно
накрывают покровным стек-
лом.
Измерение микро-
организмов. Для этого
необходимы объект- и оку-
ляр-микрометры (рис. 9).
Объект-микрометр пред-
20
9. Объект- (б) и окуляр (а)-микрометры.
ставляет собой предметное стекло, в центре которого на-
несена линейка в 1 мм, разделенная на 100 частей. По-
казание одного деления равно 10 мкм. Объект-микро-
метр используют для определения величины одного де-
ления окуляр-микрометра.
Окуляр-микрометр имеет форму круглой стеклянной
пластинки, на которой нанесена линейка длиной 5 мм,
разделенная на 50 делений. Он служит для непосредст-
венного измерения микробов и вставляется делениями
вниз между линзами окуляра микроскопа. Объект-мик-
рометр устанавливают на предметный столик и совме-
щают деления шкал микрометров. При работе с им-
мерсионной системой на объект-микрометр наносят
масло.
Определяют, сколько делений окуляр-микрометра
вкладывается в то или иное количество делений объект-
микрометра.
21
Пример. 3 деления объект-микрометра совмещают
с 15 делениями окуляр-микро.метра. Следовательно,
одно деление окуляр-микрометра равняется 30:15=
= 2 мкм.
Контрольные вопросы
1. Как различаются микробы по форме?
2. Происхождение и назначение капсул.
3. Каково назначение спор и их строение?
4. Строение различных микроорганизмов.
5. Основной принцип устройства микроскопов.
6. На чем основана люминесцентная и электронная микроско-
пия?
7. Сущность окраски по Граму.
8. Как определить наличие капсул и спор у микробов?
9. Каковы основые методы изучения микроорганизмов?
10. Методы определения подвижности микроорганизмов.
И. Как определить размеры микроорганизмов?
ФИЗИОЛОГИЯ МИКРООРГАНИЗМОВ
Питание. В связи с отсутствием у микроорганизмов
специальных органов пищеварения питательные вещест-
ва поступают в клетку в виде растворимых соединений.
Они извлекают их из внешней среды, синтезируют сос-
тавные части клетки и получают необходимую энергию
для поддержания своей жизнедеятельности за счет пре-
вращения веществ.
Поступление питательных веществ в клетку и удале-
ние продуктов обмена осуществляется через оболочку
клетки. Основу механизма этого явления составляет
осмос — переход молекул из области более высокой
концентрации в область более низкой. Оболочка клетки
пропускает воду и растворенные в ней питательные ве-
щества. Сложные коллоидные вещества, прежде чем
попасть внутрь клетки, расщепляются ее ферментами.
Большое значение в питании микроорганизмов имеет
разность концентрации питательных веществ. По мере
поступления в клетку воды в ней возникает внутреннее
давление, именуемое тургором, что препятствует даль-
нейшему проникновению воды.
Большинство микроорганизмов живут в растворах
с концентрацией поваренной соли 0,5—0,8 %, что обес-
печивает нормальное давление клеточного сока. Изме-
нение осмотического давления в окружающей клетку
среде ведет к ее гибели. Помещение микроорганизмов
22
в гипертонические растворы солей и сахаров приводит
к тому, что вода отсасывается из клетки в раствор и
наступает обезвоживание и сморщивание клетки. Такое
явление называется плазмолизом. При помещении мик-
роорганизмов в гипотонические растворы (дистиллиро-
ванную воду) отмечаются сильное набухание, разрыв
и гибель клеток. Такое явление именуется плазмоптизом.
Явление плазмолиза широко используется для дли-
тельного хранения продуктов соления, консервирования,
а также варенья. Наряду с этим в природе встречаются
осмофильные (галлофильные) микроорганизмы, которые
растут при высоких концентрациях солей. К осмофиль-
ным микроорганизмам, которые растут при высоких
концентрациях сахара, относятся дрожжи Saccharomyces
mellis и S. rouxii. Они находятся в меде и других про-
дуктах с большим содержанием сахара.
По типу питания микроорганизмы делятся на авто-
трофов (авто — сам, трофик — питающийся) или прото-
трофов (протос — простой) и гетеротрофов (гетеро —
другой).
Потребности в углеводе, необходимом для синтеза
органических веществ, автотрофы удовлетворяют за
счет двуокиси углерода (углекислого газа) воздуха, а
простые азотистые соединения и воду они получают из
окружающей среды. Патогенные микроорганизмы в этой
группе отсутствуют. К ней относятся нитрифицирующие
бактерии, серобактерии, железобактерии и др.
Гетеротрофы воспринимают углерод для своего пи-
тания только из готовых органических соединений. Им
необходимы также азотистые соединения, микроэлемен-
ты и витамины. К ним относятся микроорганизмы, вы-
зывающие брожение, гниение и различные болезни
растений, беспозвоночных и позвоночных животных. Ге-
теротрофы подразделяются на сапрофитов (метатро-
фов) и паразитов (паратрофов). Сапрофиты питаются
мертвыми органическими субстратами. Паратрофы раз-
множаются в живых организмах и являются возбуди-
телями болезней человека, животных, беспозвоночных
и растений. В природе количество их значительно мень-
ше, чем сапрофитов. Резкой грани между этими микро-
организмами нет. Так, отдельные виды патогенных
микроорганизмов существуют во внешней среде как
сапрофиты, а сапрофиты при определенных условиях
могут вызывать заболевания.
23
Для роста и размножения патогенных микроорганиз-
мов необходим азот белков животного происхождения.
В качестве его в бактериологии используют пептон (фер.
ментативно расщепленные белки мяса). Бактерии нуж-
даются в ростовых веществах, которые содержатся в
дрожжах,' экстрактах из семян растений и т. д. Наряду
с ними они содержат витамины, аминокислоты и другие
биологически важные вещества.
Белковый обмен. У бактерий он происходит в
две фазы. Под воздействием ферментов белки расщеп-
ляются до аминокислот, которые в дальнейшем подвер-
гаются дезаминированию, декарбоксилированию. Ами-
нокислоты одни микроорганизмы получают в готовом
виде, другие синтезируют их из простых соединений
азота.
Углеводный обмен. Углеводы расщепляются по
типу гидролиза и фосфоролиза под воздействием фер-
ментов. Органические вещества окисляются микроорга-
низмами не полностью, и в окружающей среде, кроме
углекислоты и воды, остаются продукты неполного
окисления.
Дыхание. У микроорганизмов дыхание является са-
мой совершенной формой окислительного процесса и
наиболее эффективным способом получения энергии,
необходимой для синтеза органических веществ. По
типу дыхания микроорганизмы делят на аэробные
(аэробы), которые для дыхания используют молекуляр-
ный кислород, и анаэробные (анаэробы), необходимая
энергия для жизнедеятельности которых освобождается
в результате расщепления органических веществ. Аэро-
бы наиболее полно используют энергию окисляемого
вещества, поэтому в процессе дыхания перерабатывает-
ся гораздо меньше субстрата для получения определен-
ного количества энергии, чем это необходимо анаэробам.
Процесс дыхания заключается в том, что углеводы,
белки, жиры и другие вещества- клетки распадаются,
окисляясь кислородом воздуха. Выделяющаяся при этом
энергия расходуется на поддержание жизнедеятельнос-
ти организма, рост и размножение. Бактерии не могут
накапливать много запасных питательных веществ и
используют в основном питательные соединения среды.
В общем виде дыхание можно представить следую-
щим уравнением:
CgHjjOg+6O2 — 6СО2 + 6Н2О 4- 2,87 10 Дж.
24
Химическая реакция представлена в виде сложной
цепи, каждая из которых требует участия специфиче-
ского фермента. Схема реакций в принципе одинаковая
у животных, растений и микроорганизмов. Дыхание
является процессом, дающим не только энергию, но и
большое количество промежуточных соединений. Из
этих соединений, имеющих различное количество угле-
родных атомов, могут синтезироваться самые различные
вещества клетки: аминокислоты, жирные кислоты, жиры,
белки, витамины. Поэтому обмен углеводов определяет
обмен белков и жиров.
Жизнь микробов возможна и без доступа кислорода
воздуха. Энергия, необходимая для жизнедеятельности
организма, образуется в результате брожения. Послед-
нее никогда не приводит к полному окислению органи-
ческих веществ. Его производят главным образом дрож-
жи, а также некоторые бактерии и грибы. Различают
три основных вида брожения: спиртовое, молочнокислое
и маслянокислое. Общим для этих брожений является
то, что глюкоза расщепляется до пировиноградной кис-
лоты, а дальше в зависимости от наличия тех или иных
ферментов идет различный вид брожения.
Для сохранения пыльцы пчелы также используют
молочнокислое брожение. Пчелиную ячейку можно срав-
нить с миниатюрной силосной башней. Во время сбора
пыльцы пчелы добавляют к ней нектар или мед, плотно
трамбуют, а сверху заливают медом и запечатывают
восковой крышечкой. Создаются идеальные анаэробные
условия для молочнокислого брожения, вызываемого
Lactobacterium pollinis и другими бактериями, в резуль-
тате чего пыльца превращается в длительно сохраняю-
щийся продукт — пергу, которой пчелы питаются в кон-
це зимы и весной.
Между аэробами и анаэробами существуют проме-
жуточные формы микроорганизмов. Они способны раз-
множаться как в присутствии, так и в отсутствии кис-
лорода. К этой группе относят большинство паразитов
и сапрофитов.
Питание микроорганизмов обеспечивает структуру
микробной клетки и размножение. Питание, как прави-
ло, сопровождается эндотермическими реакциями (с по-
глощением теплоты), а дыхание — экзотермическими
реакциями (с освобождением теплоты). Эти процессы
протекают одновременно и обеспечивают необходимый
25
в клетке обмен веществ, который включает в себя два
противоположных и в то же время единых процесса:
ассимиляцию (конструктивный обмен веществ) и дисси-
миляцию (энергетический обмен веществ). Обмен ве-
ществ осуществляется с помощью ферментов.
Ферменты (энзимы). Синтезируются они микробной
клеткой и имеют сложное строение. Некоторые фермен-
ты состоят только из белка, а другие — из белка н не-
белковой части (ионы металлов, витамины). Ферменты
обладают высокой специфичностью. Например, фермент
эстераза расщепляет жир, каталаза — перекись водорода,
хитиназа — хитин. Они обладают очень высокой актив-
ностью. Так, 1 г амилазы может превратить в сахар 1 т
крахмала. Различают экзоферменты, выделяемые мик-
роорганизмами в окружающую среду, которые подго-
тавливают питательные вещества для всасывания клет-
кой и служат для внешнего переваривания, и эндофер-
менты, заключенные внутри клетки и тесно связанные
с ней.
Все ферменты делят на 6 классов: оксидоредуктазы,
трансферазы, гидролазы, лиазы, изомеразы и лигазы
(синтетазы). Каждый класс ферментов обозначается
четырьмя цифрами. Первая цифра обозначает класс
ферментов, вторая — подкласс и указывает соединения,
на которые действует фермент, третья — подподкласс,
четвертая — номер фермента. Ферменты имеют оконча-
ние «-аза».
Оксидоредуктазы осуществляют окислительно-вос-
становительные реакции. К ним относятся различные
дегидрогеназы, окисляющие спирты в альдегиды и аль-
дегиды в кислоты. Если в реакции принимает участие
кислород, активируемый во время реакции, то фермен-
ты называются оксидазами. К ним относятся аскорби-
натоксидаза, гидрогеназа, каталаза, пероксидаза.
Трансферазы переносят радикалы —СН3, —Н2, аль-
дегидные или пептоновые остатки.
Гидролазы присоединяют или отщепляют частички
воды у белков, жиров или углеводов. Гидролазы, дейст.
вующие на сложноэфирные связи, называются эстераза-
ми (эстер — эфир). Примером их может служить липа-
за, расщепляющая жиры на глицерин и жирные кислоты.
Обширная группа гидролаз расщепляет сложные угле-
воды на простые. Амилазы расщепляют крахмал до мо-
носахаров и декстринов.
Гидролазы, действующие на пептидные связи, отно-
сят к пептидгидролазам. Они расщепляют белки на пеп-
тиды и аминокислоты. К ним относятся аминопептидазы,
карбоксилпептидазы и протеиназы. У микроорганизмов
протеазы определяют по разжижению желатина и пеп-
тонизации казеина молока. Образуют протеазу Вас. lar-
vae, Вас. alvei, Pseudomonas apisepticum и др.
При помощи эстеразы грибы (Aspergillus, Penicillium,
Oidium, Candida) и некоторые бактерии (Proteus, Ser-
ratia, Micrococcus) в большом количестве разрушают
соты, хранящиеся вне ульев в сырых помещениях, а
также вытопку и мерву на воскозаводах.
Лиазы — ферменты, отщепляющие или присоединя-
ющие без участия воды различные соединения с двойной
связью. Декарбоксилазы отщепляют карбоксильную
группу от аминокислот и укорачивают углеродную цепь.
Изомеразы осуществляют внутримолекулярные пере-
стройки (фосфат глюкозы в фосфат фруктозы).
Лигазы (синтетазы) соединяют две молекулы с одно-
временным разрывом фосфатных связей.
Пигментообразование. Пигменты — красящие веще-
ства, вырабатываемые клеткой микроорганизма. Коло-
нии микробов на твердых средах окрашиваются в раз-
ные цвета. Так, чудесная палочка образует красный
пигмент, белый стафилококк—белый, золотистый ста-
филококк— золотистый, синегнойная палочка — синий.
Дрожжи и грибы чаще образуют черные, бурые и белые
пигменты. Различают пигменты нерастворимые в воде
и растворимые. В последнем случае окрашивается не
только колония микроорганизмов, но и питательная
среда. Пигменты защищают микроорганизмы от небла-
гоприятных воздействий внешней среды. В бактериоло-
гии для выявления пигмента микроорганизмов чаще
используют картофельную среду.
Токсинообразование. Микробные токсины делят на
экзотоксины (выделяемые микробом во внешнюю сре-
ду) и эндотоксины, связанные с телом микробной клет-
ки. Экзотоксины продуцируют в основном грамположи-
тельные микроорганизмы, а эндотоксины характерны
Для грамотрицательных микроорганизмов.
Размножение и рост. Размножение — это увеличение
числа особей, а рост микроорганизмов — увеличение их
массы за счет питательных веществ. При благоприятных
условиях большинство микроорганизмов делится попо-
26
23
лам каждые 20—30 мин, и через 5 сут живая масса
микроорганизмов заполнила бы все моря и океаны. Как
правило, бактерии размножаются простым делением, но
некоторые — почкованием, образованием клеток, подоб-
ных спорам. Грибы размножаются в основном спорами.
Большое значение для выращивания бактерий имеет
концентрация водородных ионов. Большинство патоген-
ных бактерий развивается в слабощелочной среде
(pH 7,2—7,6), а грибы —в кислой (pH 3,0—6,8). Тем-
пературный режим для энтомопатогенных микроорганиз-
мов чаще составляет 20—35 °C.
В лабораториях бактерии и грибы выращивают на
питательных средах. Последние подразделяются на про-
стые (мясопептонный бульон и мясопептонный агар),
специальные (сывороточный бульон и агар) и диффе-
ренциально-диагностические (среда Эндо, среды с угле-
водами). Иногда используют элективные среды, на
которых хорошо растут лишь определенные виды бак-
терий. Питательные среды делят на плотные, жидкие
и полужидкие. На плотных средах микробы образуют
характерные колонии. Они различаются по размерам,
форме, характеру поверхности, профилю, краям, цвету,
структуре. Отдельная колония, как правило, является
чистой культурой. На жидких средах бактерии образуют
помутнения, пленку и осадок. Выращивают бактерии
в лаборатории в пробирках и чашках Петри.
Наследственность и изменчивость. Науку о наслед-
ственности и изменчивости живых организмов называют
генетикой. Одним из ее разделов является генетика
микроорганизмов. Исследованиями Л. Пастера и
Л. С. Ценковского обнаружена изменчивость у микро-
организмов, что в дальнейшем легло в основу создания
вакцин. Установлено, что ответственным за передачу
наследственных признаков является ДНК, а у некоторых
вирусов — РНК.
Бактериальная клетка имеет одну хромосому, кото-
рая точно воспроизводит свою копию. Изменение генов
ведет к изменению отдельных признаков и свойств
организмов. У микроорганизмов чаще всего изменяются
морфологические признаки. Так, широкое применение
антибиотиков привело к появлению L-форм (безоболо-
чечных) бактерий и грибов. Может изменяться и харак-
тер роста, что связано с наличием S-форм (гладкие),
R-форм (шероховатые) и О-форм (переходные) колонии
культур. Добавлением определенных веществ можно
усилить или ослабить образование микроорганизмами
ферментов. Воздействуя на микроорганизмы повышен-
ной температурой, длительными пассажами на специаль-
ных питательных средах, можно изменить биологические
свойства возбудителей некоторых заболеваний, что ис-
пользуется в практике получения вакцин.
Использование микроорганизмов в народном хозяй-
стве. Микроорганизмы очень широко используют в мик-
робиологической, пищевой и целом ряде других отраслей
промышленности, а также в сельскохозяйственном про-
изводстве, медицине и ветеринарии.
Живое население почвы следует рассматривать одним
из важнейших факторов плодородия. Одну из ведущих
ролей здесь играют лучистые грибы. Они способны вы-
рабатывать биологически активные вещества, стимули-
рующие рост и развитие высших н низших организмов.
Из культур актиномицетов выделены биотин, тиамин,
рибофлавин, пантотеновая и никотиновая кислоты, ами-
нокислоты и другие ростовые вещества. Микрококки
играют также большую роль в почвообразовании. Они
разлагают органические остатки, осуществляя аммони-
фикацию белковых веществ. Большую роль играют
клубеньковые бактерии, так как без них бобовые рас-
тения не выполняют функции азотонакопителей.
Пищевой, текстильной, кожевенной и другим отрас-
лям промышленности требуются химически чистые фер-
менты. В этом плане очень перспективно использование
актиномицетов. Для удаления шерсти со шкур приме-
няют фермент кератиназу, получаемую из этих микро-
организмов.
Спиртовое брожение, используемое в пищевой про-
мышленности, основано на использовании пивных, хлеб-
ных и кефирных дрожжей, а уксуснокислое — бактерий
из рода Acetobacter.
Молочнокислое брожение осуществляется с помощью
микробов Str. lactis, Bact. acidophilus, Bact. bulgaricum,
Bact. casei. Они очень широко используются для изго-
товления кефира, ацидофилина, кумыса, сливочного мас-
ла, хлеба, квашения капусты и т. д. На действии этой
микрофлоры основано силосование кормов для сельско-
хозяйственных животных.
Для лечения бактериальных, грибковых и некоторых
паразитарных заболеваний животных, прудовых рыб,
29
28
пчел и шелкопрядов широко применяют антибиотики.
Из антибиотиков, продуцентами которых являются акти-
номицеты, наиболее успешно в ветеринарии используют
стрептомицин, тетрациклин, синтомицин, неомицин, эри-
тромицин, олеандомицин, тилозин. К противогрибковым
препаратам относятся нистатин, леворин, гигромицин.
Для борьбы с вредными насекомыми широко применяют
бактериальные препараты (энтомопатогенные).
Лабораторно-практическое занятие 2
Цель занятия. Освоить способы подготовки и стери-
лизации лабораторной посуды и изготовления ватно-
марлевых пробок. Приготовить мясную воду, мясопеи-
тонный бульон (МПБ) и мясопептонный агар (МПА).
Ознакомиться с устройством аппаратуры, применяемой
в лабораторной практике, и простерилизовать ранее
приготовленные среды. Освоить технику посева микро-
организмов и патологического материала на МПА'и
МПБ. Ознакомить учащихся с выделением чистой куль-
туры, специальными и цветными средами.
Оборудование и материалы: пробирки, чашки Петри, мерные
цилиндры, стаканы, пипетки, воронки, оберточная бумага, вата,
марля, предметные стекла, бактериологические петли, пастеровские
пипетки, хозяйственное мыло, автоклав, аппарат Коха, сушильный
шкаф, водяная баня, весы, вода, газовые горелки (плитки), спир-
товки, фильтровальная бумага, приборы для определения pH (при-
бор Михаэлиса, pH-метр, ЛПУ-01), пробирки со стерильным физио-
логическим раствором, микроскопы, карандаши по стеклу, сосуды
с 2 /о-ным раствором фенола, готовая мясная вода, поваренная
соль, яйца или сыворотка крови, агар-агар, децинормальный раст-
В0Р ®ого натРа> 10 %-ный раствор углекислой соды, среды МПА
н МПБ, культуры микроорганизмов, патологический материал (по-
гибший расплод и т. д.), кедровое масло.
Место проведения занятия. Учебные классы.х
Методика проведения занятий. Преподаватель знако-
мит учащихся со способами подготовки лабораторной
посуды, показывает технику изготовления ватных про-
бок. Учащиеся моют посуду (колбы, чашки Петри,
пробирки и др.), готовят пробки и завертывают их и
чашки Петри в бумагу для стерилизации. Подготовлен-
ную посуду стерилизуют в сушильном шкафу.
Подготовка лабораторной посуды имеет большое зна-
чение в лабораторной практике. Бывшую в употреблении
посуду стерилизуют кипячением или автоклавированием.
Сильно загрязненную посуду сутки замачивают в раст-
воре натрия гидроокиси (едкий натр). Органические
остатки удаляют растворителями: ацетон, спирт, эфир
и т. д. Для очистки можно в течение 2—3 сут выдер-
живать посуду в 1 %-ном растворе хлорной извести или
промыть 1 %-ным раствором соляной кислоты.
Далее преподаватель объясняет способы изготовле-
ния питательных сред и определения их pH. Учащиеся
самостоятельно готовят среды, определяют и устанавли-
вают pH, разливают по колбам и пробиркам. Питатель-
ные среды хранят в холодильнике до следующего заня-
тия или помещают в автоклав или аппарат Коха для
стерилизации.
Основой большинства питательных сред является
мясная вода. Для этого нежирное мясо освобождают
от костей, сухожилий, фасций и готовят фарш. В по-
следний добавляют дистиллированную воду в соотно-
шении 1:2. Сутки настаивают, кипятят 1,5—2 ч,
фильтруют, доводят дистиллированной ?одой до перво-
начального объема. Разливают в колбы, бутылки и
автоклавируют 30—40 мин при 1 атм.
Мясопептонный бульон (МПБ). К мясной
воде добавляют 1 % пептона, 0,5 % химически чистой
поваренной соли и кипятят. Определяют pH при помощи
компаратора Михаэлиса или электропотенциометра,
добавлением раствора соды или натрия гидроокиси
устанавливают pH 7,2—7,4. Бульон еще раз кипятят 10
15 мин, фильтруют через двойной бумажный фильтр
и разливают по колбам и пробиркам. Стерили-
зуют 20 мин при 1 атм в автоклаве.
Мясопептонный агар (МПА). Получают его
добавлением 2 % агара-агара и расплавляют кипячени-
ем или в'текучепаровом аппарате. В расплавленном
агаре устанавливают pH 7,2—7,4. Для просветления
агар охлаждают до 50 °C и к 1 л среды добавляют
белок одного куриного яйца или 10 мл сыворотки крови.
Нагревают в автоклаве 20 мин при температуре 105 С
и в горячем виде фильтруют через ватно-марлевый
фильтр. Затем разливают в колбы или пробирки и сте-
рилизуют в автоклаве 30 мин при 1 атм, К простым
средам относятся мясопептонный желатин (МПЖ),
молоко и картофель.
Специальные и дифференциальн о-д и аг-
ностические среды. Специальные среды использу-
30
31
ются для выделения микроорганизмов, которые на
обычных средах не растут.
Сывороточный бульон и сывороточный МПА готовят
путем асептического добавления к МПБ или расплав-
ленному и охлажденному до 45—50°С МПА 10% сте-
рильной сыворотки крови лошади.
Цветные среды Гисса. В пептонную воду (дистилли-
рованная вода, 0,5 % поваренной соли и 1 % пептона)
добавляют 0,5 % углевода . (сахар или многоатомный
спирт) и 0,5 % индикатора Андредэ: 100 мл дистиллиро-
ванной воды, 0,5 г фуксина кислого, 16,4 мл нормаль-
ного раствора натрия гидроокиси, 10 мин выдерживают
в водяной бане и хранят в темном месте. Среды разли-
вают в пробирки с газовками, опущенными вверх дном,
стерилизуют текучим паром дробно. Образующийся при
ферментации газ скапливается в поплавках. Среды
Гисса могут быть жидкими и полужидкими. Для приго-
товления ' последних добавляют 0,25 % агара-агара. В
эти среды газовки не помещают.
Для выращивания грибов применяют агар Сабуро:
глюкозы 4 г, пептона 1 г, агара 1,8 г, воды дистиллиро-
ванной 100 мл. Стерилизуют автоклавированием. Ис-
пользуют также сусло-агар, картофельно-морковный
агар и др.
pH питательной среды определяют калориметриче-
ским и электрометрическим методами. Первый основан
на сравнении окраски среды после добавления в нее
индикатора с готовыми стандартами. В бактериологи-
ческой практике, как правило, используют индикаторы
метанитрофенолового ряда. Для сравнения окраски сре-
ды со стандартом используют компаратор. Это деревян-
ный брусок с тремя вертикальными и горизонтальными
отверстиями. Последние снабжены фильтрами (матовое
или синее стекло). В компаратор обычно ставят четыре
пробирки. В первом ряду пробирки № 1 и 2, во втором —
№ 4 и 5. В пробирку № 1 наливают 2 мл питательной
среды, 4 мл дистиллированной воды и 1 мл метанитро-
фенола, в пробирку № 2 — 2 мл питательной среды
и 5 мл дистиллированной воды, в пробирку № 4—7 мл
дистиллированной воды, а в гнездо № 5 ставят стандарт-
ную пробирку из набора. Меняя эти пробирки, подби-
рают наиболее соответствующую питательной среде.
Электрометрическим методом определяют pH с по-,
мощью специальных приборов.
32
Преподаватель объясняет устройство н принцип дей-
ствия приборов, используемых в лабораторной практике,
технику безопасности.
Стерилизацию осуществляют разными методами.
Стерилизация прокаливанием (фламбирование) чаще
применяют для обеззараживания бактериологических
петель, пастеровских пипеток и др. При стерилизации
кипячением используют дистиллированную или кипяче-
ную воду с добавлением 1 % соды.
Стерилизацию сухим паром в печах Пастера (су-
шильных шкафах) используют для бактериологических
чашек, пробирок, колб и другой стеклянной посуды.
Печь Пастера — это двухстенный шкаф, покрытый асбес-
том или теплоизоляционным материалом. Температура
для стерилизации должна быть не ниже 140°C, при
которой стерилизуют 2 ч, или 170°C — 45 мин.
Стерилизация насыщенным паром под давлением в
автоклаве. Автоклав — двухстенный, герметически за-
крывающийся котел. Он снабжен автоматическим уст-
ройством, регулирующим режим работы. При повыше-
нии давления в автоклаве повышается и температура.
Так, 0,05 МПа соответствуют температуре ПО—112°С;
ОД МПа—120—121; 0,15 МПа— 124—126; 0,2 МПа —
132—133 °C. В автоклаве стерилизуют питательные сре-
ды, выдерживающие нагревание свыше 100 °C, стеклян-
ную посуду, халаты, а также обеззараживают культуры
микроорганизмов и посуду.
Стерилизация текучим паром в аппарате Коха (ме-
таллический цилиндр, снаружи покрытый теплоизоляци-
онным материалом). Внутрь цилиндра наливают воду
и на подставку ставят ведерко с отверстиями, в которое
помещают стерилизуемый материал. Температура не
превышает 100 °C, и поэтому в аппарате Коха стерили-
зуют питательные среды, состав которых изменяется при
высокой температуре (картофель, молоко, среды с са-
харом и т. д.). Стерилизуют дробно в течение 3 дн.
по 30 мин.
Вегетативные формы бактерий можно убить пасте-
ризацией— нагреванием при 70°C в течение 30 мин или
при 90 °C— 15 мин.
Техника посева микроорганизмов на
питательные среды. Посевы па питательные сре-
ды проводят вблизи горящей горелки. Посев производят
бактериологической петлей или пастеровской пипеткой.
3—381
33
При посеве на плотную питательную среду пробирки
с засеваемой культурой и со стерильной средой берут
в левую руку и держат в наклонном положении в сто-
рону пламени. В правой руке держат петлю и пробки
из пробирок. В открытую у пламени пробирку с куль-
турой или суспензией патматериала опускают петлю,
аккуратно берут небольшое количество (каплю) и пере-
носят петлю в пробирку со стерильной средой. Петлю
опускают в конденсат и зигзагообразными движениями
наносят суспензию снизу вверх по скошенной поверх-
ности среды. Посевы ставят в термостат для выращива-
ния. Через 24—28 ч изучают культуральные свойства
бактерий.
При посеве на жидкие среды (МПБ, молоко) в ле-
вой руке держат пробирку, а в правой— петлю с засе-
ваемым материалом и пробку. Около пламени петлю
с каплей материала вносят в пробирку и слегка погру-
жают в среду. Закрывают пробирку пробкой, а петлю
прожигают и опускают в сосуд с 2 %-ным раствором
карболовой кислоты. Засеянные среды помещают в тер-
мостат. Необходимо обратить внимание на то, чтобы
среда не выливалась и не касалась пробки.
При внесении на плотную среду небольшого колиае-
ства бактерий вырастает отдельная колония. Различают
колонии мелкие (1—2 мм), крупные (более 2 мм) и
росинчатые; сухие, влажные, слизистые; гладкие, шеро-
ховатые и с неровной поверхностью; с ровными и неров-
ными краями; выпуклые, плоские, с углублениями; глян-
цевые, прозрачные, матовые, бесцветные и пигментиро-
ванные.
При росте на жидких питательных средах микроорга-
низмы могут образовывать пленку нежную или грубую,
складчатую или гладкую. Иногда образуется пристеноч-
ное кольцо. Цвет среды или не изменяется, или приоб-
ретает окраску пигмента, образуемого микроорганизмом.
Отмечаются помутнение или осадок. Осадок может быть
рыхлым, легко разбивающимся при встряхивании, или
слизистым, поднимающимся в виде косички; в виде
сплошной массы на дне пробирки или в виде крупинок.
Методы выделения чистой культуры и
определение возбудителя. В исследуемом
материале обычно содержится несколько видов микро-
организмов. Для их выделения существует несколько
методов,
34
Метод Дригальского (метод рассева). Берут не-
сколько чашек Петри со стерильным МПА. В одну из
них на поверхность агара наносят каплю исследуемого
материала. Шпателем растирают каплю по всей по-
верхности среды, закрывают чашку крышкой. Этим же
шпателем проводят по поверхности второй, третьей сре-
ды и т. д. В первой чашке будет густой рост, а в послед-
ней получают изолированные колонии. Колонии изучают
по внешнему виду, готовят мазок, окрашивают и микро-
скопируют. Отобрав колонию с характерными признака-
ми, из нее производят посев в пробирки с МПА и МПБ
(отвивка) для получения чистой культуры одного вида
микроорганизма.
Метод Пастера (разведения). Основан он на после-
довательном разведении в 10 пробирках с жидкой сре-
дой исследуемого материала, чтобы в последней пробир-
ке была чистая культура.
Для выделения спорообразующих микроорганизмов
исследуемый материал нагревают в водяной бане при
80 °C в течение 30 мин. При этом вегетативные формы
погибают, а на средах вырастают только спорообразу-
ющие микроорганизмы. Анаэробы выращивают в экси-
каторе или анаэростате.
При определении микроорганизмов учитывают мор-
фологические свойства, подвижность, окраску по Гра-
му, сахаролитические, протеолитические свойства, об-
разование пигментов, индола, сероводорода.
В «Определителе бактерий и актиномицетов» Н. А.
Красильникова (1949) эубактерии и родственные им ор-
ганизмы подразделены на 4 класса: истинные бактерии
(Eubacteriae), акгиномицеты (Actinomycetes), микобак-
терии (Mixobacteriae) и спирохеты (Spirochaetae). Для
определения энтомопатогенных бактерий рекомендуют-
ся книга «Микрофлора насекомых» (1969) и «Краткий
определитель бактерий Берги» (1980).
Контрольные вопросы
1. Как питаются микроорганизмы и каково деление их по типу
питания?
2. Что такое осмос, тургор, плазмолиз, плазмоптиз?
3. Какие бывают ферменты и каково их назначение?
4. Что представляют собой автотрофы, гетеротрофы, паратро-
фы?
5. Роль отдельных микроорганизмов в жизни пчел.
3*
35
6. Типы дыхания микроорганизмов.
7. Факторы, влияющие иа изменчивость микроорганизмов.
8. Каково назначение питательных сред?
9. На чем основан метод определения микроорганизмов?
10. Как используются микроорганизмы в различных отраслях
народного хозяйства?
МИКРООРГАНИЗМЫ И ВНЕШНЯЯ СРЕДА
Микроорганизмы во внешней среде встречаются по-
всеместно— в воде, почве, воздухе, на растениях, в ор-
ганизме человека, животных, насекомых, в продуктах
пчеловодства, внутриульевом соре и на различном ин-
вентаре по уходу за пчелами. Необходимо отметить, что
микроорганизмы обладают хорошо выраженной спо-
собностью приспосабливаться к различным условиям
внешней среды.
Влияние факторов внешней среды. Физические
факторы. К ним относятся температура, свет, ульт-
развук, высушивание. Микробы по сравнению с высши-
ми организмами обладают очень большой приспособ-
ляемостью к температурным факторам. Особенно устой-
чивы к низким температурам вирусы. Губительно дей-
ствует на микроорганизмы чередование высоких и низ-
ких температур. К высоким температурам большинство
микробов неустойчивы. Не образующие спор бактерии
при температуре 60 °C погибают через 30—60 мин.
По адаптации к температурным условиям микроор-
ганизмы делят на три группы: 1) психрофилы (холодо-
любивые)— обитатели холодных источников, озер и
океанов с оптимальной температурой 15—20 °C, но не-
которые могут развиваться и при температуре —6 °C.
Эти микроорганизмы причиняют вред пчеловодству, раз-
рушая в зимнее время соты, пергу, мед; 2) мезофилы —
микроорганизмы, которые активно размножаются при
температуре 30—37 °C. К ним относятся большинство
сапрофитов и все болезнетворные микроорганизмы;
3) термофилы (теплолюбивые) — температурный опти-
мум 50—60 °C. Размножаются они при самонагревании
сена, навоза, зерна и т. д.
К высушиванию неустойчивы неспоровые и вегета-
тивные формы спорообразующих микроорганизмов.
Споры же в высушенном состоянии сохраняются десят-
ки лет. Высушивание вызывает обезвоживание цито-
плазмы и денатурацию белков клетки. В ветеринарии
36
для длительного сохранения микроорганизмов и живых
вакцин применяют лиофилизацию — обезвоживание при
низкой температуре под вакуумом.
Прямой солнечный свет убивает большинство мик-
роорганизмов в течение нескольких минут или часов.
Механизм действия света заключается в воздействии на
организм ультрафиолетовых, инфракрасных лучей и
фотохимических окислительных процессов. В лаборатор-
ных условиях используют ультрафиолетовые лучи с
длиной волны 200—300 нм. Рентгеновские лучи в ма-
лых дозах стимулируют размножение микроорганизмов,
а в больших — убивают их. В настоящее время с по-
мощью ионизирующей радиации стерилизуют пищевые
продукты, не изменяя их пищевых качеств.
Ультразвук (частые и сильные механические сотря-
сения) используется для стерилизации воды и разру-
шения (дезинтеграции) в жидкой среде клеток, в том
числе микроорганизмов.
Химические факторы. Большую роль в этом
играют природа веществ, концентрация, состав среды,
температура. В малых дозах они стимулируют развитие
микроорганизмов, а в больших — вызывают гибель. На
микроорганизмы большое влияние оказывает реакция
среды (pH), которая обусловливается содержанием
Н+- и ОН~-ионов.
Спирты при разведении приобретают бактерицидные
свойства, наибольшей обладает 70%-ный спирт. Поверх-
ностно-активные вещества (кислоты, мыла, детергенты)
повреждают клеточную оболочку и нарушают функцию
цитоплазматической мембраны. Фенолы и их производ-
ные повреждают клеточную стенку, белки клетки и по-
давляют функции отдельных ферментов. Окислители
(хлор, йод, перекись водорода, калия перманганат
и др.) действуют на сульфгидрильные группы активных
белков и другие компоненты. Красители (бриллианто-
вый зеленый, флавакридин и др.) обладают бактери-
цидным действием. Мед, глицерин, концентрированные
растворы сахаров и поваренной соли изменяют осмоти-
ческое давление и вызывают гибель микроорганизмов.
Многие химические вещества испбльзуют не только
для дезинфекции, но и для консервирования продуктов
и кормов.
Биологические факторы. Представители раз-
ных микроорганизмов могут вступать в различного
37
рода взаимоотношения. Если присутствие одной популя-
ции не только благоприятно, но и необходимо для су-
ществования другой, и наоборот, то их взаимодействия
называют симбиозом. Взаимоотношения, при которых
один вид наносит ущерб другому и не может сущест-
вовать без него, называют либо паразитизмом, либо
хищничеством. Паразитизм — отношения, когда пред-
ставители одного вида обитают внутри или на поверх-
ности другого. Хищничество — отношения, при которых
представители одного вида поедают представителей дру-
гого. Антагонизм — сожительство, при котором продук-
ты жизнедеятельности одних микроорганизмов обуслов-
ливают гибель других. Антагонистические свойства наи-
более сильно выражены у актиномицетов и спорообра-
зующих микроорганизмов.
На организмы, кроме антибиотиков, оказывают дей-
ствие и другие биологические факторы — лизоцим, анти-
тела, различные ингибиторы и бактериофаги.
Антибиотики — вещества микробного, животного и
растительного происхождения, подавляющие рост и
развитие микроорганизмов. Наиболее активными проду-
центами антибиотиков являются плесневые грибы и ак-
тиномицеты. Так, пенициллы образуют пенициллин, а
аспергиллы — фумагиллин (фумидил Б), аспергиллин.
Большинство антибиотиков выделены из актиномицетов:
биомицин (хлортетрациклин), тетрациклин, неомицин,
нистатин и др. Из бактерий наиболее активными про-
дуцентами антибиотиков являются почвенные сапрофи-
ты. К этой группе относятся грамицидин, бецитрацин,
полимиксин и др. Эффективность их ниже, чем у пер-
вой группы. К антибиотикам животного происхождения
относят эритрин, получаемый из эритроцитов животных,
экмолин — из тканей рыб, лизоцим — из яичного белка.
В последнее время в ветеринарной практике и медици-
не используют полуеинтетические антибиотики — лево-
мицетин, саназин, ампициллин, метициллин и др.
Антимикробные вещества высших растений открыты
в 1928 г. Б. П. Токиным, которые автор назвал фитонци-
дами. Антимикробное действие их обусловлено эфирны-
ми маслами, глюкозидами, органическими кислотами,
растительными смолами и другими компонентами. Наи-
более выраженной бактерицидной активностью облада-
ют лук, чеснок, хрен, алоэ, почки березы, листья чере-
мухи.
38
Из продуктов пчеловодства особого внимания за-
служивает прополис, содержащий большое количество
эфирных масел и растительных смол. Фитонциды обла-
дают хорошо выраженной специфичностью, т. е. вызы-
вают гибель одних и совершенно безвредны для дру-
гих микроорганизмов.
При использовании антибиотиков необходимо пра-
вильно выбрать препарат с учетом чувствительности к
нему микроорганизма, определить дозу и кратность при-
менения. Нельзя длительное время применять один и
тот же антибиотик. Это часто вызывает дисбактериоз в
организме хозяина, что может привести к появлению
новых заболеваний. Надо всегда помнить, что подавле-
ние одних микроорганизмов вызывает активное раз-
множение их антагонистов.
Бактериофагия — противомикробное действие, сопро-
вождающееся лизисом (растворением) клетки. Фаги из-
вестны почти у всех патогенных микроорганизмов, в том
числе у медоносных пчел. Размеры их от 8 до 100 нм,
обладают выраженной специфичностью действия и ис-
пользуются для лечения, профилактики многих инфек-
ционных заболеваний.
Микрофлора почвы. Наибольшее количество микро-
организмов находится в почве. В ней живут амебы,
инфузории, грибы, водоросли, актиномицеты. Плодоро-
дие почвы зависит от наличия в ней органических, не-
органических веществ и микроорганизмов. Наибольшее
количество микроорганизмов находится на глубине 5—
15 см. Между плодородием почвы и содержанием в ней
микроорганизмов существует тесная зависимость. На
каждый гектар малоплодородной почвы приходится
2,5—3 т микробной массы, а высокоплодородной — до
16 т. Почва часто содержит возбудителей заболеваний
человека, животных и насекомых. В нее они попадают
с выделениями, трупами, сточными водами. Спорообра-
зующие микроорганизмы сохраняются в почве длитель-
ный период.
Микрофлора воды. Чем больше в воде органических
веществ, тем больше в ней микроорганизмов. Менее
всего загрязнена атмосферная вода. Обсеменение под-
земных вод микробами зависит от глубины, с которой
вода поступает. Артезианская вода бедна микроорга-
низмами. Больше всего их в водах прудов, озер и рек,
особенно при загрязнении их стоками. В воде опреде-
39
ляют количество микроорганизмов в 1 мл (микробное
число), коли-индекс — количество кишечной палочки в
1 л воды и др. В воде встречаются и энтомопатогенные
микроорганизмы Pseudomonas, Esherichia и др.
Микрофлора воздуха. Воздух является неблагопри-
ятной средой для размножения микроорганизмов. Это
связано с отсутствием питательных веществ, действием
солнечных лучен и высушиванием. В воздух микрофло-
ра попадает с почвы, воды и растений вместе с пылью,
капельками влаги, пыльцой растений и другими объек-
тами. Состав микроорганизмов воздуха разнообразен —
актиномицеты, грибы, дрожжи, микрококки, сарцины,
сенная, картофельная и другие спорообразующие палоч-
ки. Большое количество микроорганизмов содержится в
воздухе крупных промышленных городов, меньше — в
сельской местности. Много микрофлоры в зимовниках
для пчел. Максимальное количество микроорганизмов
в воздухе бывает в июне — августе, минимальное — в
декабре — январе. Осадки уменьшают содержание мик-
роорганизмов в воздухе. Санитарно-гигиеническая оцен-
ка определяется общим количеством микроорганизмов в
1 м3 воздуха. Животноводческие помещения и зимов-
ники для пчел должны содержать не более 1000 бакте-
рий в 1 м3.
Микрофлора растений. На поверхностных частях ра-
стений всегда имеются микроорганизмы, которые име-
нуются эпифитными (эпи — на, фитон — растение). На
растениях чаще всего встречаются травяная, сенная,
картофельная и кишечная палочки, молочнокислые бак-
терии, пигментные кокки, различные виды актиномице-
тов, плесени и дрожжи. Эта микрофлора вызывает пор-
чу скошенной травы и других кормов, что обусловлено
наличием большого количества в них свободной воды.
Для сохранения кормов их высушивают и силосуют.
Кроме эпифитной, на растениях часто бывает и фито-
патогенная микрофлора, которая вызывает различные
заболевания. Бактериальные, вирусные и грибковые бо-
лезни растений наносят огромный экономический ущерб,
поражая ценные сорта бобовых, эфиромасличных, тех-
нических и овощных культур.
Микрофлора насекомых. Количественный и видовой
состав микрофлоры насекомых тесно связан со средой
их обитания. В связи с тем что между разнообразными
насекомыми-опылителями и энтомофильными растения-
40
ми существуют тесные гармоничные связи, это нашло
отражение и в составе микрофлоры насекомых. Наибо-
лее обильна микрофлора насекомых, живущих в почве,
и особенно в ризосфере (околокорневая зона растений).
Зеленые части растений относительно бедны микрофло-
рой. Поэтому в кишечнике насекомых, питающихся нек-
таром, пыльцой и листьями растений (личинки медонос-
ной пчелы и гусеницы тутового шелкопряда), содержит-
ся небольшое количество микрофлоры. По данным В. И.
Полтева с соавторами, из пищеварительного аппарата
здоровых насекомых некоторых отрядов чешуекрылых,
перепончатокрылых и жесткокрылых выделено более
1500 штаммов бактерий и актиномицетов. У этих насе-
комых 80 % микроорганизмов составляют представители
неспорообразующих бактерий. При этом 48,6 % занима-
ют грамотрицательные бактерии из родов Pseudomonas,
Bacterium и Chromobacterium.
Среди ' неспоровых грамположительных бактерий
22,1 % занимают кокковые формы родов Streptococcus,
Sarcina и Micrococcus.
По фазам развития насекомых микроорганизмы вы-
делены из яиц — 2,8%, личинок — 41,9, куколок—17,5
и из взрослых насекомых — 37,7 %. Наибольшее коли-
чество микроорганизмов выделено из личинок и взрос-
лых насекомых, что связано с их активным состоянием
и потреблением пищи.
Сравнивая микрофлору медоносных растений, некта-
ра и пыльцы, можно проследить, как она заносится в
гнездо пчелиной семьи и распределяется в корме и сре-
ди различных возрастных групп. На состав микрофло-
ры пчелиной семьи влияют качество воды, срок исполь-
зования сотов, а также дезинфекция сотов, улья и пче-
ловодного инвентаря.
Микрофлора животных. Организм обсеменяется мик-
рофлорой, содержащейся в почве, воде, воздухе, кор-
мах. Из внешней среды она попадает на кожу, слизи-
стые оболочки, в дыжательные пути, пищеварительный
тракт и мочеполовые органы. С первым вдохом и глот-
ком молозива в организм новорожденного попадают
различные микроорганизмы. Желудочный сок разруша-
ет большинство микроорганизмов, поэтому у животных
с однокамерным желудком микрофлоры немного, с мно-
гокамерным— очень много (до 10 млрд в 1 мл содер-
жимого рубца) и составляют до 10 % сухой массы кор-
41
ма. В толстом кишечнике до 40 % сухого вещества со-
держимого составляют микроорганизмы.
Круговорот веществ в природе. Микроорганизмы при-
нимают активное участие в синтезе из минеральных ве-
ществ сложных органических соединений и разложении
органических соединений до минеральных. Участвуя в
круговороте азота, углерода, фосфора, серы и железа,
они играют огромную роль в жизни растений, насеко-
мых, животных и человека. В этом отношении большое
значение имеет круговорот азота и углерода. В круго-
вороте азота с участием микроорганизмов различают
следующие этапы- усвоение атмосферного азота, нитри-
фикацию и денитрификацию.
Усвоение атмосферного азота — в этом процессе ос-
новную роль играют свободноживущие почвенные и клу-
беньковые бактерии. Первые фиксируют до 18 кг и бо-
лее азота на 1 га в год, а вторые в симбиозе с бобо-
выми растениями — до 150—200 кг, чем значительно
повышают плодородие почвы.
Нитрификация — окисление аммиака, образующегося
при разложении органических соединений, сначала в
азотистую, а затем в азотную кислоту. Последняя, всту-
пая в соединение со щелочами, образует селитру, кото-
рая в виде растворов легко усваивается растениями.
Денитрификация — восстановление нитратов с обра-
зованием азота, который возвращается из почвы в ат-
мосферу.
Круговорот углерода также совершается с помощью
микроорганизмов. Растения синтезируют из углекисло-
ты углеводы. Под влиянием микроорганизмов расщеп-
ляются органические вещества до воды и углекислоты,
которая и возвращается в атмосферу.
Лабораторно-практическое занятие 3
Цель занятия. Ознакомиться с правилами взятия
проб воды, почвы, меда, пыльцы, пчел, кусочков сотов
с расплодом и подготовкой их для высева на питатель-
ные среды.
Оборудование и материалы: стерильные колбы с пробками,
пробирки с 9 н 4,5 мл стерильной воды, стерильные чашки Петри
в бумаге, стерильные пипетки на 1 и 2 мл, пробирки с МПА, бакте-
риологические петли, микроскопы, предметные н покровные стекла,
горелкн, бюксы, стаканчики, марля, вата, кедровое масло, среды,
краски по Граму, пчелиные семьи, патматериал, мед.
42
Воду исследуют с целью выявления общей микробной загряз*
ценности, установления кишечной палочки и патогенных микроор*
ганнзмов. Воду из рек, озер и прудов берут на глубине 0,5—1 м оч
поверхности и 1—2 м от берега. Пробу воды берут в хорошо вы*
мытые сухие стеклянные бутылки с притертыми пробками. К каж*
дой пробе (не менее 2 л) прикладывают сопроводительную, в ко*
торой отмечают местонахождение и наименование источника, дату
взятия пробы, краткое описание водоема, температуру воды и воз-
духа, цель исследования.
Место проведения занятия. Пасека, водоем, учебные
классы.
Методика исследования воды. Пипеткой-
берут 2 мл воды и 1 мл вносят в первую стерильную
чашку Петри, а 1 мл — в первую пробирку с 9 мл сте-
рильной воды (разведение 1:10). Второй пипеткой пе-
ремешивают воду в первой пробирке и переносят ее во
вторую чашку, а 1 мл — во вторую пробирку с водой.
Третьей пипеткой перемешивают воду во второй пробир-
ке (разведение 1:10) и 1 мл переносят в третью чашку
Петри. Затем около пламени горелки в чашки вносят
по 15—20 мл расплавленного и охлажденного до 45 °C
МПА и вращательным движением перемешивают МПА
с водой. На крышке делают надписи с указанием раз-
ведения, даты посева и др. Чашки переворачивают вверх
дном и ставят в термостат при температуре 35 °C. По
количеству выросших колоний судят о микробном об-
семенении в определенном количестве воды с учетом
разведения. Общее количество бактерий в воде откры-
тых водоемов не должно превышать 1000.
Определение количества микроорга-
низмов в почве. Стерильно берут 10 проб почвы
с площади 25 м2 на глубине 10—20 см и смешивают.
В лабораторию направляют 1 кг этой смеси с указа-
нием места взятия проб, характеристики почвы, цели
исследования и даты.
Порядок исследования. Навеску пробы заливают сте-
рильной водой (1:1), перемешивают в течение 10 мин
и фильтруют через несколько слоев марли. Делают по-
следовательные разведения в пробирках со стерильной
водой: из первой пробирки 0,5 мл вносят во вторую с
4,5 мл воды, из второй — 0,5 мл в третью и так далее
до 10 разведений. Стерильной пипеткой из пробирок
№ 9, 8, 7, 6, 5 и 4 вносят 1 мл в стерильные чашки
Петри, заливают расплавленным и охлажденным до
45 °C МПА, перемешивают круговыми движениями и
43
оставляют до застывания агара. Чашки помещают в
термостат при 30 °C на 2 сут. Колонии подсчитывают
в каждой чашке и вычисляют среднее арифметическое.
Так, в 8-м разведении выросло 8 колоний, их не учи-
тывают. В 7-м разведении — 50 колоний, в 6-м—160,
в 5-м — 360, в 4-м — сплошной рост, его не учитывают.
Расчет: 50-10 000 000+160-1 000 000+360-100 000=696 000 000 :
: 3 = 232 000 000 микроорганизмов в 1 г исследуемой почвы.
Методы исследования меда в связи с его
сложным составом очень многообразны. Они возложе-
ны на ветеринарную службу. В задачу последней вхо-
дят определение качества и санитарная оценка меда.
Пробы меда отбирают массой 100 г из каждой тары.
Для лабораторного исследования образцы меда берут
из разных слоев и помещают в сухую чистую стеклян-
ную посуду. Пробы закристаллизованного меда отби-
рают при помощи специального щупа. Перед взятием
пробы поверхность меда зачищают ножом или шпа-
телем. При анализе сотового меда из каждой пятой
соторамки вырезают ножом кусочки размером 25 см2.
Следят за состоянием и качеством тары, требуют от
владельца ветеринарно-санитарный паспорт пасеки, а
при необходимости и ветеринарное свидетельство.
Мед хорошего качества, как правило, не содержит
бактерий, так как обладает бактерицидными свойства-
ми. Чаще в меде встречаются возбудители различных
заболеваний пчелиных семей и некоторые виды дрож-
жей. Обсеменение меда различными микроорганизмами
бывает при размещении пасек вблизи скотных дворов
и других объектов, а также во время откачки меда и
его реализации. В меде могут присутствовать туберку-
лезная палочка, сальмонеллы, дрожжи, грибы, способ-
ные вызывать ее. порчу, микроорганизмы, патогенные
для взрослых пчел и расплода.
Для бактериологического исследования 15—20 г меда
растворяют в стерильной воде и 2—3 раза центрифуги-
руют при 2000 об/мин в течение 15 мин. В результате
микроорганизмы отмываются от сахаров и концентри-
руются в исследуемом объекте. Полученный после цент-
рифугирования осадок высевают на питательные среды.
Для выделения возбудителя гафниоза, сальмонеллеза,
септицемии посевы делают на МПА и МПБ; американ-
ского гнильца — на мясопептонный сывороточный агар
44
и бульон; европейского гнильца — на среду Бейли, Че-
репова и картофельный бульон; парагнильца — на мясо-
пептонный сывороточный бульон. Для выделения воз-
будителей микозов и дрожжей используют сусловый
агар и агар Сабуро. Культуры выращивают в термоста-
те при температуре 30—37 °C в течение 1—10 дн., а за-
тем идентифицируют.
Оценка качества пыльцы. Исследования про-
водят согласно ТУ 46 РСФСР 76—74. Из каждой треть-
ей упаковки отбирают пыльцу из верхнего, среднего и
нижнего слоев, смешивают и берут 25 г. Помещают ее
в стерильные банки или бюксы, закрывают и отправ-
ляют в лабораторию. Общая масса пробы не менее 150 г.
В лаборатории пробу делят на 3 части, помещают в
стерильные ступки, тщательно растирают пестиком,
вносят 100 мл дистиллированной воды и тщательно пе-
ремешивают. Полученную суспензию фильтруют через
ватно-марлевый фильтр, разливают в стерильные цент-
рифужные пробирки и центрифугируют 20 мин при
3000 об/мин. Надосадочную жидкость сливают, а из
осадка делают мазки на предметных стеклах, фиксиру-
ют спиртом-эфиром, окрашивают по Граму и исследу-
ют под иммерсионной системой микроскопа. Осадок из
второй части высевают на плотные и жидкие питатель-
ные среды. В связи с наличием возбудителя аскосферо-
за в пыльце обязательно делают посевы на сусловый
агар или агар Сабуро. Питательные среды с высеянным
на них материалом помещают в термостат при темпе-
ратуре 37 °C, а при исследовании на грибы — при тем-
пературе 30 °C.
Осадок третьей части используют для биопробы на
пчелах или лабораторных животных. Для этого в садки
помещают по 30—50 пчел и скармливают им сахарный
сироп с добавлением осадка из пыльцы. Пчелам конт-
рольных садков дают чистый сироп. Садки держат в
термостате при температуре 35 °C.
Лабораторные исследования. В лаборато-
рию отправляют живых и мертвых пчел, соты с рас-
плодом, медом и пергой, трупы личинок, воско-перговую
крошку со дна ульев, насекомых-паразитов, вредителей
пчел и т. д.
Живых пчел (50—100) от каждой семьи пересылают
в прокипяченных и высушенных клеточках для пере-
сылки маток или в стеклянной банке, закрытой марлей
45
'(при подозрении на септицемию, сальмонеллез, гафни-
оз, колибактериоз и варрооз — от 10 % пчелиных се-
мей), а также в фанерном или деревянном ящике с со-
товыми рамками и кормом; по 50 пчел с признаками
заболевания, законсервированных 50 %-ним глицери-
ном (при подозрении на вирусные болезни и спироплаз-
мы); по 50 живых пчел или трупов свежего подмора
(при исследовании на другие заболевания пчел, а при
паспортизации — от 10 % пчелиных семей).
Образцы сотов размером не менее 10X15 см с боль-
ными и погибшими личинками кладут в фанерный или
деревянный ящичек без обертывания каким-либо мате-
риалом, отделяют дно и крышку рейками, а при мешот-
чатом расплоде консервируют в 50 %-ном растворе гли-
церина.
Трупы пчел (подмор) с воско-перговой крошкой со
дна улья после выставки пчел в количестве не менее
200 г с пасеки отправляют при исследовании на варро-
оз, тропилелапсоз, браулез. Материал помещают в бу-
мажные пакеты или картонные коробки.
Соты размером 3X15 см с запечатанным трутневым
расплодом посылают для исследования на варрооз и
тропилелапсоз. При отравлении ядохимикатами берут
кусочек сота с пергой не менее 50 г от 10 % пчелиных
семей с признаками заболевания.
Мед пересылают в стеклянной посуде с плотно за-
крытой крышкой в количестве 100 г для исследования
на наличие возбудителей болезней и обнаружения пади
или 200 г свежеотобранного незапечатанного меда для
определения ядовитых веществ при отравлениях пчел.
Вредителей и паразитов пчел помещают на вату в
картонные коробки, во флаконы с медом, 70 %-ным спир-
том или 10 %-ным раствором формалина. Пробы про-
кладывают слоями ваты или бумаги в фанерных или
деревянных ящиках.
С отправляемым материалом посылают сопроводи-
тельную записку, в которой указывают наименование
хозяйства, адрес, номера пчелосемей, количество проб,
характерные признаки заболевания и цель исследова-
ния. При подозрении на отравление прилагают акт
комиссии, обследовавшей пасеку и отбиравшей матери-
ал, а также сообщают, на какой ядохимикат необходи-
мо провести исследование. Сопроводительная записка
46
должна иметь штамп ветеринарного учреждения. Срок
доставки проб патологического материала не должен
превышать суток с момента отбора.
Контрольные вопросы
1. Каково влияние различных факторов на микроорганизмы?
2. Что такое симбиоз, антагонизм, хищничество, паразитизм и
бактериофагия?
3. Роль микроорганизмов в круговороте веществ в природе.
4. В чем состоит техника определения микроорганизмов в во-
де, почве и меде?
5. Какова роль микроорганизмов в жизни пчел?
6. Как правильно отобрать и отправить в ветеринарную лабо-
раторию пробы воды, меда, пыльцы, пчел н расплода?
ИНФЕКЦИЯ И ИММУНИТЕТ
Взаимоотношения микроорганизмов и особей пчели-
ной семьи очень разнообразны. Целый ряд микроорга-
низмов в пчелиной семье своей жизнедеятельностью при-
носят огромную пользу, без которой жизнь пчел была
бы невозможной. Наглядный пример тому — участие
микроорганизмов в переработке пыльцы в пергу.
Кроме этой группы микроорганизмов, есть и такие,
которые не только живут за счет особей пчелиной семьи,
но и причиняют им вред, выражающийся в морфоло-
гических и физиологических нарушениях. Это микробы-
паразиты, которых чаще называют патогенными, или
болезнетворными.
Инфекция (инвазия). Это совокупность процессов,
происходящих в живом организме при внедрении и
размножении в нем патогенных микроорганизмов. Взаи-
моотношение живого организма и патогенного микроор-
ганизма при определенных условиях внешней среды, со-
провождающееся явным или скрытым изменением по-
стоянства внутренней среды организма, называется
инфекционным процессом.
Наиболее яркое проявление инфекционного процесса
называют инфекционной болезнью. Она характеризует-
ся наличием живого возбудителя, специфической реак-
цией на него организма, приобретением переболевшим
организмом невосприимчивости к повторному зараже-
нию, а также заразностью.
Выделяя специфическую роль микроорганизмов в
возникновении инфекции, Генле и Кох разработали кри.
47
терии (триада Коха), необходимые для признания мик-
роорганизма возбудителем определенной болезни:
1) микроб всегда присутствует при данном заболева-
нии; 2) микроор!анизм выделяется в чистой культуре;
3) экспериментальное воспроизведение этой культурой
заболевания, соответствующего, естественно протекаю-
щей форме болезни. Микроорганизмы, вызывающие за-
болевания насекомых, называются энтомопатогенными.
Даже такие широко распространенные в природе мик-
роорганизмы, как Salmonella и Esherichia, при опреде-
ленных условиях могут оказывать патогенное действие
на пчелиные семьи.
Под патогенностью понимают способность микроор-
ганизмов вызывать инфекционный процесс. Патоген-
ность является эволюционно закрепленной характерной
особенностью вида. Из обширного рода Bacillus пато-
генными для насекомых являются Вас. larvae, Вас.
alvei, Вас. paraalvei, Вас. pulvifaciens и др.
По признаку патогенности микроорганизмы можно
подразделить на три группы: апатогенные, факультатив-
ные (условно-патогенные) и облигатные. Каждый вид
патогенных микроорганизмов характеризуется опреде-
ленным набором факторов патогенности, что определя-
ет специфичность патогенного действия, т. е. способ-
ность вызывать определенную инфекционную (инвазион-
ную) болезнь.
Однако в пределах вида патогенность каждого штам.
ма микроорганизма может колебаться. Для характери-
стики разной степени патогенности и ее количественного
выражения применяется термин вирулентность. Это не
общевидовое свойство, а индивидуальная особенность
конкретного однородного штамма микроба, его способ-
ность реализовать свойства патогенности при определен-
ных условиях заражения насекомых.
Повышение патогенности достигается многократны-
ми пассажами микроорганизма через восприимчивых
насекомых, введением в микробную клетку фрагментов
нуклеиновых кислот или посредством методов генной
инженерии, пассажируя культуры микробов вместе с
ферментами или другими веществами через организм
насекомых, отбором наиболее вирулентных микроорга-
низмов.
Инфекционный (инвазионный) процесс. В отличие от
незаразных болезней течение заразных характеризуется
48
цикличностью, проявляющейся последовательной сме-
ной инкубационного (скрытого), продромального (пред-
клинического) и клинического периодов с благоприят-
ным (выздоровлением) или летальным исходом.
Инкубационным периодом называют про-
межуток с момента внедрения и начала размножения
возбудителя до появления первых клинических призна-
ков болезни. Продолжительность его различна и длится
от нескольких часов (при септицемии, европейском и
американском гнильцах) до 4—15 дн. (вирусные болез-
ни) и даже нескольких месяцев (меланоз маток). Дли-
тельность инкубационного периода даже при одной и
той же инфекции зависит от устойчивости пчелиной
семьи, вирулентности возбудителя, дозы и т. д. Ее учи-
тывают при определении сроков профилактического ка-
рантинирования пчелиных семей неблагополучных хо-
зяйств.
За инкубационным периодом следует продромаль-
ный (предклинический) период. Продолжи-
тельность его от нескольких часов до 1—2 дн. и харак-
теризуется снижением активности, угнетением или воз-
буждением пчелиных семей. После этого наступает п е-
риод клинического проявления болезни, при ко-
тором отмечаются основные типичные для данной бо-
лезни признаки. Продолжительность этого периода раз-
лична даже при одной и той же болезни. В основном
это зависит от устойчивости пчелиной семьи, физиоло-
гического состояния взрослых пчел и расплода, а также
соотношения в пчелиной семье взрослых особей и рас-
плода. Иногда формы проявления болезни характери-
зуют по локализации патологического процесса. При
этом инфекционный процесс может отмечаться или у
расплода, или у взрослых пчел, но поскольку пчелиная
семья представляет собой целостную биологическую
единицу (организм), то он касается ее в целом.
В зависимости от характера и длительности клини-
ческого проявления различают острое, подострое и хро-
ническое течение инфекционной (инвазионной) болезни.
Острое течение продолжается несколько дней и харак-
теризуется типичными клиническими признаками. Под-
острое течение более продолжительно и проявляется ме-
нее выраженными признаками. При хроническом тече-
нии болезнь протекает вяло и развивается в ввде
длительного процесса,
4—381
49
При патологии пчелиных семей часто приходится
сталкиваться с носительством, т. е. более или менее дли-
тельным пребыванием возбудителей болезни в организ-
ме здоровых насекомых. Нередко это наблюдается при
вирусных болезнях и нозематозе.
Иммунитет. Это состояние невосприимчивости чело-
века, животных и насекомых к действию патогенных
микроорганизмов, их токсинов и других чужеродных ве-
ществ биологической природы. Сущность иммунитета
состоит в проявлении комплекса физиологических за-
щитных реакций, обеспечивающих постоянство внутрен-
ней среды организма при внедрении и действии пато-
генных агентов. Способность к проявлению защитных
реакций имеет наследственный характер или приобре-
тается в течение жизни. В связи с тем что пчелы отно-
сятся к общественным насекомым, устойчивость отдель-
ных особей тесно связана с устойчивостью медоносной
пчелиной семьи к заболеваниям. Известны отдельные
породы (расы) пчел, которые отличаются большой ус-
тойчивостью к определенным заболеваниям. По призна-
ку происхождения различают врожденный и приобре-
тенный иммунитет.
Врожденный иммунитет (видовой, наслед-
ственный) — невосприимчивость некоторых видов насе-
комых к действию возбудителей, поражающих насеко-
мых других видов. Он передается по наследству и свя-
зан с морфологическими, физиологическими и биологи-
ческими особенностями. Приобретенный иммуни-
тет развивается как следствие реакции на действие
патогенных микроорганизмов или путем искусственной
иммунизации. Приобретенный иммунитет менее стоек,
чем врожденный, и не передается по наследству.
Врожденный иммунитет в отличие от приобретенного
защищает насекомых от многих инфекционных и инва-
зионных болезней. Иммунитет насекомых тесно связан
с внешними условиями среды (количество и качество
корма, условия содержания и т. д.). В связи с биоло-
гическими особенностями пчелиной семьи он существен-
но отличается от иммунитета теплокровных животных,
у которых замкнутая система кровообращения, лимфа-
тическая система с хорошо развитыми лимфатическими
узлами, сложный состав сывороточного белка и посто-
янная температура тела.
Большая роль в защите организма пчел принадле-
50
жит форменным элемёнтам гемолимфы, жидкой ее час-
ти и тканям организма. У них нет обособленных крове-
носной и лимфатической систем. Поэтому циркулирую-
щая в организме насекомых жидкость называется
гемолимфой. Из аорты она попадает в межтканевые
пространства головы, омывает все ткани органов голо-
вы, груди, а затем брюшной полости, и освободившись
от продуктов обмена и пополнившись питательными
веществами, снова поступает в сердечный сосуд. Гемо-
лимфа доставляет к органам и тканям воду, минераль-
ные и питательные вещества. Она играет большую роль
при метаморфозе, обеспечивает постоянство внутренней
среды и нормальную функцию органов и тканей. У здо-
ровых пчел гемолимфа — прозрачная жидкость с
pH 6,2—6,8 и состоит из плазмы и форменных элемен-
тов (гемоцитов). В гемолимфе содержится до 8% бел-
ковых веществ, аминокислоты, жиры (до 5,5 %), сахара,
соли мочевой кислоты, углекислота, кислород, соли
фосфора, кальция, магния, натрия, гистамин, гормоны
и ферменты (амилазу, протеазу, липазу, пероксидазу,
каталазу и др.).
Гемоциты пчелы делятся на плазмоциты, нимфоциты,
сферулоциты, эноцитоиды и платоциты. Плазмоциты
встречаются только у личинок и обладают высокой фа-
гоцитарной активностью.
Состав форменных элементов может изменяться в
больших пределах в зависимости от микроорганизмов,
появившихся в гемолимфе и других органах, от возраста
и физиологического состояния пчел, сезона года.
У пчел летней генерации гемоциты стареют медлен-
нее, чем у осенней. У старых пчел количество зрелых
и старых форм платоцитов больше, чем у молодых.
У пчел, пораженных клещом Варроа, возрастной ко-
эффициент гемолимфы (ВКГ), т. е. суммарное отноше-
ние старых стадий платоцитов к молодым, также
увеличивается, что свидетельствует о снижении иммуни-
тета в пчелиных семьях, пораженных варроозом.
У зимних пчел в гемолимфе появляются микроорга-
низмы, чего не наблюдается у пчел летней генерации.
Под влиянием различных антибиотиков резко умень-
шаются размеры гемоцитов, а количество делящихся
клеток увеличивается в 3—6 раз. Это отмечается при
заболевании пчелиных семей нозематозом и другими
болезнями, что снижает устойчивость пчел. В связи с
4*
51
этим применение антибиотиков в патологии пчел рас-
сматривается как крайняя мера.
Гемоциты насекомых обладают фагоцитозом, т. е.
способностью двигаться по амебоидному типу, загла-
тывать и переваривать микроорганизмы, погибшие мерт-
вые клетки и другие посторонние частицы. С актив-
ностью фагоцитоза тесно связано течение инфекционных
болезней насекомых. При завершенном фагоцитозе бак-
терии быстро разрушаются гемоцитами и болезнь не
развивается. Когда бактерии размножаются быстрее,
чем разрушаются гемоцитами, отмечается проявление
болезни. При отсутствии фагоцитоза микроорганизмы
очень быстро размножаются и вызывают гибель насеко-
мого. Плазма гемолимфы обладает также фагоцитарной
активностью.
В защите пчел от микроорганизмов важную роль
играет состояние жирового тела. Жировое тело находит-
ся под тергитами брюшка и состоит из круглых круп-
ных клеток. Оно хорошо развито у личинок медоносной
пчелы и составляет 14 % ее массы. Степень развития
жирового тела является очень важным показателем
физиологического состояния пчел и их резистентности.
Из гуморальных факторов естественной резистентно-
сти большую роль играет фермент лизоцим, который,
адсорбируясь на мукопептиде клеточной стенки микро-
организма, расщепляет его. В результате этого нару-
шается осмотическое равновесие и наступает гидролиз
микробной клетки. Очень активно он лизирует грампо-
ложительные микроорганизмы, поскольку их клеточная
стенка состоит из слоя мукополипептида. На микрофло-
ру пчелиной семьи оказывают влияние фитонциды, со-
держащиеся в нектаре и пыльце растений.
Большое влияние на взаимоотношение насекомых и
патогенных микроорганизмов оказывает температурный
фактор. Изменяя его, многие авторы освобождали насе-
комых от бактерий и простейших. Каждый патогенный
микроорганизм имеет температурный оптимум размно-
жения. Временное существование насекомого за преде-
лами этого оптимума без вредного влияния на него
температуры позволяет освободиться от возбудителя
болезни.
К наружным защитным механизмам относится кути-
куЛа, состоящая из кутикулина и эндокутикулы. Состав
эндокутикулы включает в себя хитин и нерастворимые
52
белковые вещества. Верхний слой эндокутикулы обеспе-
чивает твердость кутикулы и называется экзокутикулой.
Кутикула хорошо противостоит различным биологиче-
ским воздействиям и защищает тело насекомых от
различных микроорганизмов.
В последнее время рядом работ показано, что кути-
кула насекомых обладает резко выраженными бактери-
цидными и фунгицидными свойствами. Некоторые авто-
ры связывают это с выделением покровами насекомых
активных антибиотических веществ, а также с ненасы-
щенными жирными кислотами.
Органы дыхания насекомых также хорошо защищены
от проникновения микроорганизмов, так как они выст-
ланы эктодермальными клетками. Пищеварительный
канал состоит из передней, средней и задней кишок.
Первые две развиваются из эктодермы (экто — наруж-
ный, дерма — кожа). Стенка этих частей кишечника
выстлана хитиновой оболочкой и очень хорошо защище-
на от проникновения различных микроорганизмов. Сред-
няя кишка развивается из энтодермы (энто—внутрен-
ний). Это главный отдел кишечника, в котором осуще-
ствляются переваривание и усвоение пищевых продук-
тов. Она представляет собой широкую изогнутую трубку
до 1 см длиной. Эпителий средней кишки отличается
сильной складчатостью, благодаря чему увеличивается
пищеварительная поверхность кишечника и создаются
условия быстрого всасывания расщепленных фермен-
тами продуктов. Эпителиальные клетки средней кишки
выделяют ферменты диастазу, инвертазу, триптазу и
липазу.
Важная роль как в процессе пищеварения, так и в
защите эпителиальных клеток средней кишки от меха-
нических повреждений, проникновения микроорганизмов
отводится перитрофической мембране (околопищеводной
оболочке). Она образуется эпителиальными клетками
средней кишки. Пищеварительные ферменты обладают
высоким бактериостатическим и бактерицидным дейст-
вием. В средней кишке задерживается развитие бакте-
рий. При даче корма с большим количеством бактерий
толщина перитрофической мембраны возрастает, что
указывает на ее активную роль в защите организма
пчел от их проникновения. Бактерицидные свойства со-
держимого кишечника зависят от возраста насекомых —
у личинок оно слабее действует на грамположительныз
53
бактерии, а у взрослых — на грамотрицательные. Ней-
тральная и слабощелочная среды задерживают разви-
тие бактерий.
При неблагоприятных для медоносной пчелы усло-
виях— наличие в меду пади, небольших доз ядохими-
катов, изменение реакции кишечника, дача большого
количества сахара на зиму — снижаются резистентность
организма и образование эпителиальными клетками
перитрофической мембраны. Это создает благоприятную
возможность развития и проникновения микроорганиз-
мов через стенку кишечника.
Задний отдел кишечника состоит из тонкой и толс-
той кишок, которые с внутренней стороны выстланы
хитиновой оболочкой. В толстой кишке накапливаются
экскременты в течение зимы. Кишечное содержимое за
счет окисления глюкозы приобретает кислую реак-
цию, что препятствует развитию гнилостных микроорга-
низмов и образованию ядовитых для организма ве-
ществ.
Удаление продуктов распада белка, солей и других
веществ осуществляют органы выделения. Основная роль
в выполнении этой функции отводится мальпигиевым
сосудам, которым помогают экскреторные клетки жи-
рового тела и перикардиального синуса.
Местом проникновения микроорганизмов могут быть
влагалище и яйцеводы матки, особенно при инструмен-
тальном осеменении. У здоровых маток препятствует
проникновению микроорганизмов тонкий слой хитина,
выстилающий их просвет.
Большое значение в патологии медоносных пчел
имеет возрастной иммунитет. В зависимости от фазы и
возраста развития резко меняется устойчивость организ-
ма к различным микробам. Яйцо, отложенное маткой,
устойчиво к разнообразным возбудителям вследствие
его хорошей защищенности хитиновой оболочкой. В те-
чение первых 3 дн, жизни личинки, как правило, не за-
болевают. Это связано с тем, что маточное молочко,
которым их кормят пчелы, обладает высокой бактери-
цидной активностью. Возбудители американского гниль-
ца, парагнильца, мешотчатого расплода и аскосфероза
поражают личинок старших возрастов. В это время идет
формирование имагинальных клеток куколки и снижение
концентрации сахаров, что резко снижает иммунитет и
создает благоприятные условия развития возбудителей
54
болезней, которые попадают в кишечник личинок с
кормом.
Взрослые пчелы менее устойчивы к возбудителям
гафниоза, колибактериоза, сальмонеллеза, септицемии,
нозематоза и амебиаза. Эти болезни тяжело протекают
при снижении резистентности организма пчел различ-
ными факторами.
Целенаправленной селекцией можно получить пчели-
ные семьи, устойчивые к некоторым заболеваниям. Пу-
тем отбора получают семьи, устойчивые к американско-
му гнильцу. При искусственном заражении этих семей
помещением в гнездо сотов с пораженным расплодом
у половины семей не отмечается признаков болезни.
Механизм высокой устойчивости к американскому
гнильцу некоторые авторы объясняют большой актив-
ностью пчел по быстрой очистке ячеек от погибших
личинок, а также способностью пчел отфильтровать
споры из меда при наполнении медового зобика и корм-
лении личинок.
Серологическая диагностика. Микробы, продукты их
жизнедеятельности, токсины и другие сложные органи-
ческие соединения, попавшие в организм пчелы, назы-
ваются антигенами, а вещества гемолимфы, обладающие
способностью обезвреживать антигены, — антителами.
Антитела тесно связаны с глобулиновой фракцией белка
гемолимфы и образуются через 2 дня и более в орга-
низме насекомого после введения антитела. Антитела
в гемолимфе насекомых обнаруживают с помощью
серологических реакций, характеризующихся большой
чувствительностью и специфичностью. Основу серологи-
ческих реакций составляет взаимодействие между анти-
геном и антителом. Поэтому серологическая диагностика
имеет большое значение в диагностике инфекционных
болезней медоносных пчел. При помощи ее обнаружи-
вают специфические антитела к определенному патоген-
ному микроорганизму.
Лабораторно-практическое занятие 4
Цель занятия. Изучить различные способы фиксации
и заражения насекомых, исследовать подопытных насе-
комых, освоить методы проведения серологической диаг-
ностики.
55
Оборудование и материалы: стерильные пастеровские пипетки,
глазные ножницы и пинцеты, скальпели, препаровальные иглы, эн-
томологические булавки, лупы, ванночки или чашки Петри со
смесью воска и парафина, ватно-марлевые фильтры, спиртовки,
фильтровальная бумага, обезжиренные предметные стекла, микро-
скопы, микрометр или другой прибор для заражения и фиксации
насекомых, асбестовая вата, воронки, уленгутовские пробирки, пред-
метные стекла, микропипетки, агаровые пластинки, люминесцентный
микроскоп, живые пчелы, ватные тампоны, 1 %-ный спиртовой раст-
вор йода, набор красящих растворов, спирт-эфир, кедровое масло,
стерильный физиологический раствор в пробирках, специфические сы-
воротки, специфические меченые сыворотки, нормальная сыворотка,
контрольные положительные антигены, испытываемые антигены.
Место проведения занятия. Учебные классы.
Методика проведения занятия. Для взятия гемолим-
фы пчел фиксируют следующим образом: большим и
указательным пальцами правой руки берут пчелу за обе
пары крыльев и помещают ее на ноготь большого паль-
ца левой руки стернитами к ногтю, а указательным
прижимают голову и грудь к большому пальцу. В чаш-
ках Петри или ванночках фиксируют пчел 'погружением
их вентральной частью тела в слегка расплавленную
смесь воска и парафина. К воско-парафиновой смеси
можно фиксировать насекомых и при помощи энтомо-
логических булавок. Одну булавку вводят в голову, а
вторую — в камеру жала и, прокалывая стерниты, по-
гружают ее в воско-парафиновую смесь. Булавки на-
правляют под углом, чтобы они не мешали вскрывать
насекомое.
Вскрытие насекомых проводят в определенном поряд-
ке. Одну браншу ножниц вводят в камеру жала и де-
лают боковые надрезы в месте соединения тергитов и
стернитов до переднего конца брюшка. Затем делают
поперечный надрез первого сегмента брюшка. Пластин-
ку тергитов осторожно поднимают пинцетом и отпрепа-
ровывают скальпелем или препаровальными иглами.
После удаления тергитов в брюшной полости хорошо
видны воздухоносные мешки и отходящие от них трахеи
и трахеолы, половые органы и пищеварительная система
с мальпигиевыми сосудами.
Подготовка и опытное заражение насекомых. Экспе-
риментальные заражения насекомых позволяют опреде-
лить патогенность микроорганизма и изучить клиниче-
ские и патологоанатомические признаки. Заражают под-
опытных насекомых патологическим материалом или
чистой культурой микроорганизма.
56
Патологический материал получают от больных пчел
или расплода, заливают стерильным физиологическим
раствором и тщательно растирают в ступке, фильтруют
через ватно-марлевый фильтр. Чистую культуру смывают
с плотной питательной среды стерильным физиологиче-
ским раствором и готовят суспензию.
В зависимости от поставленных задач в качестве
объектов заражения используют пчелиные семьи или
50—100 пчел определенного возраста в энтомологических
садках, а также личинок и куколок.
Пчел различных стадий развития заражают путем
парентерального ведения, скармливая или опрыскивая.
Парентеральный (инъекция в гемоцель) — самый
чувствительный метод заражения насекомых. Пчел пе-
ред заражением анестезируют двуокисью углерода. Для
этого садки с пчелами помещают в плотную коробку или
стеклянный сосуд. Газ следует пропускать через воду.
Место введения до и после инъекции обрабатывают
ватным тампоном на спичке, смоченным 1 %-ным спир-
товым раствором йода. При помощи микродозатора тон-
кой стерильной иглой исследуемый материал в количе-
стве 1—2 мкл инъецируют через межсегментарную
мембрану. С целью недопущения повреждения кишечни-
ка под первый тергит вводят кончик иглы, направляя ее
параллельно кутикуле. Можно вводить исследуемый
материал и в заднюю сторону груди. Контролем служат
пчелы, которым в гемоцель вводят физиологический ра-
створ или при исследовании вируссодержащего мате-
риала — буферный раствор.
При заражении скармливанием пчелам дают равные
части суспензии патматериала и сахарного сиропа, что-
бы после смешивания получился 50%-ный сахарный
сироп. Этот материал в дозе примерно 1 мл на 100 пчел
скармливают с сахарным сиропом. Контрольной группе
пчел дают чистый сахарный сироп. Для заражения ме-
тодом опрыскивания материал готовят, как и при зара-
жении скармливанием.
Личинок рабочих пчел и трутней можно заражать в
здоровых пчелиных семьях или при культивировании их
в лаборатории. Для заражения в лабораторных усло-
виях используют личинок трехсуточного возраста. Перед
работой в чашки Петри кладут ватно-марлевый матрац
толщиной 0,4—0,5 см и стерилизуют в автоклаве. После,
этого каждый матрац пропитывают 10—12 мл среды
57
Михаэлиса — Абрамовича (водопроводная вода — 6,5 ча-
стей, натуральный мед — 2,5, экстракт или чистые пекар-
ские дрожжи—1 часть). Среду стерилизуют 10 мин
кипячением. Хорошие результаты дает выращивание
личинок на среде следующего состава: 1 часть меда,
5 частей среды 199 и 1 % желатина. Среду стерилизуют
и хранят в холодильнике при 4 °C. В каждую чашку Пет-
ри помещают 10—15 личинок, ставят в термостат
при 34—35°C и относительной влажности 90—95 %.
Ватно-марлевые матрацы меняют ежедневно, при этом
личинок переносят специальной стерильной ложечкой.
Случайно травмированных и погибших особей удаляют.
Через 12—24 ч личинок заражают внесением к головно-
му концу среды с патологическим материалом. Личинок
контрольных групп содержат в отдельных чашках Пет-
ри на чистой питательной среде. Личинок пчел и трутней
в возрасте 6—7 дн. переносят в небольшие стеклянные
трубочки, помещенные в чашки Петри и покрытые слоем
воска, где они проходят стадию окукливания. При оцен-
ке результатов экспериментального заражения важным
моментом является не менее чем трехкратная повторяе-
мость опыта.
Исследование подопытных насекомых. За заражен-
ными и контрольными насекомыми регулярно наблю-
дают с различными интервалами в зависимости от
продолжительности инкубационного периода. Учитывают
поведение насекомых, потребление корма, симптомы за-
болевания, сроки гибели и одновременно отмечают окру-
жающую температуру и влажность.
Больных и погибших насекомых подвергают микро-
биологическому исследованию. Высевы на питательные
среды и приготовление мазков для микроскопии прово-
дят из гемолимфы и тканей органов.
Гемолимфу берут специально оттянутой пастеровской
пипеткой или с помощью тонкого, заточенного под углом
капилляра, который вводят между третьим и четвертым
тергитом брюшка по сагитальной линии. Можно гемо-
лимфу получить перерезкой грудных сегментов и конеч-
ностей пчелы острыми ножницами. При посеве из мышц
и органов с соблюдением стерильности предварительно
надрезают кутикулу в области грудного щитка.
Серологическая диагностика болезней. В основе всех
серологических исследований лежит специфическая ре-
акция на антиген и антитела. Они имеют большое прак-
58
тическое значение, так как по известному антителу
(специфической сыворотке, полученной путем иммуни-
зации кролика известным микроорганизмом) можно
быстро определить микроорганизм и причину гибели
насекомых.
Реакция преципитации. Антиген для реакции
преципитации готовят из 10 погибших от гнильца личи-
нок, которых помещают в ступку и добавляют десяти-
кратное количество физиологического раствора (15 мл
для взрослых личинок и 7 мл для трех-четырехдневных
личинок). Личинок тщательно растирают, суспензию
нагревают в кипящей бане 15 мин и фильтруют через
асбестовую вату до получения прозрачности фильтрата.
Антигеном может быть и прозрачный фильтрат вырос-
шей культуры. Фильтрат разливают по 0,2—0,3 мл в
уленгутовские пробирки и сверху подслаивают такое же
количество специфической сыворотки, которая должна
быть также прозрачной. Реакцию сопровождают конт-
ролями с нормальной сывороткой и специфическими
антителами. Реакция протекает при комнатной темпера-
туре в течение 15 мин. При положительной реакции че-
рез 0,5—2 мин на границе между сывороткой и испыту-
емым фильтратом образуется тонкое, нежное, голубова-
то-матовое кольцо.
Реакция агглютинации. Агглютинацией на-
зывают склеивание бактерий под влиянием специфиче-
ской сыворотки в присутствии электролитов (солей
среды).
Реакцию агглютинации ставят в пробирках или на
предметном стекле. При проведении реакции пробироч-
ным методом учет проводят через сутки, а на предметном
стекле — через 3—5 мин. Реакция агглютинации при
постановке на стекле в каплях называется капельной.
Она часто используется для диагностики американского
гнильца. Для постановки реакции агглютинации на
предметном стекле на один его край пастеровской пи-
петкой наносят каплю агглютинирующей сыворотки,
разведенной физиологическим раствором (0,1 мл сыво-
ротки и 7,9 мл физиологического раствора) в центре нор-
мальной сыворотки, а на другой край — каплю физиоло-
гического раствора. В капли вносят такое же количество
антигена и хорошо смешивают. В случае положительно-
го диагноза на американский гнилец жидкость с ларвей-
ной сывороткой в течение 10—20 мин просветляется и
59
наблюдается скучивание микроорганизмов в виде мелко-
зернистых крупинок.
Реакция иммунодиффузии (РИД) в ага-
ровом геле. Характеризуется она высокой специ-
фичностью и простотой постановки, часто применяется
в патологии медоносных пчел для диагностики вирусных
болезней.
При постановке реакции иммунодиффузии расплав-
ленный в водяной бане 1 %-ный агар Дифко разливают
в чашки Петри слоем 1,5—2 мм. После застывания в
агаре стандартным штампом выдавливают лунки диа-
метром 7 мм в виде шестиугольника. Расстояние между
лунками 3—4 мм. Гипериммунной сывороткой заполняют
центральную лунку, а две диаметрально противополож-
ные периферические лунки заливают соответствующим
контрольным положительным антигеном, в остальные
четыре вносят испытываемые антигены. Чашки Петри
помещают в эксикатор с водой на дне и оставляют при
комнатной температуре. Для контроля параллельно в
этой же чашке аналогично ставят реакцию с нормальной
сывороткой. Результаты учитывают через 24 ч.
Реакцию считают положительной, если между лункой
с антисывороткой и соответствующим испытываемым
антигеном образуются одна или две полосы преципита-
ции (в зависимости от буфера растворителя агара),
сливающиеся своими концами с полосами преципитации
контрольного положительного антигена. В контрольном
звене лунок с нормальной сывороткой полос преципи-
тации не образуется.
Диагностика флюоресцирующими антителами. Метод
флюоресцирующих антител (МФА) имеет ряд преиму-
ществ перед бактериологическими исследованиями: бы-
строта постановки диагноза (2—3 ч), высокая чувстви-
тельность, возможность постановки диагноза при работе
не только с культурой, но и с нативным материалом
{органы, ткани насекомых).
Иммунологическая реакция между антигеном и анти-
телом протекает на предметном стекле. При исследова-
нии органов и тканей насекомого готовят тонкие мазки-
отпечатки, высушивают на воздухе, помещают в фикси-
рующую жидкость.
На предметное стекло с фиксированным исследуемым
материалом наносят люминесцирующую сыворотку в
определенном разведении. Препарат помещают во влаж-
60
ную камеру при 37 °C на 15—20 мин. Затем его промы-
вают забуференным физиологическим раствором. Препа-
рат подсушивают на воздухе или фильтровальной бума-
гой, наносят каплю забуференного глицерина (pH 8,0)
и покрывают покровным стеклом. На покровное стекло
наносят иммерсионную нефлюоресцирующую жидкость
и микроскопируют с помощью люминесцентного микро-
скопа. При наличии в мазках специфического к меченым
антителам антигена последний приобретает свечение
различной окраски. Для контроля берут препараты-маз-
ки из гетерологичных видов микробов: близкие в анти-
генном отношении, но отличающиеся по морфологии;
далекие в антигенном отношении к исследуемым, но
сходные по морфологии и распространению,
Контрольные вопросы
1. Что такое инфекция?
2. Чем обусловлен инфекционный процесс?
3. Какие виды иммунитета существуют?
4. В чем заключается защитная роль кутикулы, кишечника и
клеточных элементов у пчел?
5. Какое значение имеет механическая очистка гнезда?
6. Какие существуют методы заражения насекомых?
7. В чем заключается сущность постановки реакции преципи-
тации, агглютинации и иммунодиффузии в агаровом геле?
ЭПИЗООТИЧЕСКИЕ МЕРОПРИЯТИЯ
Возникновение заразных болезней зависит от целого
ряда причин, среди которых непременным условием
является проникновение в живой организм специфиче-
ского возбудителя.
Эпизоотический процесс. Возникновение и распрост-
ранение заразных болезней насекомых—непрерывный
процесс. Непрерывность его обеспечивается сохранением
в природе патогенных агентов — возбудителей болезней.
Непременное условие возникновения заразных болез-
ней — наличие трех обязательных звеньев, взаимосвя-
занных между собой: источник возбудителя заболева-
ния, механизм (пути) передачи возбудителя и воспри-
имчивый живой организм.
Источник возбудителя болезни. Им является среда
обитания патогенного микроорганизма, в которой он не
только сохраняется, но и размножается. В патологии
пчел источником инфекции служит больная пчелиная
61
семья, к существованию в которой возбудители приспо-
собились эволюционно, из которой они разными путями
выделяются во внешнюю среду или непосредственно от
одной пчелиной семьи другой или иному восприимчиво-
му организму, обеспечивая непрерывность эпизоотиче-
ского процесса.
Объекты неживой природы, продукты пчеловодства и
инвентарь, куда попадают патогенные микроорганизмы,
служат факторами передачи возбудителей болезни. В
окружающую среду возбудители попадают с экскремен-
тами (нозематоз, амебиаз, гафниоз, колибактериоз) или
с погибшими личинками (американский и европейский
гнильцы, мешотчатый расплод, аскосфероз, аспергиллез).
Возбудители могут долго сохраняться вне организма
пчел. Вследствие этого внешняя среда может оказаться
фактором передачи возбудителя болезни и способство-
вать распространению его в гнезде пчелиной семьи, от
одной к другой пчелосемье, а также из неблагополучной
на здоровую пасеку. Возбудители внутри семьи от одних
особей другим распространяются главным образом при
кормовых контактах.
В патологии пчел очень распространено носительство
возбудителей различных болезней — нозематоз, вирусные
инфекции и др. Опасность таких источников очень ве-
лика. Перемещение в другие географические зоны маток
или пчелиных семей — носителей патогенных агентов,
а также снижение резистентности их организма часто
приводят к появлению различных заболеваний.
Способы передачи возбудителей. Даже при наличии
источника возбудителя и восприимчивых насекомых не
возникает ни одна болезнь, если не будет обеспечена
передача возбудителей от больных (носителей) здоро-
вым. Характер механизма передачи связан с органо-
тропностыо возбудителя, с его основной локализацией
в зараженном организме, путями выделения возбудите-
ля и воротами инфекции. Передача возбудителя при
непосредственном контакте больных и здоровых особей
пчелиной семьи характерна для акарапидоза, варрооза
и некоторых других заболеваний. Передача возбудителя
через мед, пыльцу, воду наиболее типична для аскосфе-
роза, американского, европейского гнильцов, нозематоза,
амебиаза и целого ряда других болезней. Из больной
в здоровую пчелиную семью возбудители передаются
в процессе обворовывания больной ослаблевшей пчели-
62
ной^семьи пчелами здоровых семей, при нападении
одной семьи на другую, при посещении общего неблаго-
получного в санитарном отношении водоема.
Трупы пчел и расплода, возбудители которых дли-
тельное время сохраняются во внешней среде, представ-
ляют наибольшую опасность.
Возбудители болезни часто передаются через пчело-
водный инвентарь (ульи, рамки, соты, медогонки, ста-
мески, дымари, халаты). Определенную роль в передаче
возбудителей при одновременном уходе за больными и
здоровыми пчелиными семьями играет пчеловод.
Очень большое значение в распространении инфек-
ционных болезней пчел имеет клещ Варроа, который,
питаясь гемолимфой, переносит из организма больных
в организм здоровых пчел возбудителей американского
гнильца, гафниоза, колибактериоза, различные вирусы.
Большую роль в передаче возбудителей различных
заболеваний пчел играют рои, трутни, блуждающие пче-
лы и пчелы-воровки.
Восприимчивые насекомые — неразрывное звено эпи-
зоотической цепи. Поэтому при проведении противоэпи-
зоотических мероприятий большое внимание необходимо
уделять обеспечению невосприимчивости пчелиных се-
мей путем повышения их резистентности оптимальным
содержанием и сбалансированным кормлением.
Взаимодействие трех звеньев эпизоотической цепи
происходит в эпизоотическом очаге — первичной ячейке
эпизоотического процесса. Поэтому эпизоотическим оча-
гом следует считать пасеку или хозяйство с находящими-
ся на его территории пасеками, на которых обнаружена
какая-либо заразная болезнь.
Противоэпизоотические мероприятия. К ним относят-
ся специфическая профилактика болезней, а также ме-
роприятия по ликвидации существующих и возникающих
эпизоотических очагов. В основе противоэпизоотических
мероприятий лежит профилактика (предупреждение)
заразных болезней. Противоэпизоотические мероприятия
в нашей стране проводят комплексно. Для этого в пер-
вую очередь выявляют ведущее звено, воздействие на
которое позволяет в кратчайшие сроки добиться наи-
большего успеха. Для составления плана мероприятий
необходимо выяснить эпизоотическую обстановку. С этой
целью собирают и анализируют сведения о распростра-
63
нении заразных болезней пчел и факторах, способству-
ющих или препятствующих распространению болезни.
Эпизоотический очаг может быть различным по раз-
мерам и числу больных пчелиных семей. Всестороннее
эпизоотическое обследование очага и постановка пра-
вильного диагноза являются основой для объявления
пасеки неблагополучной по определенной болезни, сос-
тавления плана оздоровления пасеки и ликвидации воз-
никшей болезни. В этот план должны быть обязательно
включены: а) выявление и ликвидация болезни; б) раз-
рыв и пресечение механизма и путей передачи возбуди-
теля болезни, направленные на предупреждение рассеи-
вания его во внешней среде, распространения болезни
внутри неблагополучной пасеки и за ее пределы; в) по-
вышение общей резистентности и создание специфиче-
ской устойчивости пчелиных семей, находящихся под
угрозой заражения.
Комплекс мероприятий определяется характером бо-
лезни и конкретной эпизоотической обстановкой, в ко-
торой она возникла. Пасеку, хозяйство или населенный
пункт, где обнаружена заразная болезнь пчелиных се-
мей, объявляют неблагополучными, накладывают каран-
тин или вводят ограничения. Эти меры направлены на
ликвидацию возникшего эпизоотического очага и недо-
пущение заноса возбудителя в благополучные пасеки.
Меньшую роль играют ограничительные мероприя-
тия, проводимые в эпизоотическом очаге, неблагополуч-
ной пасеке при болезнях, не имеющих тенденцию к бы-
строму распространению (нозематоз и т. д.).
Устанавливают и снимают карантин на основании
решений исполнительного комитета Советов народных
депутатов. Контроль за соблюдением карантина возла-
гается на главного ветеринарного врача района и вет-
службу колхозов и совхозов.
Пчеловоды и руководители пасек обязаны сообщить
ветеринарному специалисту и пчеловодам соседних па-
сек о случаях обнаружения заразной болезни или при
подозрении на нее. Совместно с ветеринарными работ-
никами отбирают и отправляют в ветеринарную лабо-
раторию патологический материал с подробным описа-
нием признаков и течения болезни.
Ответственность за соблюдение правил карантина и
проведение оздоровительных мероприятий возлагается
на руководителей хозяйств, предприятий и органов
64
местной власти. Необходимы организационно-хозяйст-
венные меры: оборудование специального помещения,
исключающего доступ в него насекомых, для дезинфек-
ции ульев, сотов и другого пчеловодного инвентаря с
бетонированной площадкой и стоком воды в закрытую
яму; установка емкостей для подогрева воды; обеспе-
чение дезинфицирующими средствами, лечебными пре-
паратами, дезинфекционной техникой и материалами;
механическая очистка ульев, рамок и инвентаря; дез-
инфекция почвы на территории пасеки.
Специальные ветеринарн о-с анитарные
меры на пасеках. Все пасеки должны иметь вете-
ринарно-санитарные паспорта. Для паспортизации пасек
создают комиссию, в которую входят ветработники
государственной службы, зоотехники (агрономы) по
пчеловодству и опытные пчеловоды. Паспорта регистри-
руют на станции по борьбе с болезнями животных,
выдают на каждую пасеку и хранят у владельца или
заведующего пасекой. Наличие паспорта дает право на
получение ветеринарного документа на продажу, кочев-
ку пчелиных семей, обмен воскосырья на вощину, а так-
же продажу меда и других продуктов пчеловодства.
В паспорте отмечают результаты лабораторных иссле-
дований, проведение лечебно-оздоровительных меропри-
ятий и дезинфекции. Паспорт подписывают главный
ветеринарный врач района, руководитель хозяйства или
владелец пасеки и заверяют печатью станции по борьбе
с болезнями животных.
Ветеринарно-санитарные требования к
пасекам, зимовникам и сотох р а н и л и щ а м.
Пасеки размещают в местности, благополучной по бо-
лезням пчел, на сухих, защищенных от ветра местах,
богатых медоносной растительностью с удалением от
основных медоносов не более чем на 1,5—2 км. Стацио-
нарные пасеки должны быть удалены на расстояние не
менее 500 м от железных и шоссейных дорог, зон отды-
ха, населенных пунктов; не менее 1 км от животновод-
ческих и птицеводческих помещений; не менее 5 км
от кондитерских, химических и воскоперерабатывающих
предприятий. Товарные пасеки должны быть удалены
от репродукторных и неблагополучных по заразным
болезням не менее чем на 5—7 км.
На пасеке размещают пчеловодный домик, подсоб-
ные помещения, навес для контрольного улья, поилки
5- 381
.65
для пчел, умывальник и туалет. Пасеку обеспечивают
аптечкой, спецодеждой, дезинфицирующими вещества-
ми. Для хранения пустых сотов, а также сотов с медом
и пергой используют чистое, хорошо проветриваемое,
с принудительной вентиляцией, недоступное для грызу-
нов и насекомых сотохранилище.
Зимовники размещают в сухих местах, чтобы тем-
пература в зимнее время держалась в пределах 0±2°С,
относительная влажность — 75—85%, а воздухооб-
мен — 0,44 м3/ч на 1 пчелосемью. Их оборудуют приточ-
но-вытяжной вентиляцией и в зимнее время устанавли-
вают лампы красного света. После выставки пчел из
зимовника проводят механическую очистку, просушивают
и белят помещения изнутри свежегашеной известью.
Благополучие пасек по заразным болезням обеспечи-
вается проведением комплекса организационно-хозяйст-
венных и ветеринарно-санитарных мероприятий, на-
правленных на предупреждение возникновения заболе-
ваний и контроль за качеством продукции пчеловодства.
Пасеки необходимо комплектовать здоровыми пче-
лиными семьями, приобретаемыми из благополучных по
заразным болезням хозяйств. Пчелиные семьи, пакеты
и маток хозяйство приобретает на основании докумен-
тов, подтверждающих благополучие хозяйства-постав-
щика. Пчелопакеты и маток пересылают на основании
ветеринарно-санитарной документации по импорту и
экспорту пчел и маток. Вновь завозимые пчелосемьи
размещают на изолированной пасеке не ближе 5 км
от других пасек. В течение 30 дн. их выдерживают под
контролем ветеринарной службы и исследуют на нали-
чие заразных болезней. При отсутствии инфекционных
заболеваний семьи перевозят на основную пасеку.
Ветеринарные специалисты должны ежегодно прово-
дить осмотры пчелиных семей, следить за результатами
лабораторных исследований, наличием на пасеке вете-
ринарно-санитарного паспорта.
Дезинфекция. Под дезинфекцией понимают комп-
лекс мероприятий, направленных на уничтожение воз-
будителей заразных болезней во внешней среде. Дез-
инфицирующие вещества должны обладать широким
спектром бактерицидного действия; не портить инвен-
тарь и пчеловодное оборудование, легко растворяться
в воде, быть легкодоступными и дешевыми, а также не
иметь Неприятного запаха.
66
Дезинфицирующие средства делят на физические и
химические. Основу физических средств составляют
солнечный свет, высушивание, высокая температура,
ультрафиолетовые лучи, ультразвук, ионизирующее из-
лучение.
Химические средства дезинфекции применяют в
виде растворов, газообразном и аэрозольном состоянии.
Для влажной дезинфекции используют щелочи, кисло-
ты, хлорсодержащие препараты, фенолы и т. д., а для
газовой — формальдегид, хлор, смесь окиси этилена с
бромистым метилом (ОК.ЭБМ).
Дезинфекцию делят на профилактическую и вынуж-
денную. Объектами дезинфекции в пчеловодстве явля-
ются ульи, соты, воскосырье, инвентарь, оборудование,
спецодежда, зимовники, сотохранилища, а также тер-
ритория пасеки.
Механическая очистка — важнейший процесс в дез-
инфекционных мероприятиях. Перед очисткой проводят
орошение слабым раствором дезинфицирующего веще-
ства. После удаления прополиса, воска и загрязнений
стенки ульев, рамки обмывают горячим раствором соды
или зольного щелока. Дезинфицирующие вещества не-
одинаково действуют на различных возбудителей. Воз-
будитель нозематоза очень чувствителен к воздействию
паров уксусной кислоты, а возбудители гнильцовых
болезней отличаются высокой устойчивостью к ней.
Наиболее эффективны растворы в подогретом виде.
Поэтому объекты пчеловодства лучше дезинфицировать
при температуре окружающего воздуха выше 10 °C. При
дезинфекции необходимо учитывать концентрацию и
сроки действия применяемого средства.
Профилактическую дезинфекцию проводят различ-
ными средствами: ульи обжигают пламенем паяльной
лампы; моют горячими (50—70°С) 5 %-ным раствором
кальцинированной соды, 2 %-ным раствором едкого
натра. Растворы применяют из расчета 1 л/м2 при экс-
позиции 3 ч. Медогонки промывают водой и дезинфици-
руют горячим 5%-ным раствором кальцинированной
соды. Мелкий металлический инвентарь кипятят 30 мин
в 3 %-ном растворе кальцинированной соды или 15 мин
в 0,5 %-ном растворе едкого натра. Пустые соты
орошают 3 %-ным раствором перекиси водорода или
раствором, содержащим 1 % перекиси водорода и 1 %
5*
67
одного из моющих порошков А, Б, В. Через 3 ч удаляют
дезраствор, соты промывают водой и высушивают.
Зимовники, сотохранилища, складские помещения и
пасечный домик белят 20 %-ной свежегашеной известью.
Халаты, полотенца, лицевые сетки обеззараживают
кипячением в течение 30 мин. На территории пасеки
периодически скашивают траву, убирают трупы пчел,
выброшенного расплода и сжигают их.
Правила безопасности при проведении
дезинфекции. Лица, осуществляющие дезинфекцию,
должны быть обеспечены спецодеждой (комбинезоны,
фартуки, резиновые перчатки и сапоги, халаты, защит-
ные очки). При работе с,препаратами хлора и формаль-
дегида необходимо пользоваться противогазом. Курить
и принимать пищу во время работы запрещается. Пос-
ле работы лицо и руки нужно вымыть теплой водой с
мылом.
Дезинфекция и дезакаризация направлены на унич-
тожение вредных членистоногих. Большой ущерб пче-
ловодству наносят большая и малая восковая моль,
перговые клещи и некоторые другие вредители. Для
борьбы с ними соты и ульи обрабатывают сернистым
газом, получаемым путем сжигания серы в дозе 50 г/м3,
при плотности загрузки 100 гнездовых сотов на 1 м3 и
экспозиции 24 ч; парами концентрированной уксусной
кислоты в дозе 200 г/м3 при экспозиции 3 сут. Для
полного уничтожения восковой моли обработку повто-
ряют через 10—12 дн. Уничтожить моль можно под
пленкой ПК-4 бромистым метилом или ОКЭБМ в коли-
честве 80 и 50 г/м3 при экспозиции 24 и 10 ч (обработку
проводят под контролем ветспециалистов). Из биоло-
гических мер борьбы с восковой молью используют
препараты, содержащие Вас. thuringiensis и Вас. cireus.
Дератизация — это мероприятие направлено на ис-
требление грызунов. Уничтожают их различными мето-
дами— механическими (мышеловки, капканы и др.),
биологическими (кошки, ежи, собаки, хищные птицы,
микробы, вызывающие их гибель) и химическими (яды).
Профилактические методы заключаются в создании
условий, препятствующих доступу грызунов в ульи,
омшаники, сотохранилища. Все хозяйственные построй-
ки содержат в чистоте. Дератизацией охватывают сразу
весь населенный пункт, чтобы исключить миграции
грызунов. Против них широко применяют химические
бв
методы борьбы. В качестве ядов наиболее часто исполь-
зуют зоокумарин, натриевую соль зоокумарина, пеноку-
марин, ратиндан и др. Для приготовления приманок
используют хлеб, зерна злаков, комбикорм, мясной и
рыбный фарш и др. На пасеках в приманку вносят 10—
15 г растертых сотов, содержащих мед и пергу (к при-
манкам добавляют 2—5 % препарата). Приманки при-
меняют свежими ежедневно в течение 4—5 дн. Необхо-
димо всегда помнить, что химические вещества ядовиты
для человека и домашних животных, поэтому в обра-
щении с ними должна быть особая осторожность.
Биологический метод заключается в искусственном
заражении грызунов микробами, вызывающими их мас-
совое заболевание и гибель. Для уничтожения мышей
и крыс применяют культуры бактерий, вызывающих тиф
грызунов (штаммы Исаченко, Прохорова). Хорошим
препаратом является бактокумарин, в состав которого
входят бактериальная культура, выращенная на зерне,
и натриевая соль зоокумарина. Его раскладывают в
норы и другие места 2—3 дня подряд по 50—100 г.
Грызуны погибают в течение 4—15 дн. Погибших гры-
зунов сжигают.
Контрольные вопросы
1. Что представляет собой источник инфекции и инвазии?
2. Каковы основные пути распространения инфекции и инвазии
в пчелиных семьях?
3. Расскажите о роли эпизоотической цепи в патологии пчел.
4. Какие противоэпизоотические мероприятия необходимо осу-
ществлять в пчеловодстве?
БОЛЕЗНИ ПЧЕЛ
В основе классификации болезней медоносных пчел
лежит этиологический (причинный) признак. Это позво-
ляет быстро поставить правильный диагноз, установить
причину болезни и организовать соответствующие меро-
приятия. Согласно существующей классификации изве-
стны следующие болезни медоносных пчел.
Инфекционные болезни — американский гни-
лец, европейский гнилец, парагнилец, порошковидный
расплод, гафниоз, колибактериоз, сальмонеллез, септи-
цемия, спироплазмоз, мешотчатый расплод, хронический
вирусный паралич, острый паралич, филаментовироз,
69
прочие вирозы, аскосфероз, аспергиллез, меланоз, кан-
дидамикоз, прочие микозы.
Инвазионные болезни — нозематоз, микро-
споридиоз, нозематоз личинок и куколок, амебиаз, гап-
лоспоридиоз, грегариноз, критидиоз, нематодозы, ака-
рапидоз, экзоакарапидоз, варрооз, пиемотоз, тропиле-
лапсоз, браулез, конопидозы, мелеоз, мелиттобиоз, му-
тиллоз, сенотаиниоз, стилопсоз, форидозы.
Незаразные болезни: а) болезни, обусловлен-
ные неполноценными и недоброкачественными корма-
ми,— углеводное голодание, белковая дистрофия, гипо-
витаминозы, недостаток прочих веществ, алиментарная
диарея, солевые токсикозы, фитотоксикозы, падевый
токсикоз, отравление грибами растений, пестицидами и
промышленными выбросами; -б) болезни, вызываемые
нарушением содержания, — воровство пчелиное, налет
и слет пчел, застуженный расплод, охлаждение пчел,
запаривание, карликовость, нарушения, вызванные
физическими факторами; в) болезни, вызванные нару-
шением разведения, — наследственные заболевания и на-
рушения эмбрионального развития, стерильные яйца,
черные яйца, нарушение откладки яиц маткой, генетиче-
ская летальность, уродство куколок, диплоидные трут-
ни, партеногенетические самки, аномалий в строении
организма пчел, карликовость.
ИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ
Американский гнилец (злокачественный гнилец). Ин-
фекционная болезнь пчелиных семей, сопровождающая-
ся гибелью взрослых личинок и предкуколок, проявля-
ющаяся летом, реже весной.
Возбудитель Вас. larvae (рис. 10). Спорообразую-
щая, подвижная (перетрих), грампозитивная палочка
размером 2,5x0,8 мкм. Споры устойчивы во внешней
среде, а также к физическим и химическим факторам.
Жизнеспособность спор увеличивается при их нахожде-
нии в меде, трупах личинок и особенно в воске. В меде
споры сохраняют вирулентность более года, при хране-
нии его на солнечном свету—до 6 нед, а в высохших
трупах личинок — несколько лет. В культурах споры
сохраняются десятки лет. В воде споры погибают
при 90 °C в течение 3 ч, при 95 °C через 1 ч, при 100 °C
через 13 мин. При кипячении трупов личинок в воде
70
10. Возбудитель американского гнильца Bacillus larvaes
а — споры; 6 — вегетативная форма.
споры погибают в течение 14 мин, а в кипящем меде —
через 40 мин. Кипячение воска в открытой посуде вы-
зывает гибель спор лишь на 5-й день, а в автоклаве
при 0,15 МПа — за 2 ч. В зараженных сотах споры
остаются вирулентными в 'течение 35 лет, на ульях и
вощине — 20, в медогонке — 5 лет. Перекись водоро-
да (1 %-ный раствор), подкисленная кислотой, убивает
споры в трупах личинок за 3 ч, 10 %-ный раствор каль-
цинированной соды (NaaCCb) —за 4. мин, а 10 %-ный
раствор натрия гидроокиси — за 2 мин.
Эпизоотологические данные. Источником
инфекции при американском гнильце являются трупы
личинок. В трупе личинки, погибшей от американского
гнильца, содержится около 2,5 млрд спор. В пчелиной
семье возбудитель передается в основном молодыми
пчелами, которые чистят ячейки и кормят личинок. При
этом они инфицируют мед, которым заражают личинок
при их кормлении. На пасеке, а также на другие пасеки
возбудитель болезни распространяется через инфициро-
ванные спорами рамки с расплодом, ульи, соты, вощи-
ну, мед, пыльцу и пергу, пчеловодный инвентарь, медо-
гонки, холстики, подушки и т. д. Обворовывание боль-
ных пчелиных семей здоровыми приводит последних
к заражению американским гнильцом.
Заражение пчелиных семей возможно при воровстве
меда со складов, при осмотре и перегоне пчелиных
71
семей, а также при использовании инфицированного
меда для приготовления медово-сахарного теста (кан-
ди). Возбудитель может распространяться паразитами—
восковой молью, осами, ветчинным кожеедом, муравья-
ми, а также различными клещами, особенно, Варроа
якобсони. Возможно распространение возбудителя через
искусственную вощину и при пересылке пчелиных се-
мей, пакетов и маток с пасек, неблагополучных по
американскому гнильцу. Заболевание встречается на
всех материках и в различных климатических зонах.
Патогенез. Споры попадают в организм личинок
преимущественно тогда, когда пчелы начинают добав-
лять к личиночному корму мед. В средней кишке споры
прорастают, бактерии проникают в гемолимфу, быстро
в ней размножаются и вызывают септицемию. Этому
способствует метаморфоз личинки в куколку, который
сопровождается (истолизом тканей. Токсины, выделяе-
мые микроорганизмами, вызывают дегенеративные из-
менения органов и гибель расплода. Со стороны орга-
низма отмечается фагоцитарная реакция, но вследствие
быстрого размножения микроорганизмов личинки гиб-
нут и их ткани распадаются. В трупе личинки образу-
ются антибиотические вещества, которые препятствуют
размножению вторичной микрофлоры.
Клинические признаки. В естественных усло-
виях болезнь появляется на пасеках во второй половине
июня, в июле и августе. Все породы пчел одинаково
восприимчивы к американскому гнильцу. Инкубацион-
ный период составляет 3—7 дн. Внешние признаки бо-
лезни обнаруживают при осмотре пчелиных семей. В
начале заболевания отмечают поражение единичных
личинок, расположенных в разных местах. Со временем
число их увеличивается. На сотах, занятых одяовозра-
стным расплодом, встречаются пустые ячейки, ячейки
с яйцами и погибшими личинками, что придает распло-
ду пестрый вид. Заболевают обычно взрослые запе-
чатанные личинки.
Разлагающиеся трупы личинок находятся на ниж-
ней стенке ячейки и имеют вязкую тягучую консистен-
цию, напоминающую густой клей. Цвет личинок изме-
няется от серовато-белого до темно-коричневого.
Погибшие личинки приобретают характерный запах
столярного клея. Восковые крышечки над погибшими
личинками темнеют, западают и продырявливаются.
72
Западание крышечек объясняется тем, что погибшие
личинки высыхают, уменьшаются в размерах и тянут
за собой крышечку внутрь ячейки. Позднее гнилостная
масса высыхает и крепко прилипает к нижним стенкам
ячеек в виде темно-коричневых корочек, от которых
пчелы не могут очистить ячейки. Удалить корочку из
ячейки препаровальной иглой или пинцетом без разру-
шения стенки ячейки не удается. Пчелы не могут
очистить ячейки, и матки не откладывают в них яйца.
В больных семьях снижается работоспособность
пчел. Они становятся вялыми и быстро изнашиваются.
В больной пчелиной семье при сильном поражении ко-
личество молодых пчел бывает небольшим или они
вовсе отсутствуют, так как расплода гибнет больше, чем
нарождается молодых. Больная пчелиная семья поги-
бает в конце лета, зимой или ранней весной, так как
они идут в зиму с небольшим количеством пчел, осо-
бенно молодых. Заболевшая пчелиная семья без оказа-
ния ей помощи погибает.
Диагноз. Предварительный диагноз ставят на ос-
новании характерных признаков болезни. При осмотре
обращают внимание на возраст пораженного расплода,
цвет, консистенцию и запах трупов личинок. Оконча-
тельный диагноз ставят с учетом характерных клиниче-
ских признаков и результатов бактериоскопических,
бактериологических и серологических исследований.
Дифференциальный диагноз. Необходимо
исключить парагнилец, европейский гнилец, порошко-
видный, мешотчатый и застуженный расплод, а также
варрооз и тропилелапсоз. При европейском гнильце и
порошковидном расплоде чаще поражается незапеча-
танный расплод. При поражении печатного расплода,
а также при парагнильце крышечки над погибшими ли-
чинками чаще без изменений, характерных для амери-
канского гнильца. При мешотчатом расплоде погибшие
личинки сильно отличаются от таковых при американ-
ском гнильце. Застуженный расплод ведет к гибели ли-
чинок сплошными участками на нижних частях сотов
или на боковых рамках.
При сложной эпизоотической обстановке следует
иметь в виду, что часто пчелосемьи бывают одновре-
менно поражены несколькими заразными болезнями.
Профилактика. Для предупреждения возник-
новения американского гнильца на пасеках необходимо
73
содержать здоровые, сильные пчелиные семьи, обеспе-
чивать их полноценными кормами и строго выполнять
ветеринарно-санитарные правила,
В связи с тем что основную роль в распростране-
нии возбудителя болезни играют больные пчелиные
семьи и получаемые от них продукты пчеловодства,
особое внимание уделяют охране пасек от заноса воз-
будителей извне, а также выявлению первых случаев
появления болезни на пасеке. В обязанность ветери-
нарных специалистов входит постоянный контроль за
состоянием пчелиных семей, санитарным состоянием
продуктов пчеловодства. Пчелиным семьям не следует
скармливать мед и пыльцу неизвестного происхожде-
ния. Особенно жесткий контроль устанавливают за це-
хами по изготовлению канди, так как он распростра-
няет возбудителя иа большое количество пасек раз-
ных регионов. Большое внимание уделяют изготовле-
нию и реализации искусственной вощины, так как она
может быть обсеменена возбудителем болезни. Приоб-
ретаемые пчелиные семьи тщательно проверяют на
месте, а вновь поступивших в хозяйство в течение 30 дн.
содержат на карантине и только с соблюдением над-
лежащего контроля переводят на основную пасеку.
Надежным способом предупреждения болезни явля-
ется недопущение кочевок неблагополучных пасек или
ограничение их кочевок на специально отведенные ме-
ста, исключающие контакт пчел с благополучными па-
секами. К общим санитарным мероприятиям на пасеке
относятся: оборудование предульевых площадок, си-
стематический сбор и уничтожение погибших пчел и
личинок, недопущение воровства, ликвидация безматоч-
ных семей, осуществление противороевых мероприятий.
Рекомендовавшиеся ранее профилактические лечебные
подкормки нецелесообразны, так как применение анти-
биотиков не только приводит к появлению устойчивых
форм микроорганизмов, но и к снижению общей ре-
зистентности пчелиных семей.
Меры борьбы. При заболевании пчел американ-
ским гнильцом на пасеке, в населенном пункте и на
территории в радиусе 5—7 км устанавливают карантин.
На этой пасеке проводят комплекс ветеринарно-сани-
тарных и лечебных мероприятий в соответствии с су-
ществующей инструкцией.
При выявлении больных семей на благополучной
74
пасеке целесообразнее уничтожить эти семьи. Больные
пчелиные семьи уничтожают закуриванием сернистым
газом. Ульи, инвентарь, оборудование, помещения, а
также территорию пасеки дезинфицируют. Если в хо-
зяйстве имеется несколько пасек, неблагополучных по
американскому гнильцу, больные семьи концентрируют
на одной из них.
Полной ликвидации болезни можно добиться при
осуществлении комплекса оздоровительных мероприя-
тий. В этот комплекс входят организационно-хозяйст-
венные, ветеринарно-санитарные и лечебные мероприя-
тия. К организационно-хозяйственным относятся под-
готовка помещения с бетонированной площадкой и за-
крытым стоком дезинфицирующих веществ; устройст-
во для подогрева воды; завоз дезинфицирующих средств,
сахара и лечебных препаратов; обеспечение дезинфек-
ционной техникой и оборудованием.
Важными звеньями ветеринарно-санитарных меро-
приятий являются текущая и заключительная дезин-
фекции, которые проводят под контролем ветеринар-
ного специалиста. Ульи, рамки и другие деревянные
предметы после тщательной механической очистки об-
жигают огнем паяльной лампы до легкого побурения
или обрабатывают следующими дезинфицирующими
средствами: раствором, содержащим 10 % перекиси
водорода и 3 % муравьиной или уксусной кислоты из
расчета 1 л на 12-рамочный улей. Дезинфекцию про-
водят трехкратно с интервалом 1 ч. Через час после
третьей обработки ульи промывают водой, высушива-
ют и используют. Можно дезинфицировать раствором,
состоящим из 5 %-ного формальдегида и 5 %-ного ед-
кого натра из расчета 0,5 л на 12-рамочный улей, дву-
кратно с интервалом 1 ч. Через 5 ч улей промывают
водой, высушивают и используют.
Соты после механической очистки обрабатывают
раствором, содержащим 3 % перекиси водорода и 3 %
муравьиной или уксусной кислоты, в котором выдер-
живают их сутки. После этого удаляют дезраствор, хо-
рошо промывают водой и используют. Старые соты и
соты с пораженным расплодом перетапливают на воск,
тщательно упаковывают и отправляют на технические
цели или на воскозавод для обеззараживания с мар-
кировкой «гнильцовое». Воск, предназначенный для из-
готовления вощины, обеззараживают в автоклаве при
75
1,5 атм в течение 2 ч. Мерву отправляют на воскоэкст-
ракционный завод или сжигают. Ульевые холстики и
мелкий пчеловодный инвентарь кипятят в 3 %-ном ра-
створе кальцинированной соды в течение 30 мин. Ме-
догонки дезинфицируют раствором, содержащим
5 % формальдегида и 5 % натрия гидроокиси, при экс-
позиции 5 ч. Расход раствора 1 л/м2.
Территорию пасеки очищают и дезинфицируют, пе-
рекапывая почву на глубину 5 см в местах стоянки
ульев. Для дезинфекции используют следующие раст-
воры: 4 %-ный формальдегид из расчета 10 л/м2; хлор-
ная известь из расчета 5 кг/м2 с добавлением такого
же количества воды.
Проверенным методом борьбы с американским
гнильцом является перегон пчелиных семей в проде-
зинфицированные ульи на продезинфицированные соты
или искусственную вощину. Для этого в улей ставят
необходимое количество соторамок и 1—2 рамки с ис-
кусственной вощиной. Можно перегонять пчелиные
семьи на рамки только с искусственной вощиной, но
для этого необходим хороший Медосбор, чтобы пчелы
могли отстроить соты. Перегоняют пчел во второй по-
ловине дня при наличии медосбора. В противном слу-
чае пчелы очень плохо строят соты, а также не иск-
лючено появление воровства, что может привести к пе-
резаражению пчелиных семей. Перегоняют пчел сле-
дующим образом. На место старого улья ставят про-
дезинфицированный улей (лучше на новую подстав-
ку) с чистыми сотами или вощиной. Перед ним кла-
дут лист фанеры, который застилают бумагой. Из гнез-
да больной пчелиной семьи поочередно вынимают рам-
ки и стряхивают с них пчел на бумагу, направляя их
дымом в улей. Использованную для перегона бумагу
сжигают, а ульи и соты убирают в недоступное для
пчел место с целью их последующей дезинфекции.
Иногда применяют двойной перегон, а также перегон
с голоданием. В последнем случае пчел стряхивают с
рамок в роевню или пустой ящик, которые 2 сут вы-
держивают в прохладном помещении без корма, а за-
тем перегоняют в продезинфицированные ульи с сота-
ми. Если в семьях много здорового печатного распло-
да, то его выращивают в семьях-инкубаторах с моло-
дыми здоровыми матками, летки которых закрывают
мелкой сеткой. Эти семьи обеспечивают лечебным си-
76
ропом и чистой водой. После выхода расплода их так-
же перегоняют.
Мед с неблагополучных пасек используют только
для пищевых целей. Карантин с пасеки снимают через
год после полной ликвидации болезни, тщательной
очистки и заключительной дезинфекции ульев, сотора-
мок, а также пчеловодного инвентаря, оборудования,
помещений и территории пасеки.
Лечение. Для изыскания эффективных препара-
тов в лаборатории определяют чувствительность выде-
ленных штаммов возбудителей к антибиотикам и суль-
фаниламидным препаратам. Больным пчелиным семь-
ям дают лечебный корм. Для этого готовят сахарный
сироп 1:1, к которому добавляют один из следующих
препаратов: норсульфазол натрия—1—2 г; хлортетра-
циклин — 500 тыс. ЕД; неомицин, тетрациклин, эритро-
мицин, мономицин, окситетрациклин, канамицин — по
400 тыс. ЕД; стрептомицин — 500 тыс. ЕД на 1 л са-
харного сиропа.
Для приготовления лечебного корма сначала гото-
вят водный раствор препарата. С этой целью необхо-
димое количество препарата высыпают в 100 мл кипя-
ченой, охлажденной до 38—40 °C воды и тщательно пе-
ремешивают. Приготовленный раствор препарата до-
бавляют к 900 мл сахарного сиропа. Лечебный корм
вечером разливают в кормушки из расчета 100—150 мл
на рамку с пчелами через каждые 3—7 дн. до полного
выздоровления.
Для лечения гнильцовых болезней В. Н. Мельник
(1979) рекомендует пастообразные смеси, пролонгиро-
ванного действия; 300—700 г медицинского вазелина,
столько же порошкообразного мела и 6—10 млн ЕД
препарата на 1 кг пасты; по 125 г медицинского ва-
зелина и подсолнечного масла, 750 г сахарной пудры
и 6—10 млн ЕД препарата на 1 кг пасты. Для приго-
товления паст вначале смешивают порошкообразные
компоненты, а затем добавляют остальные. Пасту при-
меняют однократно за сезон.
В конце апреля или начале мая на дно улья поме-
щают на расстоянии 1—1,5 см от летка пергаментную
бумагу, полиэтиленовую пленку или фольгу размером
20x30 см, на которую слоем 0,5—1 см наносят 150—
200 г пасты. За полмесяца до главного медосбора ли-
сты убирают из улья.
П
Применение паст ос-
новано на особенности
пчел удалять из улья по-
сторонние предметы, а
удаляя пасту, пчелы кон-
тактируют с ней. Период
полного удаления пасты
из улья зависит от силы
пчелиных семей и состав-
ляет 45—60 дн. Антимик-
робное действие лечеб-
ных препаратов, находя-
щихся в пасте, сохраня-
ется до года при хране-
нии их при температуре
18—20 °C. Находясь в
улье, пасты обеспечивают
контакт пчел с лечебным
препаратом вне зависи-
мости от наличия нектара и пыльцы в природе, в то вре-
мя как лечебный корм пчелы хорошо потребляют только
при отсутствии медосбора.
На неблагополучной пасеке пчелиные семьи, не
имеющие признаков заболевания, и пасеки, располо-
женные в радиусе 3 км от них, лечат так же, как и
больные, но без перегона. При оздоровлении пасек от
американского гнильца не ограничиваются только да-
чей лечебных кормов, а проводят комплекс мероприя-
тий. В противном случае часто бывают рецидивы. В слу-
чае рецидива болезни ранее применявшийся препарат
заменяют другим по рекомендации ветеринарной лабо-
ратории.
Европейский гнилец (доброкачественный гнилец, гни-
лец открытого расплода, кислый гнилец). Инфекцион-
ная болезнь пчелиных семей, сопровождающаяся ги-
белью расплода в возрасте 4 дн„ а иногда и старше.
Возбудители болезни — Melissococcus (Strep-
tococcus pluton), Вас. alvei, Enterococcus faecalis (Str.
apis), Вас. laterosporus (Вас. orpheus) (рис. И). Бо-
лезнь может быть вызвана одним или несколькими воз-
будителями. Рядом исследователей выделялись и дру-
гие микроорганизмы. Некоторые ученые считают, что
под названием европейского гнильца подразумевается
несколько различных заболеваний.
78
При исследовании препаратов, приготовленных из
трупов личинок, стрептококк плутон представляет со-
бой ланцетовидные клетки, располагающиеся в одиноч-
ку, попарно, цепочками. Размеры клеток 0,7—1,5 мкм,
возбудитель грампозитивен, образует капсулы, растет
в анаэробных условиях на специальных средах с pH
6,6 (картофельный агар, среды Бейли и Черепова) при
температуре 35 °C. На плотных средах через 24 ч обра-
зует мелкие круглые бесцветные колонии диаметром
1—1,6 мм. Расщепляет глюкозу и фруктозу без обра-
зования газа. Не расщепляет сахарозу, лактозу, галак-
тозу, мальтозу, раффинозу, маннит, сорбит, крахмал
и глицерин.
Бацилла альвей — спорообразующая с трехслойной
клеточной стенкой палочка размером (3,5—4,5) X (0,8—
1,0) мкм, грампозитивна, споры крупные (2,5—4,0) X
X (0,8—1,5) мкм, располагаются в центре клетки, в
мазках часто встречаются в виде частокола. Растет
на обычных питательных средах при 37 °C. Через сут-
ки на МПА вырастают крупные разветвляющиеся
грязно-желтого цвета колонии. При росте на МПБ вы-
зывает его помутнение, МПЖ разжижает, молоко свер-
тывает и пептонизирует (просветляет), образует ин-
дол, расщепляет лактозу, глюкозу, сахарозу, мальтозу,
глицерин с образованием кислоты, но без газа, крах-
мал не гидролизует. Старые культуры имеют непри-
ятный запах.
Стрептококк апис в мазках располагается в виде
коротких цепочек, размер отдельных клеток 0,7—0,9 мкм,
грампозитивен, капсулы не образует. Растет на обыч-
ных питательных средах при 37 °C. Через 24 ч на МПА
образует мелкие бесцветные колонии или наложения,
легко снимающиеся бактериологической петлей. Стреп-
тококк апис вызывает помутнение МПБ, разжижает
МПЖ, молоко свертывает и пептонизирует, индол и се-
роводород не образует. Углеводы разлагает с образо-
ванием кислоты, крахмал не гидролизует, выделяет
следы аммиака.
Возбудители европейского гнильца отличаются боль-
шой устойчивостью во внешней среде. В трупах личи-
нок при комнатной температуре стрептококк плутон
сохраняет жизнеспособность до 3 лет. В летнее время
в пустых ульях сохраняется 50—55 дн., на сотах — до
45, на холстиках — до 24, в меде — до 15, в вощине —
79
до 65, в воде — 84, в перге — до года, в воде при 60 °C
погибает за 15 мин, 2 %-ный раствор карболовой кис-
лоты убивает стрептококк плутон за 6 ч; 0,5 %-ныв
раствор формальдегида — за 10 мин, 2 %-ный раствор
хинозала — за 10, 3 %-ный раствор однохлористого
йода — за 20, 0,5 %-ный раствор перманганата калия —
за 30 мин.
Спора бациллы альвей в трупах личинок сохраня-
ется более 20 лет. В текучем пару споры погибают в
течение 30 мин, в воске при 120 °C — через 2 ч; в 2 %-
ном растворе перманганата калия — через 7 ч, в 2 %-
ном растворе хлорамина при 40 °C — через 12 ч.
Стрептококк апис сохраняется на сотах, в вощине,
меде до 265 дн. При температуре 60 °C погибает за
несколько минут, в растворе хлорной извести с содер-
жанием 2 % активного хлора — за 30 мин.
Эпизоотологические данные. Болезнь
встречается на всех континентах и в различных кли-
матических зонах, где имеются медоносные пчелы, но
в местах с умеренным климатом встречается чаще, чем
с теплым. Источник болезни — больные пчелиные семьи.
Распространению болезни способствуют пчелиное во-
ровство, блуждание пчел, слет роев. Возбудитель забо-
левания на здоровые пасеки может заноситься с мат-
ками, пчелопакетами и пчелиными семьями, приобре-
тенными в неблагополучной местности.
Внутри пчелиной семьи возбудитель болезни рас-
пространяется пчелами-кормилицами при кормлении
личинок. Здоровые семьи заражаются при подкормке
их медом и пергой, получаемыми из неблагополучных
пасек, а также при использовании их в качестве сырья
для приготовления канди. Ульи и пчеловодный инвен-
тарь с неблагополучных пасек, не подвергшиеся дезин-
фекции, представляют большую угрозу для заражения
пчелиных семей.
Европейский гнилец поражает семьи в конце весны
и летом, когда в семьях наибольшее количество рас-
плода. Гибель значительного количества расплода в
семьях ведет к резкому уменьшению рабочих пчел, что
приводит к их резкому ослаблению и снижению про-
дуктивности.
Патогенез. В течение первых 3 дн. жизни личин-
ки не заражаются европейским гнильцом, так как ма-
точное молочко, которым пчелы-кормилицы кормят их,
80
обладает бактерицидным действием. Затем пчелы до-
бавляют к молочку мед, пергу, и возбудитель прони-
кает в эпителиальные клетки средней кишки, где он
размножается, а затем проникает в гемолимфу, рас-
пространяется по другим органам и тканям, вызывая
септицемию. В гемолимфе отмечается увеличение ко-
личества гемоцитов. При экспериментальном зараже-
нии болезнь развивается у личинок старших возрастов,
но через 2—3 нед поражаются, как правило, молодые
личинки.
Клинические признаки. Возбудитель болез-
ни чаще поражает открытый расплод в весеннее время.
Инкубационный период колеблется от 1,5 до 3 сут. Бо-
лезнь может протекать скрыто и с явными признаками.
При скрытом течении возбудитель находится в сотах,
меде, перге, в организме взрослых личинок, рабочих
пчел и маток. При этом гибели личинок и ослабления
семей не наблюдается. При проявлении симптомов бо-
лезни отмечается гибель личинок, в результате чего ее
легко обнаружить при осмотре пчелиных семей.
Первые признаки болезни характеризуются повышен-
ной подвижностью личинок, а также изменением их
естественного положения в ячейках. Здоровые личинки
лежат в виде колечка. У них хорошо выражены сег-
ментация, перламутровый блеск, плотная консистен-
ция. При заболевании личинки вытягиваются вдоль
или поперек ячеек, тело их теряет округлую форму,
блеск, становится дряблой консистенции, серо-белого
или желтого цвета. Кутикула больных личинок делает-
ся прозрачной, и через нее хорошо просматриваются
средняя кишка с ее содержимым, а также трахеи. Ак-
тивные предсмертные движения вызывают разнообраз-
ные положения погибших личинок в ячейке. В одних
случаях они располагаются ближе к дну ячейки, в
других — посредине или у края ячейки. Со временем
трупы личинок приобретают бурую или темно-бурую
окраску.
Сразу после гибели личинки из открытых ячеек
легко удаляются. Через несколько дней кутикула их
становится мягкой, легко рвется и личинку целиком из
ячейки удалить невозможно. После высыхания трупы
личинок сравнительно легко извлекаются из ячеек.
Личинки, погибшие в запечатанных ячейках, иног-
да приобретают тягучую консистенцию, темно-бурый
6—381
81
или черный цвет и очень схожи с личинками, погиб-
шими от американского гнильца. В этом случае отли-
чить европейского гнильца от американского по клини-
ческим признакам невозможно. Запах недавно погиб-
ших личинок практически отсутствует, а затем появля-
ется запах кислых фруктов. При развитии в трупах
личинок бациллюс. альвей возникает запах гниющего
мяса. В этом случае погибшие личинки очень крепко
прикрепляются к ячейкам и пчелы их целиком уда-
лить не могут, а начинают выгрызать, на что требу-
ется очень много времени. Пораженный расплод имеет
пестрый вид.
Семья может быть поражена в различной степени.
При слабой степени поражения на соте встречается до
10 больных личинок, при средней — до 50 и при силь-
ной — более 50. В первую очередь болезнь встречается
в ослабленных, не обеспеченных кормами пчелиных
семьях.
Диагноз. Ставят его на основании характерных
ярко выраженных признаков болезни. При европей-
ском гнильце чаще поражаются, молодые личинки, ко-
торые лежат на дне ячейки в виде кольца. О наличии
болезни судят по имеющемуся пестрому расплоду, т. е.
в ячейках сотов видны здоровые, больные и погибшие
личинки. Больных и погибших личинок, подвергшихся
видимым изменениям, легко обнаружить среди ячеек
со здоровым расплодом. Осложняется постановка ди-
агноза при одновременном поражении открытого и пе-
чатного расплодов. В этом случае возможно наличие в
данной семье смешанной инфекции или одновременное
поражение европейским, американским гнильцами и
мешотчатым расплодом. Необходимо исключить и на-
личие порошковидного расплода, так как при этом за-
болевании также поражается печатный расплод. Точ-
ный диагноз можно поставить только в ветеринарной
лаборатории по результатам бактериологических, бак-
териоскопических и серологических исследований.
Дифференциальный диагноз. Исключают
американский гнилец, мешотчатый расплод.
Профилактика. Необходимо стремиться не до-
пускать заноса возбудителя болезни на пасеку. Профи-
лактика европейского гнильца обеспечивается содержа-
нием на пасеке сильных пчелиных семей местных по-
род. На зиму семьи обеспечивают достаточным коли-
82
чеством доброкачественного меда и перги. Особое вни-
мание необходимо уделить своевременной замене ста-
рых сотов, а также выбраковке сотов с пергой, пора-
женной грибами,- сильно испачканных экскрементами
и с забродившим медом. На пасеке соты выбраковы-
вают после выхода из ячеек 12 поколений пчел, поэто-
му ежегодно необходимо заменять */э гнездовых сотов.
При весенней ревизии каждую пчелиную семью снаб-
жают медом из расчета не менее 10—12 кг и 2—3 сота
с пергой. Подмор собирают и сжигают. Проводят чист-
ку и дезинфекцию ульев, вставных досок и другого
пчеловодного инвентаря, а затем обязательно переса-
живают в них пчелиные семьи, когда температура воз-
духа поднимается до 14 °C. Освободившиеся при сокра-
щении гнезд соторамки дезинфицируют и хранят до
использования в сотохранилище. Весной пчелосемьи хо-
рошо утепляют. Ульи и пчеловодный инвентарь с дру-
гих пасек предварительно дезинфицируют.
Пасеки необходимо размещать на сухих, хорошо ос-
вещенных и защищенных от ветров местах. По мере
развития пчелиных семей гнезда расширяют сушью, а
с наступлением медосбора — рамками с искусственной
вощиной.
Необходимо очень внимательно 'следить за состоя-
нием пчелиных семей в первую половину летнего се-
зона. В это время в природе часто бывают перерыв в
приносе в гнездо нектара и пыльцы, резкие изменения
температуры окружающего воздуха, продолжительные
похолодания. Очень важно в это время следить за до-
статочным количеством в семьях не только меда, но и
доброкачественного белкового корма, а также за обес-
печением теплой водой.
Важно не допускать на пасеке близкородственного
размножения пчелиных семей, вести отбор семей, ус-
тойчивых к европейскому гнильцу, отличающихся вы-
сокой продуктивностью и зимостойкостью.
Для профилактики европейского гнильца на пасеках
нашей страны применяют инактивированную вакцину.
Скармливают ее пчелиным семьям весной четырехкрат-
но. На 1 л сахарного сиропа используют при первой
даче 40 мл вакцины, при второй — 50, при третьей — 60
и при четвертой — 70 мл с интервалом 7 дн. в дозе
150 мл на улочку.
6*
83
Меры борьбы. При подозрении на заболевание
осматривают все пчелиные семьи пасеки. От больных
пчелиных семей вырезают кусочки сотов с пораженным
расплодом и отправляют в ветеринарную лабораторию
для исследования.
При установлении диагноза на европейский гнилец
пасеку и территорию в радиусе 5—7 км объявляют не-
благополучной по этой болезни, накладывают карантин,
который снимают через год после ликвидации болезни
и проведения заключительной дезинфекции.
Для борьбы с европейским гнильцом проводят комп-
лекс ветеринарно-санитарных и лечебных мероприятий.
При обнаружении в семье сотов с поражением неболь-
шого количества личинок их удаляют, гнездо сокраща-
ют и хорошо утепляют. Слабые пчелиные семьи соеди-
няют, заменяют маток.
Если в семьях наряду с поражением открытого рас-
плода отмечается гибель и печатного расплода, то их
перегоняют на продезинфицированную сушь или ис-
кусственную вощину. Перегоняют пчелиные семьи, не
поддающиеся лечению.
Соты обеззараживают (орошают) раствором, содер-
жащим 2 % перекиси водорода и 1 % муравьиной или
уксусной кислоты, а также 5 %-ным раствором одно-
хлористого йода с экспозицией 24 ч. Затем соты про-
мывают водой и высушивают. Можно дезинфицировать
соты в камере ОППК при расходе 250 мл 40 %-ного
формалина на 1 м3, создавая в течение часа темпера-
туру 50—55°C и относительную влажность 80—100 %.
Ульи, инвентарь, оборудование, спецодежду и террито-
рию пасеки дезинфицируют так же, как и при амери-
канском гнильце.
Лечение. Применяют те же антибиотики и суль-
фаниламидные препараты, которые рекомендуются для
лечения американского гнильца. Лечебный сироп дают
из расчета 100—150 мл на улочку пчел трехкратно с
интервалом 5—7 дн. Для предупреждения образования
устойчивости микроорганизмов к препаратам рекомен-
дуется периодическая замена их другими.
При наличии клинических признаков и положитель-
ных результатов лабораторного исследования с лечеб-
ной целью применяют четырехкратно инактивирован-
ную вакцину. На 1 л сахарного сиропа при первой
даче ее берут в дозе 50 мл, при второй — 70, при треть-
84
ей — 80, при четвертой—100 мл на одну улочку с ин-
тервалом 4 дня. Через 2 нед после последнего скарм-
ливания вакцины с сиропом пчелиные семьи осматри-
вают, учитывают их силу и степень поражения откры-
того расплода. При обнаружении недавно заболевших
личинок курс лечения повторяют. На неблагополучных
пасеках одновременно проводят комплекс ветеринарно-
санитарных мероприятий.
Порошковидный расплод. Инфекционная болезнь
пчелиных семей, при которой отмечается их резкое ос-
лабление в результате массовой гибели и распада ли-
чинок.
Возбудитель болезни — Вас. pulvifaciens.
Грамположительная спорообразующая палочка разме-
ром (1,0—1,5) X (0,6—1,2) мкм, аэроб, растет при тем-
пературе 35—37°C, образует эллипсоидные центральные
споры. При росте на агаре через 10 сут образуются
шаровидные светло-коричневого или светло-оранжевого
цвета колонии. Возбудитель образует кислоту на сре-
де с глюкозой, маннитом, трегалозой, разжижает же-
латин, нитраты редуцирует в нитриты, разлагает ка-
зеин, тест на каталазу отрицателен.
Эпизоотологические данные. Впервые бо-
лезнь была выявлена в Канаде Майстером в 1928 г.
Возбудителя выделил в чистую культуру и описал Катц-
нельсон. Заболевание регистрируется в Америке и ряде
европейских стран. В СССР болезнь не зарегистри-
рована.
Источник инфекции — больные и погибшие личинки.
Возбудитель распространяется внутри пчелиной семьи
при кормлении личинок инфицированными медом и пер-
гой. На другие пасеки он попадает с необеззаражен-
ными ульями, сотами, пчеловодным инвентарем и кор-
мами.
Экспериментальное заражение пчелиных семей чи-
стой культурой Вас. pulvifaciens или патологическим
материалом, взятым от больных пчелиных семей, не
всегда дает положительные результаты.
Патогенез. Возбудитель попадает с кормом в
средний отдел кишечника личинки и, размножаясь в
ее организме, попадает в гемолимфу, а затем поража-
ет все органы, и наступает распад тканей.
Клинические признаки. Поражается откры-
тый расплод. Погибшие личинки имеют вид сухих ко-
85
рочек или чешуек. При попытке удаления их из ячеек
они превращаются в порошок. По этому клиническому
признаку и получило свое название заболевание. Окрас-
ка погибших и высохших личинок бывает от белой, на-
поминающей мел, до светло-бурой, светло-коричневой
и бронзовой.
Диагноз. Ставят его на основании эпизоотологи-
ческих данных, клинических признаков, результатов
микроскопии и бактериологического исследования пато-
логического материала. При порошковидном расплоде
среди здоровых личинок обнаруживаются участки со-
тов с ячейками, в которых имеются желтоватые, рас-
падающиеся в порошок трупы личинок (корочки). Окон-
чательный диагноз ставят в ветеринарной лаборатории
путем выделения из патологического материала чистой
культуры Вас. pulvifaciens.
Дифференциальный диагноз. Необходимо
исключить аскосфероз, аспергиллез, американский и ев-
ропейский гнильцы. При аскосферозе и аспергиллезе
погибшие личинки становятся твердыми, сухими. При
американском гнильце погибшие личинки прочно при-
крепляются к нижней стенке ячейки и очень трудно
извлекаются, а при европейском — гораздо легче. Кро-
ме того, при гнильцовых болезнях пораженный расплод
имеет характерный запах.
Профилактика. Особое внимание обращают на
соблюдение ветеринарно-санитарных требований при
импорте пчелиных семей, маток и инвентаря, а также
на выполнение ветеринарно-санитариых правил содер-
жания пчелиных семей на пасеках, уничтожение роев
неизвестного происхождения, соблюдение санитарных
разрывов при размещении пасек вблизи границы и т. д'.
Меры борьбы и лечение. Лечебно-оздорови-
тельные мероприятия при порошковидном расплоде не
разработаны.
Мешотчатый расплод (мешотчатая черва, мешотча-
тая детка пчелы, сухой гнилец и др.). Инфекционная
болезнь пчелиных семей, сопровождающаяся гибелью
предкуколок, которые приобретают форму мешка, на-
полненного жидкостью.
Возбудитель болезни. Относится к РНК-со-
держашим вирусам. Вирусные частицы изометрические,
диаметром 30 нм. Взрослые пчелы переболевают бес-
симптомно, но в их организме вирус сохраняется в те-
86
чение зимы до появления в пчелиных семьях расплода.
Возбудители сохраняются в меде при комнатной тем-
пературе до 30 сут, в 10 %-ном бродящем сахарном
сиропе — 5, в перге при 1,3 °C и относительной влаж-
ности 80 % — Ю5, в меде — 35 сут. При хранении меда
в холодильнике он сохраняется 2 мес. В водной сус-
пензии вирус инактивируется при 59 °C через 10 мин,
в меде и глицерине при 70 °C—10 мин, в высушенном
состоянии — через 3 нед. При 22 °C и относительной
влажности 53 % вирус сохраняется на деревянных по-
верхностях, покрытых прополисом, 15 сут, на сотах — до
90 сут. Вирус устойчив к действию эфира и хлорофор-
ма, 3 %-ного раствора щелочи и риванола.
Эпизоотологические данные. Заболевание
встречается повсеместно, где имеются медоносные и
средние индийские пчелы. Местные пчелы отличаются
большей устойчивостью к штаммам вируса, выделен-
ного из этой же зоны, чем к штаммам, полученным в
других регионах. Наиболее восприимчивы к заболева-
нию личинки в возрасте 2—3 дн. независимо от при-
надлежности к той или иной породе. Больная пред-
куколка может заразить 3000 здоровых Личинок. Воз-
будитель, находясь в организме взрослых пчел, может
распространяться на другие пасеки при роении, пере-
сылке маток и пакетов, купле-продаже пчелиных семей,
а также с клещом Варроа. Пчелы заражают личинок
при кормлении инфицированным кормом (мед, перга).
Внутриульевые пчелы, чистя ячейки и удаляя трупы,
становятся вирусоносителями и при кормлении личинок
заражают их.
Возбудитель болезни передается при блуждании
пчел и трутней, при перестановке сотов. Роль маток в
переносе возбудителя полностью не выявлена, но их
замена в больных семьях часто приводит к выздоров-
лению.
Патогенез. Попадая в организм личинок, вирус
проникает в ткани, где и размножается. Между покров-
ными тканями, подлежащими линьке, и вновь форми-
рующимися образуется пространство, заполненное во-
дянистой жидкостью. Клетки жирового тела увеличи-
ваются, ядра и сами клетки приобретают неправиль-
ную форму. Распадающиеся ткани и клетки гемолим-
фы приобретают зернистость.
При культивировании вируса в культуре ткани ме-
87
доносных пчел отмечается усиление митотической ак-
тивности клеток, а через 72 ч появляются первые при-
знаки их дегенерации: цитоплазма приобретает зерни-
стость, в ней появляются вакуоли, отмечается округле-
ние клеток. При повторном пассажировании цитопато-
генное действие отмечается через 24 ч.
Клинические признаки. Инкубационный пе-
риод продолжается 5—6 дн. Заболевание чаще отме-
чается в мае и июне после продолжительной холодной
погоды при недостатке в гнездах меда и перги. Наи-
более сильно поражаются слабые пчелиные семьи. При
обильном медосборе клинические признаки затухают,
а затем прекращаются. Однако они могут проявиться
осенью или весной следующего года.
Различают пять стадий поражения личинок. В на-
чале заболевания головка личинки становится прозрач-
ной и несколько опущенной, под кутикулой появляется
прозрачный экссудат. Затем головной конец личинки
отходит от крышечки ячейки, личинка приобретает ко-
ричневый цвет, количество экссудата под кутикулой
увеличивается, отмечается распад тканей, которые пре-
вращаются в коричневую массу, взвешенную в экссу-
дате. В дальнейшем упругость тела личинки исчезает,
передняя треть личинки темнее остальной части, сег-
ментация тела выражена слабо. В последующем содер-
жимое тела личинки становится клейким, предкуколка
приобретает темно-коричневый или черный цвет, вы-
сыхает и имеет вид корочек с приподнятыми передним
и задним концами тела, которые легко извлекаются
из ячейки. Количество погибших пред куколок увеличи-
вается, семьи слабеют, а некоторые погибают. Соты с
пораженным расплодом имеют пестрый вид, как и при
других заболеваниях, поражающих расплод. Крышеч-
ки слегка запавшие, с одним или двумя отверстиями
или отсутствуют в связи с удалением их пчелами. На
нижних стенках ячеек находят темно-коричневого или
черного цвета погибших личинок.
Часто в пчелиных семьях встречаются одновремен-
но мешотчатый расплод и европейский гнилец. Смешан-
ное заболевание протекает в семьях очень тяжело.
Признаки, специфические для мешотчатого расплода,
нечеткие. Смешанное течение этих заболеваний, как
правило, принимают за европейский гнилец. Антибио-
тики и сульфаниламидные препараты не дают поло-
88
жительных результатов, так как после их применения
начинает интенсивно размножаться вирус и отмечается
сильное поражение им расплода.
Диагноз. Ставят его на основании эпизоотологи-
ческих данных, клинических признаков. Особое внима-
ние обращают на наличие пестрого расплода, отсутст-
вие специфического запаха и легкое удаление трупов
из ячеек. Окончательный диагноз ставят на основании
лабораторного исследования патологического материа-
ла. Для этого в лабораторию отправляют кусочек сота
с пораженным расплодом или не менее 20 трупов пред-
куколок в 50 %-ном глицерине.
Из лабораторных методов диагностики наиболее спе-
цифична реакция диффузионной преципитации в ага-
ровом геле суспензии исследуемого материала со спе-
цифической сывороткой или реакция коагглютинации.
Можно использовать и другие методы серологической
диагностики.
Дифференциальный диагноз. Необходимо
исключить гнильцы, порошковидный и застуженный
расплод. При гнильцах и порошковидном расплоде в
лаборатории выделяют возбудителей этих заболева-
ний. При застуженном расплоде личинки погибают во
всех ячейках сота или на определенном его участке,
а при мешотчатом расплоде поражение имеет пест-
рый вид.
Профилактика. На пасеке необходимо содер-
жать сильные пчелиные семьи, обеспечить их требуе-
мым количеством полноценных углеводных и белковых
кормов. Ежегодно следует проводить выбраковку ста-
рых сотов, не допускать близкородственного разведе-
ния пчелиных семей.
Меры борьбы. При установлении заболевания
мешотчатым расплодом на пасеке устанавливают ка-
рантин до полной ликвидации болезни. Если семьи
сильно поражены, то изымают соты с пораженным рас-
плодом, заменяя их сотами с запечатанным расплодом
из здоровых пчелиных семей. Слабые больные семьи
объединяют. Маток заменяют.
Ульи, вставные доски, потолочины и рамки тща-
тельно очищают и орошают их из расчета 0,5 л на 1 м2
поверхности одним из следующих растворов: 4 %-ным
раствором перекиси водорода, 2 %-ным раствором хло-
рамина, 1 %-ным раствором формальдегида, при экс-
89
позиции 3 ч. Затем их промывают водой, просушивают
и используют через 5 ч.
Ульевые холстики и наволочки утеплительных по-
душек кипятят в 3 %-ном растворе кальцинированной
соды или зольного щелока в течение 30 мин. После
этого хорошо прополаскивают в воде и высушивают.
Пустые соты опрыскивают с обеих сторон до их
полного заполнения 4 %-ным раствором перекиси во-
дорода или 1 %-ным раствором формальдегида при экс-
позиции 3 ч. После просушивания и проветривания соты
используют через 24 ч.
Соты с пергой (80—90 сотов на 1 м3) обеззаражива-
ют парами муравьиной кислоты из расчета 100 мл
на 1 м3 в течение 72 ч или парами уксусной кислоты из
расчета 150 мл на 1 м3 в течение 96 ч при температуре
окружающего воздуха 22—25 °C. Их можно использо-
вать после двухсуточного проветривания.
Мед, полученный из неблагополучных пасек, хра-
нят изолированно и используют только на пищевые
цели. Воск обеззараживают автоклавированием при
0,05 МПа в течение 30 мин или нагреванием при 70 °C
с добавлением 8 %-ных растворов пергидроля или сер-
ной кислоты при экспозиции 20 мин.
Лечение. В качестве лечебного и профилактиче-
ского средства рекомендуется гипериммунная сыворот-
ка кролика или лошади. Сыворотку (80 мл) смешива-
ют с 1 л сахарного сиропа, который дают весной или
летом 3 раза через 5 дн. по 150—200 мл на улочку
пчел.
Паралич пчел. Различают хронический вирусный па-
ралич (черная болезнь, майская болезнь, вирусный па-
ралич) и острый паралич пчел.
Возбудители (рис. 12). Относятся они к РНК-
содержащим вирусам. Вирусные частицы первого поли-
морфные, размером 20Х (30—60) нм, а второго — изо-
метрические, диаметром 30 нм. Вирусы устойчивы к
эфиру и четыреххлористому углероду. Большой устой-
чивостью к физико-химическим факторам отличается
возбудитель хронического вирусного паралича. При
—15 °C он сохраняется в трупах пчел более месяца,
при 4 °C — до 4 дн. При нагревании до 60 °C инакти-
вируется в течение часа, при 75 °C — в течение 10 мин.
Ультрафиолетовые лучи убивают вирус в течение часа,
80
12. Вирусы острого (сферический) и хронического (овальный)
паралича.
0,2 %-ный раствор формалина при 35 °C — в течение
3 сут.
Эпизоотологические данные. Оба заболе-
вания встречаются в различных странах. Гибель от хро-
нического вирусного паралича может быть в любое вре-
мя года, но острое течение отмечается, как правило,
летом после смены холодной и дождливой погоды на
жаркую. Острый паралич может возникнуть в конце
зимы, но чаще его наблюдают в весенне-летний период.
Возбудители внутри семьи передаются от больных
к здоровым пчелам при кормовых контактах. Распро-
странению возбудителя способствуют блуждание пчел
и трутней, перестановка сотов с кормом из одной семьи
в другую. Могут переносить возбудителей клещи Вар-
роа. Внешне здоровые пчелы могут быть носителями
возбудителей.
Часто в организме пчел встречаются оба возбудите-
ля, но при 30 °C вирус хронического паралича подав-
ляется вирусом острого паралича, а при 35 °C отмеча-
ется более выраженная активность хронического па-
ралича.
91
Патогенез. Вирус хронического паралича раз-
множается в цитоплазме клеток нервной ткани, тонкой
кишки, верхнечелюстных и гипофарингиальных желе-
зах. В пораженных клетках образуются полиморфные
частицы. Цитопаюгенное действие в культуре клеток
медоносной пчелы отмечается через 48 ч после зара-
жения. Деление клеток прекращается, они уменьша-
ются и округляются, а через 72 ч дегенерируют.
Вирус острого паралича размножается в нервной
ткани, гипофарингиальных железах, клетках жирового
тела и средней кишки.,У пчел отмечают старение гемо-
цитов, нарушение белкового, жирового и минерального
обмена.
Клинические признаки. При хроническом па-
раличе признаки болезни появляются на 4—10-й день.
Больные пчелы находятся в возбужденном состоянии.
Они или стремительно движутся вперед, или соверша-
ют волчкообразные движения, отмечается прерывистое
дрожание крыльев. Пчелы плохо реагируют на внеш-
ние раздражения, скучиваются у стенки или в нижнем
углу улья, теряют способность к полету и погибают на
12—20-й день после заражения. Характерный признак
болезни — потеря волосяного покрова, пчелы становят-
ся черными, блестящими, с уменьшенным брюшком.
Здоровые пчелы изгоняют больных из улья, и послед-
ние часто скапливаются на предлетковой площадке.
Пчелиные семьи сильно слабеют и плохо развиваются.
При остром параличе чаще поражаются молодые
пчелы. Они теряют способность к полету, ползают око-
ло летка или перед ульем, отмечаются асимметрия рас-
положения крыльев, а- иногда и увеличение брюшка.
На дне улья и предлетковой площадке часто имеются
погибшие пчелы. Заболевание протекает в пчелиных
семьях по-разному. В одних отмечается незначительная
гибель пчел, в других она значительна, в третьих —
полная гибель. В течение сезона возможны рецидивы
болезни и слабое развитие пчелиных семей.
Диагноз. Ставят его с учетом эпизоотологических
данных, клинических признаков и обязательного про-
ведения лабораторных исследований.
При хроническом вирусном параличе при исследова-
нии гистологических срезов тонкой кишки обнаружи-
вают тельца-включения Морисона. Они выявляются и
методом иммунофлюоресценции. Для диагностики за-
92
болевания используют реакцию диффузионной преци-
питации в агаровом геле или реакцию нейтрализации
в культуре тканей. Вирионы можно обнаруживать
электронной микроскопией гемолимфы или гистосре-
зов тонкой кишки и желез.
Дифференциальный диагноз. Исключают
гибель пчел от токсикозов, белкового голодания, сеп-
тицемии.
Профилактика. Применяют меры по охране па-
секи от заноса возбудителя, строго соблюдают прави-
ла содержания и не допускают перегрева пчелиных се-
мей. Особое внимание обращают на повышение резис-
тентности пчелиных семей. В первую очередь обеспе-
чивают пчелиные семьи достаточным количеством пол-
ноценного белкового (перга, пыльца) и углеводного
корма.
Для профилактики вирусного паралича можно ис-
пользовать водный раствор рибонуклеазы. С этой целью
50 мг препарата растворяют в 15 мл воды и этим ра-
створом опрыскивают пчел одной семьи четырехкратно
через каждые 10 дн. '
Лечение. При подозрении на вирусный паралич
применяют бактериальную эндонуклеазу. Для этого
перед обработкой в 1 л воды растворяют 1 флакон
(100 тыс. ед. активности) препарата и для активации
фермента в раствор добавляют 1 г хлористого магния.
Пчелосемьи обрабатывают аппаратом «Росинка» или
другим распылителем, опрыскивая пчел, находящихся
на рамках. Обрабатывают пчел при температуре воз-
духа не ниже 14 °C 6—8 раз с интервалом 10 дн. Каж-
дую улочку с пчелами опрыскивают в течение 2—3 с.
На одну пчелиную семью расходуется 40—50 мл раст-
вора препарата.- Пчелиные семьи обрабатывают под
контролем ветеринарного специалиста.
Некоторые авторы рекомендуют для лечебных це-
лей- применять с сахарным сиропом биовит, но часто
такое лечение не дает надлежащего эффекта.
Спироплазмоз (майская болезнь, пыльцевой токси-
коз). Инфекционная болезнь пчелиной семьи, при ко-
торой наблюдаются заражение и гибель взрослых пчел.
Возбудитель — Spiroplasma apis и другие виды.
Это мелкие, размером (0,1—0,2) X (2—10) мкм, ните-
видные, извитые, подвижные микроорганизмы, относя-
щиеся к классу микоплазм (Mollicutes). Лишены они
93
клеточной стенки, имеют однослойную мембрану, про-
ходят через фильтры с порами более 200 нм, культи-
вируются на жидких и плотных питательных средах с
pH 7,4—7,6 и наличием олеиновой кислоты, холестери-
на, сывороточного альбумина, пуриновых и пиримиди-
новых оснований, ферментируют глюкозу и фруктозу,
а некоторые штаммы — маннозу и трегалозу. На плот-
ных средах рост появляется на 5—10-й день.
Эпизоотологические данные. Впервые за-
болевание зарегистрировано в США в 1976 г. Позже
заболевание описано на Гавайских островах, во Фран-
ции и СССР. Источник инфекции — нектар и пыльца
некоторых растений. С окончанием цветения растений
заболевание прекращается так же быстро, как и появи-
лось. Гибель пчел отмечается в основном в мае — июне,
реже в более поздние сроки.
Патогенез. В лабораторных условиях болезнь
воспроизводится путем скармливания и инъекции воз-
будителя в организм насекомого. Микроорганизмы, по-
ступившие в среднюю кишку, размножаются в ней, а
на четвертые сутки проникают в гемолимфу. Здесь про-
исходит дальнейшее размножение возбудителя, что при-
водит к гибели насекомых. Гибель отмечается на 4—
9-й день после заражения насекомых, что связано с ко-
личеством введенного возбудителя.
Клинические признаки. В естественных усло-
виях чаще поражаются пчелы в возрасте 3—12 дн., т. е.
кормилицы. У больных пчел увеличивается брюшко,
они теряют способность к полету, становятся вялыми,
отмечается судорожное сокращение мышц, пчелы в
большом количестве выходят из улья, ползают по зем-
ле и погибают. Признаки болезни могут регистриро-
ваться в отдельных семьях, у всех пчелиных семей па-
секи или на некоторых пасеках. За 4—5 дн. в семье мо-
жет погибнуть до 25 % пчел и больше. У пчел, погиб-
ших от спироплазмоза, брюшко увеличенное, твердое.
При извлечении кишечника отмечается сильное напол-
нение пыльцевыми зернами прямой, а часто и средней
кишки. Болеют все особи пчелиной семьи. Пчелиные
семьи резко слабеют и оказываются малопродуктивными.
Диагноз. Ставят его с учетом времени проявле-
ний заболевания и клинических признаков. Оконча-
тельный диагноз ставят в лаборатории по результатам
исследования гемолимфы, суспензии из брюшка пчел,
94
а также бактериологического и серологического мето-
дов. Мазки исследуют с использованием конденсора
темного поля. При микроскопии обнаруживают много-
численные подвижные извитые нити. Для бактериоло-
гического исследования используют специальные сре-
ды. Бове с соавторами предложил среду BSR: глюко-
за— 10 мл, фруктоза—1, сахароза—10 мл, сорбит —
70 г, мясная вода — 25 мл, лошадиная сыворотка —
100 мл, фенол-рот — 20 мг, дистиллированная вода —
до 1 л (pH 7,6). Из серологических методов используют
реакцию коагглютинации (РКоА).
Дифференциальный диагноз. Исключают
отравление недоброкачественными пыльцой и пергой.
Профилактика. Мероприятия по предупрежде-
нию болезни не разработаны.
Лечение. Используют препараты тетрациклино-
вого ряда: тетрациклин, окситетрациклин, хлортетра-
циклин. Применяют их в количестве 500 тыс. ЕД на 1 л
сахарного сиропа (1:1). Лечебный сироп дают в "дозе
100—150 мл на улочку (рамку) пчел. При необходи-
мости лечение 'повторяют через 5—7 дн. Многократное
применение одного препарата может привести к появ-
лению устойчивости к нему возбудителя.
Гафниоз (инфекционный понос пчел, паратиф). Ин-
фекционная болезнь, возбудитель которой размножа-
ется в кишечнике и гемолимфе пчел. Кроме медонос-
ных пчел, болеют осы.
Возбудитель—Hafnia alvei. Подвижная палоч-
ка длиной 1—2 мкм и шириной 0,3—0,5 мкм, относится
к семейству энтеробактеров; спор на образует, грамне-
гативная; хорошо красится всеми анилиновыми краска-
ми. Гафния растет на обычных питательных средах.
При росте на агаре в первые сутки обнаруживаются
мелкие голубоватые полупрозрачные'колонии, сливаю-
щиеся на вторые сутки в общее наложение с мутнова-
тым оттенком, в последующем отмечается побурение
центра колонии. При росте на МПБ среда мутнеет,
иногда появляются пленки на поверхности. Микроор-
ганизм желатин не разжижает, молоко не свертывает,
на картофеле образует буровато-желтое или серое на-
ложение с неприятным запахом. Гафния разлагает;
мальтозу, фруктозу, глюкозу, арабинозу, ксилозу, рам-
нозу, глицерин, маннит, галактозу; не разлагает лакто-
зу, сахарозу, декстрин.
95
Возбудитель гафниоза в пустых инфицированных
ульях при хранении их на пасеке сохраняет жизнеспо-
собность до 270 дн., в перге — до 300, а в меде при ком-
натной температуре — до 90 дн. Кипячение в воде вы-
зывает его гибель в течение 1—2 мин, а температура
60°C — в течение 30 мин, 0,5%-ный раствор гидроокиси
натрия при температуре 18—20 °C убивает микроорга-
низмы в течение 35—85 мин, 3—5%-ный раствор фено-
ла или формалина— 1—5 мин.
Эпизоотологические данные. Болезнь
встречается на пасеках многих стран мира. Заболева-
ние регистрируется чаще всего в конце зимы и весной.
Его появлению способствуют неблагоприятные условия
содержания пчелиных семей: высокая влажность в улье,
дождливая и холодная погода, плохое утепление гнезд
и т. д. Тяжело протекает заболевание при наличии в
меде пади, большого количества незапечатанного меда,
недостатке перги. Возбудитель распространяется от
больных пчелиных семей к здоровым при перестановке
соторамок, подкормке инфицированными медом и пер-
гой, пользовании общей поилкой, блуждании пчел, ис-
пользовании инфицированных ульев и другого пчело-
водного инвентаря. В годы, благоприятные для разви-
тия болезни, заболевание протекает очень тяжело, вы-
зывая резкое ослабление и гибель большого количест-
ва пчелиных семей.
Патогенез. Возбудитель с кормом и водой попа-
дает в пищеварительную систему пчел и при ослабле-
нии резистентности организма быстро размножается,
вызывая интоксикацию организма. В результате нару-
шаются процессы расщепления и всасывания питатель-
ных веществ, усиливается перистальтика кишечника.
При проникновении возбудителя в гемолимфу и его
интенсивном размножении отмечается септицемия, ко-
торая приводит к гибели пчел.
Клинические признаки. Инкубационный пе-
риод длится от 3 до 14 дн. При заболевании в конце
зимы отмечаются возбуждение (шум) пчелиных семей,
распад зимнего клуба, много пчел выходят через лет-
ковый заградитель и падают на пол зимовника.
Ползающие пчелы выглядят слабыми, скованными в
движениях, брюшко сильно увеличено, часто наблюда-
ется диарея. Фекалии жидкие, клейкие, очень неприят-
ного запаха, коричневого цвета. Пчелы теряют способ-
96
ность к полету и погибают. Некоторые семьи ко време-
ни выставки из зимовника вследствие гибели большого
количества пчел резко ослаблены.
Весной больные семьи вяло осуществляют очисти-
тельный облет. Передняя стенка улья и соты испачка-
ны экскрементами желто-бурого цвета, неприятного за-
паха, на дне улья имеется большое количество мертвых
пчел. Многие семьи слабеют и погибают, а оставшиеся
очень плохо развиваются. При осмотре гнезд находят
достаточные запасы корма, но почти все соты испачка-
ны клейкими жидкими экскрементами бурого цвета.
При вскрытии больных пчел содержимое кишечника
грязно-белого или светло-серого цвета. В начале лета
больные семьи отстают в развитии, плохо отстраивают
соты и не используют медосбор.
Диагноз. Ставят его на основании эпизоотологи-
ческих данных, признаков болезни и результатов лабо-
раторных исследований с целью выделения чистой
культуры возбудителя из мышц или гемолимфы пчел.
При бактериологических исследованиях необходимо
иметь в виду, что Hafnia alvei при 20 °C приобретает
подвижность, обладает газообразованием и расщепляет
нитрат аммония, а при 37 °C она теряет эти свойства.
Наряду с этим при диагностике гафниоза ставят био-
пробу на пчелах.
Дифференциальный диагноз. Гафниоз не-
обходимо отличать от колибактериоза, сальмонеллеза,
септицемии, нозематоза и падевого токсикоза.
Профилактика. С целью недопущения возник-
новения заболевания на пасеках следует строго соблю-
дать ветеринарно-санитарные правила содержания и
кормления пчелиных семей.
Меры борьбы. При установлении заболевания
пасеку объявляют неблагополучной и проводят меро-
приятия согласно инструкции по предупреждению и
ликвидации заразных болезней пчел.
Ульи, вставные доски, потолочины, рамки тщательно
очищают и орошают из расчета 1 л на 1 м2 поверхнос-
ти одним из следующих растворов: 3%-ным горячим
(70 °C) раствором натрия гидроокиси при экспозиции
2 ч; теплым (30°C) щелочным раствором формальде-
гида, содержащим 3 % формальдегида и 3 % натрия
гидроокиси, при экспозиции 3 ч. После дезинфекции их
промывают водой и высушивают.
7-381
07
Загрязненные экскрементами соты перетапливают
на воск. Пустые соты, пригодные для дальнейшего ис-
пользования, опрыскивают с обеих сторон до заполне-
ния ячеек 1 %-ным раствором однохлористого йода при
экспозиции 3 ч или 2%-ным раствором формальдегида
при экспозиции 4 ч. Дезинфицирующий раствор уда-
ляют встряхиванием соторамки, после чего ее промы-
вают водой и просушивают.
Халаты, полотенца, лицевые сетки кипятят в воде в
течение 10 мин.
Воск от пчелиных семей неблагополучной пасеки
направляют на технические цели или обеззараживают
в автоклаве при температуре 127°C в течение 2 ч.
Мед, полученный от больных семей, хранят в закры-
той таре и используют для пищевых целей. Использо-
вать его для подкормки пчелиных семей запрещается.
Лечение. Больным пчелиным семьям дают лечеб-
ный сироп с левомицетином и неомицином трехкратно
с интервалом 3 дня. На 1 л свежеприготовленного са-
харного сврова (1 часть сахара и 1 часть воды) добав-
ляют 200 тыс. ЕД неомицина и 0,2 г левомицетина.
Каждую дозу антибиотиков растворяют в 100 мл кипя-
ченой, охлажденной до 35°C воды, тщательно смеши-
вают с сиропом и дают по 0,5 л на одну пчелиную
семью.
Сальмонеллез (паратиф). Инфекционная болезнь
пчелиных семей, сопровождающаяся гибелью взрослых
пчел и вызываемая различными видами сальмонелл.
В оз бу д и те л и - Sal. thyphiinurium, Sal. pullorum,
Sal. gallinarum и др. Для установления вида микроор-
ганизма используют специфические агглютинирующие
сыворотки. Сальмонеллы отличаются устойчивостью во
внешней среде. Они месяцами сохраняются в воде и
почве. Для дезинфекции чаще используют 3—4%-ный
горячий раствор натрия гидроокиси и 2%-ный раствор
формальдегида.
Эпизоотологические данные. Болезнь
встречается на пасеках многих стран. Как правило, бо-
лезнь появляется на пасеках, размещенных вблизи жи-
вотноводческих помещений, сточных вод ферм, мест
стоянок скота. Способствуют появлению болезни отсут-
ствие на пасеках поилок с доброкачественной водой,
нарушение ветеринарно-санитарных правил содержания
пчелиных семей. Источник инфекции —больные живот-
98
ные и бактерионосители. Кроме разных видов живот-
ных, часто бактерионосителями могут быть и сами
пчелы.
Патогенез. Возбудитель, попадая в организм
пчел с водой и инфицированным кормом, размножайся
в пищеварительной системе пчел. В дальнейшем про-
исходит разрушение перитрофической мембраны и про-
никновение микроорганизмов в гемолимфу, мышцы и
другие органы. В результате их дальнейшего размно-
жения отмечаются интоксикация организма пчел и их
гибель.
Клинические признаки. Болезнь возникает
на пасеках в конце зимы и весной при нарушении ус-
ловий содержания и кормления пчелиных семей.
У больных пчел увеличено брюшко, вначале они воз-
буждены, а затем наступает угнетение. Вследствие на-
рушений в пищеварительной системе отмечается диа-
рея. Экскременты желто-бурогО цвета, клейкие, зловон-
ные. Очистительный облет проходит вяло, пчелиные
семьи сильно слабеют, плохо развиваются, а часто и
гибнут.
Диагноз. При постановке диагноза на сальмо-
неллез необходимо учитывать эпизоотологические дан-
ные и клинические признаки болезни. Окончательный
диагноз ставят в ветеринарных лабораториях по ре-
зультатам бактериологических исследований гемолим-
фы и содержимого кишечника. После выделения чистой
культуры проводят биопробу на пчелах и белых мы-
шах.
Дифференциальный диагноз. Исключить
гафниоз, колибактериоз, нозематоз.
Профилактика. В целях предупреждения появ-
ления болезни на пасеках не допускается размещение
их вблизи животноводческих, птицеводческих и зверо-
водческих помещений. Необходимо соблюдение ветери-
нарно-санитарных правил содержания пчелиных семей,
а также обеспечение пчел доброкачественными водой и
кормом.
Меры борьбы и лечение такие же, как и при
гафниозе.
Колибактериоз. Инфекционная болезнь пчелиных се-
мей, сопровождающаяся заболеванием и гибелью
взрослых пчел.
7*
99
Возбудитель — Esherichia coli. Палочки с за-
кругленными концами размером (1—3)Х0,5 мкм, чаще
подвижные, перетрихи, спор и капсул не образуют,
грамнегативные. Эшерихии коли не отличаются устой-
чивостью к воздействию физических и химических фак-
торов. В меде при температуре 4—20 °C они сохраняют
жизнеспособность до 7 сут, а при температуре 60 °C —
10—15 мин.'
Эпизоотологические данные. Болезнь
встречается чаще всего в густонаселенных, с большой
концентрацией животных регионах. Возникновению за-
болевания способствуют резкое снижение резистентнос-
ти пчелиных семей при сильном поражении их клещом
Варроа, скармливание большого количества сахарного
сиропа, содержание пчелиных семей на недоброкачест-
венных кормах и при повышенной влажности в гнездах
пчел. Источник инфекции — больные пчелы, выделяю-
щие возбудителя с экскрементами.
Патогенез. Возбудитель, попадая в организм
физиологически ослабленных пчел, начинает быстро
размножаться в кишечнике. В результате отсутствия
естественного биологического барьера (перитрофиче-
ской мембраны) он быстро проникает в гемолимфу и,
размножаясь в ней, вызывает септицемию и гибель
пчел.
Клинические признаки. Заболевание возни-
кает в конце зимовки и весной, а иногда и осенью. Вна-
чале пчелы возбуждены, затем они становятся вялыми,
отмечаются увеличение брюшка и диарея. Вследствие
интоксикации организма пчелы теряют способность к
полету. Наблюдается большая гибель пчел, рамки и
стенки улья загрязнены экскрементами. При вскрытии
больных или только погибших пчел обнаруживают
дряблый грязно-белого или буровато-серого цвета ки-
шечник. Пчелиные семьи плохо развиваются и не дают
товарной продукции.
Диагноз. Ставят его на основании эпизоотологи-
ческих данных, клинических признаков болезни и ре-
зультатов бактериологического исследования пчел.В по-
следнем случае гемолимфу высевают на агар Эндо и
МПБ.
Дифференциальный диагноз. Исключить
гафниоз, сальмонеллез, нозематоз.
100
Профилактика, меры борьбы и лечение
такие же, как при гафниозе и сальмонеллезе.
Септицемия. Инфекционная болезнь пчелиных семей,
возбудитель которой размножается в гемолимфе рабо-
чих пчел, маток и трутней. Пчелы теряют способность
к полету, пчелосемьи быстро слабеют. При прикоснове-
нии к погибшим пчелам они быстро распадаются на от-
дельные сегменты.
Возбудитель — Pseudomonas apisepticum. Поли-
морфная, грамнегативная, подвижная палочка разме-
ром (0,6—0,8) X (1,5—2,0) мкм, не образующая спор.
Растет на обычных питательных средах при температу-
ре 20—37 °C. На МПА дает маслянистые крупные мут-
но-опалового цвета в центре и светлые по периферии
колонии с ровными краями. При сплошном росте коло-
нии имеют мутно-зеленоватый оттенок. При посеве на
МПБ отмечаются помутнение и образование неболь-
шого осадка. Желатин разжижает. На картофеле вы-
растают маслянистые, чернеющие со временем колонии.
Микроорганизм свертывает и пептонизирует молоко,
образует сероводород, нитраты восстанавливает в ни-
триты. Разлагает с образованием кислоты и газа глю-
козу, мальтозу, сахарозу, маннит, ксилозу.
При 74 °C возбудитель погибает за 30 мин, при
100°C — за 3 мин. Солнечные лучи и пары формалина
убивают возбудителя за 7 ч. В трупах пчел микроб по-
гибает через месяц. На стенках улья в летнее время
сохраняет жизнеспособность до 35 сут, а в осенне-зим-
ний период — до 150 сут. В ячейках сотов возбудитель
выживает до 40 сут, а в осенне-зимний период — до
180 сут. Карболовая кислота в разведении 1:90 уби-
вает микроорганизм за 10 мин, 0,5%-ная перекись во-
дорода — за 25 мин.
Эпизоотологические данные. Впервые за-
болевание зарегистрировано в Англии, позднее было
выявлено в США, СССР, ПНР, Франции, Швейцарии,
Австралии и на пасеках других стран. Болезнь чаще
регистрируют весной и осенью, но описаны случаи за-
болевания в летние месяцы при высокой температуре
п хорошем медосборе. В больной семье погибает 20 %
пчел и больше. При остром течении болезни пчелы в
семьях могут погибнуть за несколько дней, хотя это
наблюдается очень редко.
Источник инфекции — больные пчелы. На пасеках
101
часто регистрируют совместное поражение пчелиных
семей возбудителями нозематоза, варрооза, акарапи-
доза и септицемии. Эти заболевания протекают очень
тяжело и часто сопровождаются гибелью пчелиных се-
мей (этому способствует сохранение возбудителя сеп-
тицемии в организме клеща Варроа до 12—14 ч).
Патогенез. Возбудитель проникает в организм
пчел через поврежденные клещами и другими парази-
тами кутикулу и трахеи, а также через кишечник. Раз-
множаясь в гемолимфе, возбудитель попадает в раз-
личные органы, где быстро распадается белок. Разви-
тию возбудителя в организме пчел способствуют боль-
шие нагрузки на пчелиную семью: обильные искусст-
венные подкормки, усиленное воскостроительство при
роении и формировании отводков, кочевки во влажные
места и т. д.
Клинические признаки. Болезнь может про-
текать с характерными, хорошо выраженными призна-
ками и сильным ослаблением пчелиных семей, а также
скрыто, с незначительной гибелью пчел.
В начале болезни пчелы возбуждены, а затем отме-
чается угнетение. Болезнь протекает быстро, пчелы по-
гибают через несколько часов после появления первых
клинических признаков. В семьях часто создается не-
соответствие между количеством расплода и пчел-кор-
милиц. В больных семьях появляются черные пчелы с
признаками паралича. Они ползают с опущенными
крыльями, теряют способность к полету, падают на
предлетковую площадку и погибают.
У больных пчел гемолимфа приобретает молочный
цвет, грудные мышцы становятся грязно-серыми, затем
светло-коричневыми и черными. Вследствие разложения
тканей прикосновение к трупу ведет к его распаду на
отдельные части, что является характерным признаком
этой болезни.
Тяжелому течению болезни и появлению характер-
ных признаков способствуют дождливое лето, попада-
ние влаги в ульи, постановка пасеки в сырых и заболо-
ченных местах, сырой зимовник и наличие в гнезде
большого количества незапечатанного корма.
Диагноз. При постановке диагноза учитывают
клинические признаки болезни. У больных пчел берут
для исследования гемолимфу, которая при этом забо-
левании приобретает молочно-белый цвет или стано-
102
вится опалесцирующей. Окончательный диагноз ставят
на основании бактериоскопического и бактериологичес-
кого исследования гемолимфы.
При проведении биологической пробы пчел лучше
заражать опрыскиванием суспензией культуры, выде-
ленной из организма больных пчел.
Необходимо иметь в виду, что очень часто при ми-
кроскопии мазков из. гемолимфы в поле зрения отсут-
ствуют гемоциты, имеется масса неразличимых телец.
Дифференциальный диагноз. Исключают
отравление пчел, белковое голодание.
Профилактика. Пасеки необходимо размещать
в сухих местах, пчелиные семьи обеспечивать достаточ-
ным количеством корма хорошего качества.
Меры борьбы. При установлении септицемии
пасеку объявляют неблагополучной по этой болезни,
устанавливают карантин и проводят ветеринарно-сани-
тарные мероприятия.
Ульи и пустые соторамки после механической обра-
ботки дезинфицируют 3%-ным раствором перекиси во-
дорода; раствором, содержащим 1 % перекиси водорода
и 0,5 % муравьиной кислоты, при экспозиции 2 ч. По-
стоянно со дна улья и предлетковых площадок соби-
рают погибших пчел, выброшенный расплод и сжигают
их. Пасеку переводят в сухое место. Больные семьи пе-
ресаживают в сухие продезинфицированные ульи, гнез-
да сокращают и хорошо утепляют. В зимовниках со-
здают оптимальные условия. Мед, полученный от пче-
линых семей неблагополучной пасеки, хранят в закры-
той таре и используют только для пищевых целей.
Карантин снимают с пасеки через год после ликви-
дации заболевания и проведения заключительной де-
зинфекции.
Лечение. Больным и подозрительным по заболе-
ванию септицемией пчелиным семьям дают лечебный
корм. Для этого на 1 л сахарного сиропа добавляют
тетрациклин или хлортетрациклин по 300 тыс. ЕД.
Предварительно препарат растворяют в 50 мл теплой
воды и добавляют в сироп. После тщательного переме-
шивания лечебный корм дают в чистых кормушках по
100—150 мл на каждую рамку, занятую пчелами, 3 ра-
зд с интервалом 5—6 дн.
Аскосфероз (перицистоз, перецистисмикоз, известко-
вый расплод, меловой расплод). Инфекционная бо-
103
13. Возбудитель аскосфероза пчел (Ascosphaera apis).
лезнь пчелиных семей, возбудитель которой поражает
расплод.
Возбудитель — гриб Ascosphaera apis. Имеет
септированный разнополый, т. е. мужской и женский,
мицелий. Мицелий в местах соприкосновения выпускает
короткие боковые гифы, на которых образуются поло-
вые органы. Размножается гриб путем слияния ядер
мужского и женского мицелия с последующим делением
и образованием многочисленных спор, объединенных в
споровые шары, которые заключены в цисту. Циста со
споровыми шарами и спорами внутри их называется
плодовым телом (рис. 13). В споровых шарах содер-
жится по 50 % мужских и женских спор. Споры сильно
преломляют свет, имеют тонкую оболочку, почти бес-
цветны, в массе имеют слабо-коричневый цвет, несколь-
ко эллипсовидны. Размеры (1,0—2,0) X (2,0—3,5) мкм.
В литературе описаны два варианта гриба: апис и
майор, которые различаются размерами. Обе формы
имеют плодовые тела с густо набитыми споровыми кап-
сулами, которые у варианта апис зеленовато-коричне-
вые и, как правило, более округлые, чем у варианта
майор. Последние бывают овальными, грушевидными п
имеют черный цвет. Способность к образованию плодо-
104
вых тел у обоих вариантов одинакова. Величина пло-
довых тел обоих вариантов следующая: у варианта
апис 49,6—82,1 мкм (в среднем 65,9), у варианта майор
88,4—168,5 мкм (в среднем 128). Температурный опти-
мум для образования плодовых тел у варианта майор
20 °C, а у варианта апис 30 °C. Гриб растет на сусле-
агаре, картофельно-глюкозном агаре и среде Сабуро.
Споры возбудителя отличаются большой устойчи-
востью во внешней среде. В пустых ульях, на согах, ин-
вентаре, в меде и перге возбудитель сохраняет жизне-
способность в условиях пасеки 4 года, при температу-
ре— 27 °C — в течение года. Устойчив он и к действию
дезинфицирующих веществ.
Эпизоотологические данные. Впервые за-
болевание было описано в 1878 г. в Чехословакии.
В настоящее время оно встречается почти на всех кон-
тинентах земного шара.
Источником возбудителя являются больные пчели-
ные семьи. Заболевание чаще регистрируется на пасе-
ках, размещенных в сырых низких местах с бедной кор-
мовой базой. Купля-продажа маток, пакетов и пчели-
ных семей, а также кочевки ведут к широкому распро-
странению этого заболевания. Часто заболевание появ-
ляется на пасеках тепличных хозяйств. Это связано с
применением для подкормки инфицированной возбуди-
телем пыльцы и благоприятными условиями для раз-
вития возбудителя — высокая температура и влажность,
ослабленные пчелиные семьи.
Быстрому развитию возбудителя в пчелиных семьях
способствует необоснованное применение различных, ан-
тибиотиков, что приводит к нарушению обмена веществ
в организме пчел и резкому снижению их резистент-
ности.
Широкое распространение варрооза на пасеках при-
водит к снижению резистентности пчелиных семей. При-
менение раствора щавелевой кислоты часто создает
благоприятные условия для развития возбудителя
аскосфероза в пчелиных семьях.
Патогенез. Пчелы заражаются спорами гриба
через поверхность тела или с кормом. В первом случае
на теле личинки из спор образуется мицелий и прони-
кает через кутикулу. Во втором случае мицелий разру-
шает перитрофическую мембрану, эпителиальные клет-
ки кишечника, лизируя ядра и цитоплазму. В дальней-
105
шем отмечается поражение эноцитов и жирового тела.
В организме личинки резко увеличивается количество
эноцитов. В ядрах жировых клеток отмечается некро-
биоз с дальнейшим разрушением их. Наблюдается ги-
пертрофия мальпигиевых сосудов. В дальнейшем. мице-
лий гриба поражает все ткани, пронизывает тело ли-
чинки и интенсивно размножается на ее поверхности.
Личинки высыхают и превращаются в плотную сухую
массу белого или грязно-белого цвета. Основная масса
расплода гибнет после запечатывания в период начала
прядения кокона и последней личиночной линьки.
Клинические признаки. Инфицированные
личинки в начале заболевания становятся желто-белы-
ми, потом светло-желтыми, мягкими, тестообразными,
блестящими. В дальнейшем они покрываются белым
грибным мицелием, который заполняет свободное про-
странство ячеек. Мицелий толстым слоем покрывает
нижнюю часть личинок, слабее—спереди, и остается
свободной от него подсохшая головная часть. Мумии
личинок, объем которых уменьшается, становятся твер-
дыми.
Вследствие разнополости гриба имеется две картины
заболевания. Если в ячейке имеется один из полов с
проросшим мицелием, то плодовые тела не образуются
и цвет личинки белый или желто-белый.
В случаях попадания в ячейку женского и мужского
мицелия на поверхности и внутри личинки образуются
цисты, которые придают мертвой личинке, обычно по-
гибающей в стадии предкуколки, грязно-коричневый
цвет. Возбудитель поражает в первую очередь трутне-
вый расплод предположительно в связи с тем, что
влажность и температура на краю гнезда (30 °C) бла-
гоприятнее для развития гриба, чем в расплодной час-
ти. Инфицированные личинки размещаются беспоря-
дочно между заболевшим расплодом и создают впечат-
ление здоровых. Больные предкуколки лежат мумифи-
цированными в открытых, распечатанных пчелами
ячейках или еще не распечатанных, крышечки которых
в большинстве нормальные, однако иногда пятнистые
или несколько проваленные (рис. 14).
У мумифицированных особей коконы почти готовы
и, поскольку не прикреплены к донышкам и стенкам,
могут быть легко извлечены из ячеек пинцетом. В нерас-
печатанных ячейках мумии, если сот потрясти, издают
106
14. Расплод, пораженный аскосферозом.
характерный «брякающий» звук и выпадают из ячеек,
если удалить крышечки.
На стационарно неблагополучных пасеках расплод
может поражаться на 60—70%. На дне улья и предлет-
ковой площадке скапливается большое количество вы-
брошенных пчелами трупов, в результате пчелиная
семья резко слабеет.
Диагноз. При диагностике заболевания учиты-
вают эпизоотологические данные, клинические и пато-
морфологические признаки. Надежную диагностику
можно провести только при микроскопическом исследо-
107
вании мумий личинок, обнаружив там плодовые тела
гриба. В поле зрения микроскопа эти тела хорошо вид-
ны при исследовании свежего патматериала. У старых
мумий оболочка цист большей частью лопнувшая и не
содержит или содержит мало споровых шаров, которые
также могут быть повреждены. В сомнительных случаях
используют метод выделения чистой культуры посевом
патологического материала на питательные среды.
Дифференциальный диагноз. Исключают
аспергиллез и поражения перги.
Профилактика. Необходимо размещать семьи
в сухих, хорошо защищенных от господствующих вет-
ров местах. На пасеках содержат сильные пчелиные
семьи, гнездо утепляют. Ежегодно семьи пересаживают
в продезинфицированные ульи. Исключают применение
антибиотиков для стимуляции развития пчелиных семей
и с целью профилактики болезней. При подкормке пче-
линых семей пыльцой не допускают ее использования
из неблагополучных пасек. Матки, получаемые из не-
благополучных пасек, часто являются источником ин-
фекции.
Меры борьбы. Основное звено в оздоровлении
пасек — строгое выполнение ветеринарно-санитарных
мероприятий на неблагополучных пасеках. Из больных
семей удаляют соты с пораженным расплодом и пере-
тапливают их на воск, который помещают в специаль-
ную тару с отметкой «воск аскосферозный». Мед с не-
благополучных пасек используют только для пищевых
целей. На неблагополучных пасеках проводят текущую
дезинфекцию ульев, сотов и инвентаря. Сильно пора-
женные семьи перегоняют на новые гнезда или размно-
жают «налетом на матку» с изъятием всего расплода
старше трехдневного возраста и помещением его с пче-
лами в другой улей. Ульи, рамки и другие деревянные
предметы дезинфицируют после механической очистки
двукратно через 1 ч по 0,25 л/м2 раствором, содержа-
щим 10% перекиси водорода и 0,5 % муравьиной кис-
лоты, при экспозиции 4 ч после первой обработки. За-
тем предметы промывают водой. Пустые соты дезин-
фицируют орошением препаратом глак при экспозиции
2,5 ч; раствором, содержащим 10 % перекиси водорода
и 0,5 % муравьиной кислоты, при экспозиции 4 ч; 4%-
ным раствором однохлористого йода при экспозиции
5 ч. После дезинфекции соты промывают водой.
108
Пыльцу из неблагополучных пасек обеззараживают
раствором, содержащим 1 % тимола, 98,85 % ацетона,
0,1 % кипяченой воды и 0,05 % диметилсульфоксида.
На одну часть раствора берут две части пыльцы, пере-
мешивают в плотно закрывающейся емкости и остав-
ляют на 10 сут под вытяжной системой. После этого
жидкость сливают/ пыльцу помещают на противни, пе-
ремешивают до испарения раствора. Пыльцу исполь-
зуют для подкормки пчел.
Лечение. Для лечения пчел, больных аскосферо-
зом, применяют нистатин. Лечебный корм дают из рас-
чета 50 г канди (меда) на рамку или 0,5 л сахарного
сиропа (1:1) на семью пчел, содержащих 100 тыс. ЕД
нистатина на рамку с пчелами. Лучшие результаты
дает распыление на рамку с пораженным расплодом
10 г смеси, состоящей из 100 г сахарной пудры и 0,5—
1,0 г нистатина, трехкратно через 5 дн. В Польской На-
родной Республике широко используют антибиотик ас-
коцидин путем распыления лечебного препарата на
рамки с больным расплодом, а в Японии—раствор
трихлоризоциануровой кислоты в виде аэрозоля.
Аспергиллез (каменный расплод). Инфекционная бо-
лезнь взрослых пчел и расплода, вызывающая их ги-
бель и высыхание. Аспергиллезом болеют человек,
птица и животные.
Возбуди гель —Aspergillus flavus (встречаются
A. niger и A. fumigatus). Хорошо растет при темпера-
туре 33—37 °C и pH 3,1—4,4. Для роста требуется мно-
го кислот, он сбраживает углеводы, особенно поли- и
моносахара, разжижает желатин и створаживает мо-
локо. Высокая влажность в улье способствует распро-
странению болезни. Стойкость спор и гифов к нагрева-
нию невысокая, и гриб уже при 60°C погибает в течет
ние 30 мин. Споры убивают 2—3%-ная карболовая кис-
лота и 5%-ный формалин. Aspergillus flavus бесцвет-
ный, величиной (400—1000) X (5—15) мкм, растет вверх.
Находящиеся на стеригмах споры неравномерно круг-
лые или грушеобразные, их наружная поверхность
гладкая или шиповатая, величиной 3—6 мкм. Плодовое
тело гриба вместе со спорами достигает в диаметре
90 мкм, У других видов гриба встречаются споры с от-
носительно толстой оболочкой, окрашенной в разные
цвета. Старые колонии имеют цвет желтовато-серый и
оливково-коричневый.
109
Эпизоотологические данные. Гриб очень
широко распространен в природе и в улей заносится
пчелами с нектаром, пыльцой и сотами. Способствуют
заболеванию высокая влажность в ульях, сырая дожд-
ливая погода.
Болезнь возникает весной и протекает в виде спо-
радических случаев с поражением ’ отдельных семей.
Наибольшая гибель пчел и расплода отмечается в сла-
бых семьях.
Патогенез. Расплод и взрослые пчелы заража-
ются через корм, инфицированный спорами гриба. Про-
никновение гриба в организм насекомых возможно и
через кутикулу. Патогенное действие у A. flavus заклю-
чается не только в образовании мицелия, который про-
растает сквозь тело хозяина, но и, главным образом,
в действии' выделяющихся токсинов, разрушающих
ткани расплода и взрослых пчел. Строение гриба спо-
собствует его распространению в улье. Пчелы легко
приходят в соприкосновение со спорами и на ножках,
волосках тела, ротовом аппарате переносят их при ухо-
де за расплодом на личинок, а также передают друг
другу. Кроме того, при чистке ячеек споры переносятся
на здоровые особи более активно, чем при других за-
болеваниях.
Клинические признаки. Гриб после инфици-
рования развивается с различной скоростью, и первые
изменения в расплоде наблюдаются ие одновременно, а
в течение нескольких дней. У больных личинок отмеча-
ется едва различимая подвижность, они быстро поги-
бают. Пчеловоды обнаруживают заболевание в основ-
ном по изменению цвета и состоянию расплода.
Проникновение мицелия через наружные покровы
начинается у головы или между сегментами в первые
1—2 дня. Поверхность тела становится кожистой, смор-
щенной, кремово-белого цвета. У личинки исчезает сег-
ментация. Тело твердеет, делается хрупким, скрючива-
ется, причем форма тела остается в значительной сте-
пени характерной для мумии. Погибают они на 5—6-й
день или в начале стадии выпрямления.
Мумифицированных личинок часто трудно извлечь
из ячеек, так как мицелий соединен с их стенками. Гриб
может так сильно заполнять промежутки между личин-
ками и стенками ячеек, что закрывает поверхность рас-
плода, и создается впечатление, что это желто-зеленая
ПО
пыльца. Различные виды гриба имеют различный вид
на открытой части ячейки. В закрытых ячейках кры-
шечки большей частью провалившиеся, зараженные ли-
чинки лежат отдельными или сплошными участками.
Взрослые пчелы при заражении грибом становятся
беспокойными, покидают улей, полет их становится
слабым, тяжелым, и скоро пчела совершенно теряет
способность к полету, причем она пытается взлететь с
травинок, падает на землю, делает еще движения но-
гами, ротовым аппаратом, брюшком и погибает через
несколько часов.
Внешне живые пораженные грибом пчелы не отли-
чаются от здоровых, пока есть еще слабые движения
брюшка, которое, как и грудь, вскоре становится твер-
дым. Кишечник и окружающие ткани твердые и трудно
препарируются. Мицелий проникает через тонкие неж-
ные участки тела, отверстия и образует в этих местах
при влажной среде поверхностный слой мицелия и спор.
Попытка пчел удалить их не удается, заболевание про-
грессирует, и споры распространяются дальше среди
пчел и расплода.
Диагноз. Ставят его на основании эпизоотологи-
ческих данных, клинических признаков болезни, а так-
же результатов микроскопического анализа препаратов
и наличия типичных колоний в посевах.
В лабораторию отправляют не менее 50 пчел с кли-
ническими признаками или трупов из свежего подмора,
а также кусочек сота с больным расплодом. На агаре
Чапека при температуре 25—30 °C через 3—4 дня по-
являются желто-зеленые мелкозернистые колонии с воз-
душным мицелием по краям. На концах конидиеносцев
имеются булавовидные утолщения с радиально распо-
ложенными стеригмами и цепочками спор.
Дифференциальный диагноз. Исключают
аскосфероз.
Профилактика. Пасеки размещают в сухих,
хорошо освещенных местах. Содержат сильные пчели-
ные семьи в хорошо утепленных ульях с достаточ-
ным количеством углеводного и белкового кормов.
В ульях постоянно поддерживают чистоту. Нельзя при-
менять антибиотики для стимуляции развития пчели-
ных семей и профилактики заболеваний.
Меры борьбы. Необходимо строго выполнять
ветеринарно-санитарные мероприятия. Учитывая быст-
111
рое и легкое распространение возбудителя и его боль-
шую опасность для пчеловодов, пчелиные семьи с кли-
ническими признаками болезни уничтожают закурива-
нием сернистым газом, а подушки, потолочины, сото-
рамки и пчел сжигают. Ульи и инвентарь после меха-
нической очистки обеззараживают 5%-ным раствором
формальдегида. Почву, где размещался улей, обраба-
тывают 4%-ным раствором формальдегида из расчета
10 л/м2 и перекапывают на глубину 10—15 см. Мед и
пергу, взятые из больных семей, нельзя использовать
в пищу и для подкормки пчел. Пчелиные семьи под-
кармливают сахарным сиропом.
При работе с патологическим материалом и осмот-
ре больных семей необходимо соблюдать правила лич-
ной профилактики: работать в марлевых повязках и
специальных очках, после работы лицо и руки вымыть
водой с мылом.
Пасеку объявляют благополучной через месяц пос-
ле ликвидации болезни и проведения заключительной
дезинфекции.
Лечение. Не разработано.
Меланоз. Инфекционная, хронически протекающая
болезнь пчелиных маток, сопровождающаяся пораже-
нием яичников, семяприемника, большой ядовитой же-
лезы, заднего отдела кишечника и прекращением яйце-
кладки.
Возбудитель (рис. 15) — несовершенный гриб
Aureobasidium pullulans (син. Melanosella mors apis),
образует мицелий, псевдомицелий, отдельные дрожже-
подобные клетки и хламидоспоры. Молодые гифы свет-
лые. В старых культурах в большом количестве обра-
зуются толстостенные темноокрашенные хламидоспоры.
При посеве на картофельный агар с глюкозой через
3 сут вырастают влажные, блестящие, гиалиноподобные
серого цвета колонии до 6 см в диаметре. С третьего
дня заметно врастание колонии в питательную среду и
начинается почернение ее в виде радиальных лучей и
по периферии. Месячная культура черная, сухая, воз-
вышающаяся над питательной средой. Для гриба ха-
рактерно образование хламидоспор размером 10 X
X 14 мкм, встречается псевдомицелий, состоящий из от-
дельных вытянутых в длину клеток, соединенных друг
с другом. Они имеют размеры (5,6—7,3)Х.(11,2—
20,2) мкм. Встречаются почкующиеся клетки.
112
15. Возбудитель меланоза—гриб Aureobasidium pullulans.
Возбудитель отличается большой устойчивостью.
Хламидоспоры остаются жизнеспособными после мно-
гократного замораживания и оттаивания при хранении
в неотапливаемом помещении в течение 8 мес. 2%-ный
раствор гипохлорида натрия убивает гриб в течение
20 мин, 2%-ный раствор однохлористого йода — 5 и
0,1%-ный раствор йода в 70%-ном спирте—10 мин.
Эпизоотологические данные. Болезнь
встречается на пасеках многих стран. Возбудитель бо-
лезни широко распространен в природе. На растениях
часто встречается в пади, поэтому принос большого ко-
личества пади способствует появлению заболевания ма-
ток. Большой ущерб болезнь может причинять пчело-
разведенческим хозяйствам, особенно при несоблюде-
нии ветеринарно-санитарных правил, травмах при инст-
рументальном осеменении.
Патогенез. Заражение маток с кормом не уда-
ется. При введении в гемоцель и влагалище возбуди-
тель размножается в эпителии и трахеях, яйцевых тру-
бочках яичников и семяприемнике. Затем с гемолимфой
он разносится по всему организму и вызывает пораже-
ние большой ядовитой железы, заднего отдела кишеч-
ника и мальпигиевых сосудов. Отмечается некроз тка-
ней. В местах локализации гриба появляются участки
желто-коричневого и черного цветов с наличием черной
зернистой массы. Болезнь протекает хронически, и с мо-
мента заражения до появления признаков болезни часто
проходит 6—8 мес.
Клинические признаки. Болезнь чаще ре-
гистрируется в конце лета или весной, протекает, осо-
бенно в начальной стадии, без видимых признаков.
Матки сначала сокращают, а затем прекращают яйце-
кладку, становятся вялыми, малоподвижными, длитель-
ное время находятся в неподвижном состоянии. Отме-
чается увеличение брюшка. В гнезде больной семьи
отсутствуют яйца и открытый расплод. Матки слабеют,
падают с сотов на дно улья. Рабочие пчелы выбрасы-
вают их из улья и на земле заключают в клуб. Семья,
потерявшая матку, в связи с отсутствием молодых ли-
чинок не в состоянии вывести себе молодую матку. По-
этому без вмешательства пчеловода она становится
трутовочной и погибает.
Диагноз. При отсутствии в пчелиной семье яиц,
открытого расплода и наличии малоподвижной с уве-
личенным брюшком матки можно предположить мела-
ноз. Окончательный диагноз ставят в лаборатории по
характерным патологоанатомическим изменениям орга-
нов матки, результатам микроскопических и микологи-
ческих исследований.
Профилактика. Особое внимание обращают на
недопущение длительного нахождения в пчелиных семь-
ях падевого меда, проводят плановую замену пчелиных
маток. При инструментальном осеменении маток капил-
ляр микрошприца обеззараживают в течение 5 мин 2%-
ным раствором однохлористого йода или 0,1 %-ным рас-
твором йода в 70 %-ном спирте. Остатки йода удаляют
промыванием капилляра 1 %-ным раствором бисульфа-
та натрия и стерильным физиологическим раствором.
Меры борьбы и лечение. Не разработаны.
Из других микозов на пасеках встречаются канди-
дамикоз, возбудителем которого являются грибы из ро-
да Candida, вызывающие гибель взрослых пчел; мукор-
микоз, поражающий также взрослых особей; актиноми-
коз маток, вызываемый лучистым грибом и поражаю-
щий половые органы. В патологии пчелиных семей
имеют значение и другие мало изученные виды грибов.
114
Лабораторно-практическое занятие 5
Цель занятия. Научиться выявлять больные пчели-
ные семьи, отбирать для исследования в лаборатории
патологический материал, приготавливать лечебные
корма, дезинфицирующие растворы и проводить оздо-
ровительные мероприятия.
Оборудование и материалы: лицевые сетки, дымари, стамески,
скальпели, ящики для отбора образцов сотов, стеклянные банки,
марля, пересылочные клеточки для маток, микроскоп, бактериоло-
гические петли, предметные стекла, питательные среды, умываль-
ник, полотенце, мыло, посуда для измерения и приготовления ле-
чебных кормов, весы, сахарный песок, пудра, мед, лечебные пре-
параты, свежегашеная известь, формалин, перекись водорода, ук-
сусная кислота, кальцинированная Сода, набор красящих раство-
ров, кедровое масло.
Место проведения занятия. Проводят его на учебно-
опытной или специально подобранной пасеке хозяйства
и в учебном классе.
Методика проведения занятия. Начинается занятие с
осмотра учащимися пасеки. При этом анализируют ее
расположение, состояние зимовника и сотохранилища.
Осматривают запасные и выбракованные соты. По
возрасту сотов, наличию на них следов экскрементов
делают выводы о санитарном состоянии, своевременной
выбраковке сотов и т. д.
Для выявления больных пчелиных семей учащиеся
обращают внимание на поведение пчел, состояние пре-
дульевых площадок, сотов, расплода и кормовых запа-
сов.
При осмотре предульевых площадок можно обнару-
жить больных и мертвых пчел, трутней, расплод, а
иногда и маток. При наличии ползающих пчел иссле-
дуют у них состояние кишечника, извлекая его пинце-
том. Для осмотра гемолимфы разрезают и сдавливают
грудь. У здоровых пчел гемолимфа прозрачная, при
септицемии—беловатая. Обращают внимание на со-
стояние выброшенного расплода.
Затем осматривают гнездо пчел. При этом обращают
внимание на силу пчелиной семьи, возрастной состав
пчел. Загрязнение сотов и стенок ульев экскрементами
указывает на наличие заразных болезней или пади.
Для осмотра расплода необходимо, чтобы лучи
солнца падали в глубь ячеек. В здоровых семьях рас-
плод занимает все ячейки подряд. При инфекционных
8*
115
болезнях отмечается пестрота, т. е. рядом со здоро-
вым имеется больной расплод, ячейки с трупами или
пустые.
При поражении расплода грибами в первую очередь
поражается трутневый расплод.
Погибшие семьи осматривают в следующем поряд-
ке: утепление и размеры гнезда, состояние сотов, коли-
чество и качество кормовых запасов, количество и рас-
положение пчел, местонахождение матки. Пчелы в по-
гибших семьях располагаются в улочках, по всему дну
улья или кучкой на дне улья с вершиной в центре быв-
шего клуба. При инфекционных болезнях (гафниоз, ко-
либактериоз и др.) пчелы чаше расползаются по всему
объему улья и соты испачканы испражнениями. Иногда
в погибшей семье остается небольшое количество рас-
плода. Это свидетельствует о быстрой гибели пчел.
Учащиеся берут материал и готовят его для отправ-
ки в ветеринарную лабораторию. Для лабораторной
диагностики инфекционных болезней в лабораторию
отправляют: а) при подозрении на бактериальные бо-
лезни расплода и микозы кусочки сота размером 10х
X 15 см с больными и погибшими личинками; б) на ме-
шотчатый расплод образцы сотов, законсервированные
50%-ным раствором глицерина или медом; в) при по-
дозрении на вирусные болезни и спироплазмоз по
50 пчел с клиническими признаками, законсервирован-
ных 50%-ным раствором глицерина; г) при других бо-
лезнях по 50 живых пчел с признаками болезни; д) при
меланозе больных маток v 10—15 живыми пчелами в
пересылочных клеточках.
Образцы сотов упаковывают в фанерные или дере-
вянные ящички и отделяют друг от друга и стенок
ящика планками. Живых пчел отправляют в картон-
ных садках или стеклянных банках, накрытых двух-
слойной марлей и снабженных кормом. При консер-
вировании кусочки сота с пораженным расплодом и
живых пчел помещают в чистые стеклянные банки и
заливают 50%-ным глицерином.
Патологический материал сопровождают письмом
ветработника, производившего отбор проб. В сопрово-
дительном письме указывают наименование хозяйства,
адрес, номера пчелиных семей, от которых отобраны
пробы, клинические признаки болезни, на какие болез-
ни необходимо провести исследование. Сопроводитель-
116
ное письмо должно иметь печать ветеринарного учреж-
дения или хозяйства.
Ветеринарная лаборатория регистрирует поступив-
ший материал в специальном журнале, проводит иссле-
дование и результаты сообщает в хозяйство, а при ка-
рантинных болезнях — и главному ветеринарному врачу
района.
Патологический материал на инфекционные болезни
исследуют в следующем порядке:
1. Осмотр поступившего материала — кусочек сота,
живые или погибшие пчелы. При осмотре сота с рас-
плодом обращают внимание на общий вид расплода,
возраст, более сильное поражение трутневого или пче-
линого расплода, положение личинок или трупов (ко-
рочек) в ячейке, цвет и запах больного расплода, кон-
систенцию трупов. При осмотре живых пчел и подмора
обращают внимание на целостность их тела, наполне-
ние брюшка, состояние волосяного покрова, цвет тела,
запах.
2. Вскрытие маток, живых пчел и личинок. При
этом обращают внимание на состояние половых орга-
нов, кишечника, грудных мышц, а у личинок—кутику-
лы и внутреннего содержимого.
3. Приготовление и осмотр мазков проводят по об-
щепринятому методу, описанному выше.
4. Из патологического материала делают посевы на
обычные или специальные питательные среды, выде-
ляют чистую культуру возбудителя, определяют куль-
турально-биохимические свойства и возбудителя забо-
левания.
5. При необходимости ставят биологическую пробу
или проводят серологические исследования.
Для правильного подбора лечебных препаратов и
эффективного лечения пчелосемей при заразных болез-
нях в лаборатории определяют чувствительность выде-
ленных штаммов к соответствующим антибиотикам и
сульфаниламидным препаратам.
Эти средства применяют в смеси с сахарным сиро-
пом или сахаромедовым тестом (канди). Для приго-
товления сиропа 1 кг сахара растворяют в 1 л горячей
кипяченой воды. Необходимое количество лечебного
препарата растворяют в 100 мл кипяченой воды тем-
пературой 38—40 °C и добавляют к сахарному сиропу,
хорошо перемешивают и раздают пчелиным семьям в
117
дозировке, определенной Инструкцией о мерах по пре-
дупреждению и ликвидации заразных болезней пчел.
Сильно ослабленным пчелиным семьям лучше са-
харный сироп заменить инвертированным сиропом.
Для получения последнего берут 7,4 кг сахара, 1,85 л
воды и 0,75 кг свежего меда. Все перемешивают, поме-
щают на 7 дн. при температуре 35°C, периодически
размешивают. Препараты добавляют, как и в сахарный
сироп.
Сахаромолочно-дрожжевую пасту готовят следую-
щим образом. Берут 180 мл молока, помещают на сла-
бый огонь и в него высыпают 1 кг сахарного песка, пе-
ремешивают до растворения. В ступке или чашке рас-
тирают 100 г дрожжей с 1—2 столовыми ложками са-
харного песка и выливают в растворенный в молоке
сахар, доводят до кипения и охлаждают до температу-
ры 38—40 °C при периодическом помешивании. Препа-
рат растворяют в 20 мл молока и выливают в ранее
приготовленную смесь. Тщательно перемешивают и раз-
дают пчелиным семьям в полиэтиленовых пакетах по
150 г на рамку с пчелами.
Для приготовления лечебного сахаромедового теста
берут необходимое количество препарата, тщательно пе-
ремешивают с 4 кг сахарной пудры, добавляют 1 кг
подогретого до температуры 50°С меда и 50 мл теплой
кипяченой воды. Тщательно все перемешивают. Канди
дают однократно из расчета 100—150 г на одну рамку
с пчелами. Его кладут на металлические сеточки (с ячей-
ками 3X3 мм), помещают на верхние бруски рамок и
сверху прикрывают полиэтиленовой пленкой или про-
вощенной бумагой.
Использование препаратов для лечения пчелосемей в
виде пасты и канди имеет перед лечебным сиропом ряд
преимуществ. Они не вызывают усиления лета пчел и
их потери весной. Исключается потребность в кормуш-
ках, переохлаждение гнезда и попадание лекарствен-
ных веществ в мед, так как пчелы тестообразные кор-
ма в ячейки не переносят.
Приготовление дезинфицирующих рас-
творов. Наиболее часто в пчеловодстве для дезин-
фекции применяют щелочи, так как они растворяют
экскременты и способствуют удалению воска и пропо-
лиса. Растворы щелочей используют в горячем виде.
118
Натрия гидроокись (каустическая сода) хорошо рас-
творяют в воде и применяют в различной концентра-
ции. Для приготовления 3%-ного раствора берут три
весовые части препарата и растворяют в 97 частях во-
ды. После дезинфекции все предметы тщательно про-
мывают водой и высушивают.
Гашеная известь представляет собой белый пушис-
тый порошок, который получают из негашеной извести
(обожженный при высокой температуре известковый
камень или мел) путем смешивания с равным коли-
чеством воды. Из гашеной извести готовят 10%-ную
или 20%-ную взвесь, которой белят зимовники, сото-
хранилиша и другие объекты.
Кальцинированную соду (углекислый натрий) ис-
пользуют для дезинфекции пчеловодного инвентаря и
спецодежды. Растворы применяют температурой 80—
90°С. Для приготовления 10%-ного раствора кальци-
нированной соды с содержанием в ней 90 % углекисло-
го натрия необходимо взять следующее количество
соды: 100 : 90 = Х : 10, отсюда
Следовательно, для получения 10%-ного раствора
кальцинированной соды необходимо взять 11,1 г соды
и 88,9 мл воды.
Демп (дезинфицирующе-моющий порошок) не име-
ет запаха, не изменяется при хранении, хорошо раство-
ряется в воде. Используют его для дезинфекции ульев,
рамок, медогонок и другого пчеловодного инвентаря.
Зольный щелок получают путем кипячения воды с
золой в течение 2 ч. Для приготовления 1 % едких ще-
лочей берут 3 кг древесной золы и кипятят в 10 л во-
ды. Споровую микрофлору он не обеззараживает.
Формальдегид—бесцветный газ с характерным за-
пахом и легко растворяющийся в воде. В практике для
дезинфекции применяют формалин, который содержит
35—40 % формальдегида. На холоде формалин сгуща-
ется с образованием белого осадка, поэтому его надо
хранить при комнатной температуре в емкостях, непро-
пускающих свет. Раствор для дезинфекции готовят из
формалина, поэтому в нем определяют количество фор-
мальдегида, а затем разбавляют водой до нужной кон-
центрации..
119
Процентное содержание формальдегида в формали-
не определяют так: к 5 мл формалина добавляют
95 мл дистиллированной воды (разведение в 20 раз).
В коническую колбу вливают 30 мл нормального рас-
твора натрия гидроокиси (едкого натра), 5 мл приго-
товленного раствора формалина и 100 мл децинормаль-
ного раствора йода. Йод приливают из бюретки мед-
ленно, небольшими порциями, постоянно помешивая
содержимое колбы круговыми движениями. Прибавив
необходимое количество йода, колбу плотно закрывают
крышкой и ставят в теплое темное место на 30 мин,
после чего добавляют 40 мл нормального раствора со-
ляной кислоты. Жидкость при этом окрашивается в бу-
рый цвет. Смесь титруют децинормальным раствором
гипосульфита из бюретки до появления слабо-желтого
цвета. После этого в качестве индикатора добавляют
1 мл 1 %-ного раствора крахмала. Окрасившуюся в си-
ний цвет жидкость титруют до полного обесцвечивания.
Количество формальдегида в формалине определяют
по формуле
Х= (100-/7)0,0015-20-20,
где X — процентное содержание формальдегида в формалине; 100-
количество раствора йода, мл; П — количество гипосульфита, по-
шедшего на титрование, мл; 0,0015 — грамм-эквивалент формальде-
гида; 20 — разведение формалина; 20 — множитель для выраже-
ния в процентах (для титрования брали 5 мл, т. е. 1/20 от 100).
Пример На титрование израсходовано 35 мл гипосульфита.
А'= (100—35)0,0015-20-20 = 39 %.
Для приготовления 100 л 3%-ного раствора фор-
мальдегида проводим расчет: 1 л 3%-ного раствора со-
держит 30 г, а 100 л — 3000 г формальдегида. Разде-
лив 3000 на 390, получим 7,69 л формалина, необходи-
мого для приготовления 100 л 3%-ного раствора.
Чтобы приготовить 100 л щелочного формальдеги-
да, содержащего 5 % формальдегида и 5 % натрия гид-
роокиси, необходимо 5 кг натрия гидроокиси раство-
рить в 50 л воды. Для получения раствора, содержаще-
го 5 % формальдегида, берут следующее количество
формалина:
100: 39 = Х : 5,
В приготовленный раствор щелочи добавляют 12,8л
формалина и воду до 100 л.
120
Пароформ (сухой формалин) содержит не менее
95 % формальдегида. Для приготовления 5 %-ного рас-
твора берут 5 частей пароформа и 95 частей подогретой
до температуры 50—60°C воды (в холодной воде пре-
парат растворяется плохо).
Перекись водорода представляет собой чистую стек-
ловидную жидкость синеватого цвета. В присутствии
ферментов каталазы и пероксидазы при соприкоснове-
нии с органическими веществами разлагается с выде-
лением кислорода, который обладает высокой дезин-
фицирующей способностью. Добавление кислот инак-
тивирует каталазу, и перекись водорода разлагается с
выделением атмосферного кислорода, проявляя сильное
бактерицидное и спороцидное действие.
В практике перекись водорода применяют в виде
пергидроля — это 30%-ный раствор перекиси водорода.
Количество перекиси водорода в пергидроле опреде-
ляют следующим образом: 1 г пергидроля вносят в
мерную колбу и до отметки 25 добавляют дистиллиро-
ванную воду. В другую колбу к 2,5 мл полученного рас-
твора добавляют 5 мл серной кислоты в разведении 1 :5
и 10 мл 2%-ного раствора йодистого калия. Выделив-
шийся йод титруют децинормальным раствором гипо-
сульфита натрия до полного обесцвечивания. Добав-
ляют 1—2 капли 1%-ного раствора крахмала. Трижды
титруют, определяя среднее количество децинормаль-
ного раствора (в мл), пошедшего на титрование. Про-
цент перекиси водорода в пергидроле определяют по
формуле
В /<-0,0017 -100
0,1 навески
где В — количество децинормального раствора гипосульфита, по-
шедшего на титрование, мл; /(—коэффициент поправки, равный
1,02; 0,0017 — количество (г) перекиси водорода, соответствующее
1 мл децинормального раствора гипосульфита натрия.
Приготовить 100 л подкисленного раствора перекиси
водорода, состоящего из 10 % перекиси водорода и 3 %
уксусной кислоты. Пергидроль содержит 30 % перекиси
водорода. Необходимое количество пергидроля опреде-
ляют по пропорции 100:30=Х: 10, где 10 — требуемая
концентрация перекиси водорода;’ 100 — общее коли-
чество раствора; 30—процентное содержание перекиси
водорода в пергидроле; Х = 33,3 л. Для приготовления
121
раствора берут 33,3 л пергидроля, добавляют к нему
3 л уксусной кислоты и воды до 100 л, т. е. 63,7 л.
Хлорная известь представляет собой сухой комко-
ватый белый порошок с запахом хлора. Дезинфици-
рующая активность ее тесно связана с количеством на-
ходящегося. в ней хлора. В практике применяют хлор-
ную известь с содержанием не менее 25 % активного
хлора. В пчеловодстве используют взвесь, состоящую
из 20 г хлорной извести и 95 л воды, для дезинфекции
зимовников, сотохранилищ и других помещений.
Для обеззараживания почвы на пасеках, неблаго-
получных по инфекционным болезням, используют из-
весть с содержанием 25 % активного хлора. Ее приме-
няют из расчета ] часть извести на 3 части почвы. Поч-
ву перекапывают на глубину 20 см и смачивают водой.
Во время работы с хлорной известью пользуются про-
тивогазом. Хранят известь в хорошо закрытой таре, в
сухом помещении, не допуская воздействия солнечных
лучей. Для определения содержания активного хлора
пробу посылают в ветеринарную лабораторию.
Хлорамин'—белый кристаллический порошок со
слабым запахом хлора. В нем содержится 26—27 %
активного хлора. Растворы хлорамина применяют по-
догретыми до температуры 50—60°C. Используют пре-
парат для дезинфекции ульев, рамок и другого пчело-
водного инвентаря.
В пчеловодстве для дезинфекции ульев и сотов при-
меняют газы — окись этилена и бромистый метил. Чаще
используют смесь этих газов. Дезинфекцию проводят
только специально подготовленные ветработники.
Для работы с дезинфицирующими средствами ис-
пользуют гидропульты, садовые и сельскохозяйственные
опрыскиватели. В специализированных пчелохозяйствах
используют машины ЛСД-2, ДУК, ОППК (огневая па-
ровоздушная пароформалиновая камера).
Профилактические и оздоровительные
мероприятия на пасеке. Основой профилакти-
ки инфекционных болезней пчел на пасеке являются
охрана от заноса возбудителей заразных болезней, пос-
тоянный ветеринарный контроль за состоянием пчелиных
семей и продуктов пчеловодства, регулярные ветери-
нарно-санитарные обработки пчел, ульев и пчеловодно-
го инвентаря В случае появления болезни или гибели
пчелиных семей пчеловоды обязаны немедленно сооб-
122
щить об этом ветеринарному специалисту, обслужи-
вающему хозяйство, и зоотехнику по пчеловодству.
Ветеринарный специалист вместе с пчеловодом
осматривает все пчелиные семьи пасеки, выявляет
больные семьи и причину заболевания, ставит диагноз,
определяет источник, пути заноса, степень распростра-
нения инфекции и принимает соответствующие меры.
Для уточнения диагноза в ветеринарную лабораторию
отправляют патологический материал.
При выявлении заразной болезни пасеку объявляют
неблагополучной по этой болезни. Владельцы пасеки,
специалисты и местные органы власти обеспечивают
немедленную организацию и осуществление мероприя-
тий, направленных на скорейшую ликвидацию болезни
пчел.
При заболевании американским и европейским
гнильцами, парагнильцом, сальмонеллезом, гафниозом,
колибактериозом, септицемией, хроническим параличом
и мешотчатым расплодом на пасеке и территории в ра-
диусе 5—7 км по представлению главного ветеринар-
ного врача района и решением райисполкома устанав-
ливают карантин. Немедленно извещают владельцев
всех пасек, расположенных в данном районе, а также
главных ветеринарных врачей соседних районов и ор-
ганизуют обследование этих пасек.
По условиям карантина запрещают вывоз в другие
хозяйства пчелиных семей и продуктов пчеловодства;
кочевку неблагополучной пасеки; доступ на территорию
пасеки посторонних лиц. В отдельных случаях кочевку
разрешают на специально отведенные места, удаленные
от благополучных пасек на расстояние не менее 5—
7 км, с соблюдением мер, предотвращающих вылет пчел
при транспортировке.
На неблагополучной пасеке проводят следующие
мероприятия; дезинфицируют предлетковые площадки,
ульи, рамки, соты, инвентарь, спецодежду в соответст-
вии с Инструкцией по дезинфекции на пасеках; соби-
рают со дна ульев и предлетковых площадок погибших
пчел, выброшенный расплод и сжигают их; не допус-
кают роения, содержания слабых и безматочных семей.
При появлении в населенном пункте случаев забо-
левания пчел американским или европейским гниль-
цом, мешотчатым расплодом и с целью недопущения их
дальнейшего распространения райисполком (гориспол-
123
ком) по предложению главного ветеринарного врача
района может принять решение о немедленном уничто-
жении больных пчелиных семей. Их закуривают сер-
нистым газом или формальдегидом под непосредствен-
ным контролем ветеринарного специалиста с последую-
щей дезинфекцией ульев, соторамок, пчеловодного ин-
вентаря, помещений и территории пасеки.
На пасеке готовят запасные ульи, рамки, кормуш-
ки, вставные доски, потолочины и подушки. Намечают
пчелиные семьи, в которых будут выводить пчелиных
маток для замены. Оборудуют помещение для хране-
ния от больных семей ульев, сотов, меда и других ма-
териалов, а также перетопки сотов, откачки меда из
сотов, предназначенных для перетопки, и т. д. Бетони-
руют площадку и роют сливную яму, над которыми де-
лают крышу и оборудуют сеткой стены, чтобы исклю-
чить доступ пчел. Готовят отдельное помещение, в кото-
ром хранят незараженные и продезинфицированные
ульи, инвентарь и другие материалы. Необходимо пре-
дусмотреть место для наващивания рамок и приготов-
ления лечебного сиропа. Завозят необходимые дезсред-
ства, лекарственные препараты и обеспечивают техни-
кой для дезинфекции.
При гнильцовых болезнях, а также аскосферозе луч-
ше провести перегон пчелиных семей в продезинфици-
рованные ульи на обеззараженные соты или листы ис-
кусственной вощины. Маток лучше заменить на моло-
дых, полученных в здоровых семьях.
Для правильного подбора лечебных препаратов в
ветеринарной лаборатории определяют чувствительность
выделенных штаммов возбудителей болезни к соответ-
ствующим антибиотикам и сульфаниламидным препа-
ратам. Готовят лечебные корма, которые раздают пче-
линым семьям.
Хорошие результаты дает размножение семей нале-
том на матку с изъятием рамок с расплодом и пчела-
ми, помещение его в другие ульи или корпуса для ин-
кубирования. После выхода расплода и дачи лечебных
кормов пчел можно объединить с основной семьей.
После оздоровления пасеки и перед снятием каран-
тина проводят тщательную заключительную дезинфек-
цию.
Контрольные вопросы
1. Какие болезни пчел вызываются бактериями?
2. Как часто встречаются вирусные болезни?
3. Какие грибковые болезни наносят большой ущерб пчеловод-
ству?
4. Как выявить больные пчелиные семьи на пасеке?
5. Какие виды лечебных кормов используются в пчеловодстве?
6. Как приготовить дезинфицирующие растворы?
7. Какие оздоровительные мероприятия необходимо проводить
на пасеке?
ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ
Инвазионные (паразитарные) болезни медоносной
пчелы вызывают возбудители, принадлежащие к царст-
ву животных. Среди них выделяют одно- и многокле-
точные организмы. К первым относят простейших (Pro-
tozoa), которые развиваются внутри или на поверхнос-
ти клеток внутренних органов. У медоносных пчел об-
наружены простейшие следующих групп: амебы (Lobo-
sea) — класс простейших надкласса корненожек в под-
типе саркодовых — форма тела неопределенная, меняю-
щаяся, передвигаются с помощью псевдоподий, иногда
образуют жгуты; одно-, реже многоядерные, протоплаз-
ма делится на экто- и эндоплазму, вакуоли часто от-
сутствуют, сохраняются в виде округлых цист. Размно-
жа.ются делением надвое, в цистах — ча%то множест-
венным делением. Большинство видов свободноживу-
щие, некоторые являются паразитами различных жи-
вотных, в том числе насекомых. У медоносных пчел из-
вестен один вид.
Жгутиковые (Mastigophora) — подтип простей-
ших типа саркомастигофор, тело обычно удлиненное,
покрыто эластичной оболочкой (пелликулой), от перед-
него конца отходят 1—2, реже — больше жгутиков. По-
следние прикрепляются к базальному тельцу (кинето-
пласту) внутри протоплазмы клетки. Как правило,
имеют одно ядро. Редко образуют псевдоподии. Прото-
плазма разделяется на тонкую прозрачную эктоплазму
и зернистую эндоплазму. Размножаются чаще бинар-
ным делением, делящиеся особи часто не расходятся,
образуют колонии. Известно свыше 7000 видов, неко-
торые являются паразитами кишечного тракта насеко-
мых. У медоносных пчел известны 2 вида паразитов
этой группы.
125
Грегарины (Gregarinia)—форма тела обычно
удлинена, разделена на 2—3 участка (эпи-, прото- и
дейтомериты) с ядром, расположенным внутри дейто-
мерита. На эпимерите находят зубчики, крючки. Тело
покрыто плотной ребристой кутикулой, в эктоплазме
имеет продольный и поперечный слои мионем и тонкие
скелетные нити. Размножаются половым путем или че-
редованием полового и бесполого размножения. Во
внешней среде сохраняются в виде ооцист. Известно
около 1000 видов, являются паразитами кишечника и
полости тела различных беспозвоночных. У медонос-
ных пчел паразитируют 4 вида этих простейших.
Микроспоридии (Microspora)—тип простей-
ших. Внутриклеточные паразиты всех групп животных
наиболее широко распространены у членистоногих. Раз-
множаются делением надвое и шизогонией (бесполое
размножение), процессу спорогонии (образованиюспор)
предшествует половое размножение —кариогамия (слия-
ние ядер). Споры мелкие, различной формы, содержат
одно-двухъядерную спороплазму и спирально свернутую
полярную трубку, через которую паразит проникает в
клетку хозяина. Известно около 900 видов, в том чис-
ле, вероятно, несколько видов являются паразитами
медоносной пчелы.
Возбудители четырех перечисленных групп простей-
ших вызывакм- у пчел заболевание — протозоозы (аме-
биоз, критидиоз, грегариноз, нозематоз). Роль других
простейших, обнаруживаемых у насекомых (кокцидии,
гаплоспоридии, инфузории), в патологии пчел остается
неизвестной или сомнительной. Для выявления возбу-
дителей протозоозов необходимо лабораторное иссле-
дование. Для этого пчел вскрывают, выделяют отдель-
ные органы (или отделяют брюшко), которые тщатель-
но растирают в ступке с водой. Каплю полученной сус-
пензии помещают на предметное стекло, накрывают
покровным и рассматривают под малым и средним уве-
личением микроскопа. При необходимости препараты
после сушки фиксируют (спирт-эфир 1:1 в течение
15—20 мин), окрашивают (по методу Романовского
краской Гимза в течение 40—60 мин) и исследуют над
иммерсионной системой микроскопа.
Для детального изучения этих паразитов используют
также специальные краски, электронную микроскопию,
серологические методы. Возбудителей заболеваний
126
пчел необходимо отличать (дифференцировать) от слу-
чайно попавших с поверхности тела или находящихся
в содержимом кишечника других видов простейших, зе-
рен пыльцы, волосков тела пчел и других артефактов.
Многоклеточные животные (Metazoa) па-
разитируют в полостях или на поверхности тела пчел.
К числу этих паразитов принадлежат личинки круглых
червей ' (Nemathelmintes), имеющие несегментирован-
ное нитевидное или веретеновидное тело, и различные
членистоногие. К последним относят клещей (Acarina),
личинок и взрослых насекомых (Insecta). Тело клещей
обычно более или менее слитное, взрослые особи (има-
го) имеют 4 (редко 2) пары конечностей, у личинок
3 пары. Тело имаго насекомых сегментировано, разде-
лено на голову, грудь и брюшко; к груди прикреплены
3 пары конечностей; личинки их червеобразны, сегмен-
тированы, имеют или лишены ног.
В зависимости от природы этих возбудителей забо-
левания, вызываемые ими, рассматриваются как гель-
минтозы (мермитидоз), арахнозы (акарапидоз, экзо-
акарапидоз, пиематоз, варрооз, тропилелапсоз, мелит-
тифиоз), энтомозы (браулез, мелеоз, мутиллоз, мелит-
тобиоз). Среди последних выделяют также особую
группу болезней — миазы, связанные с развитием ли-
чинок насекомых внутри организма взрослой пчелы
(сенотаиниоз, физоцефалез). Возбудителей этих болез-
ней можно обнаружить при микроскопии содержимого
полости тела пчелы и отдельных органов (гельминто-
зы), трахей (акарапидоз), смывов с тела (экзоакара-
пидоз, пиематоз) или тщательном осмотре поверхности
тела личинок, куколок, взрослых пчел (пиематоз, вар-
рооз, тропилелапсоз, мелиттифиоз, браулез, мелеоз, му-
тиллоз, мелиттобиоз), пользуясь лупой, или невоору-
женным глазом.
При подозрении на миазы вскрывают и осматривают
содержимое полостей тела пчелы на наличие личинок
насекомых. Во всех случаях для уточнения видовой при-
надлежности и дифференциации выделенных парази-
тов в дальнейшем их просматривают под слабым уве-
личением микроскопа.
Диагноз на заболевание ставят только на основании
эпизоотологических данных, признаков болезни и вы-
деленных возбудителей. При инвазионных болезнях
пчел важно учитывать степень поражения пчел в семье
127
тем или иным возбудителем, исключить поражения ин-
фекционной природы и нарушения, вызванные усло-
виями содержания, кормления и разведения пчел.
Меры борьбы с инвазионными болезнями состоят
из комплекса профилактических и лечебных мероприя-
тий. Профилактика складывается из соблюдения пра-
вил кормления, содержания и разведения пчел, сани-
тарных мер, мероприятий, направленных на уничтоже-
ние паразитов (дезинвазии) во внешней среде пасеки,
с тем чтобы предупредить занос возбудителей в гнездо
пчел с сотами, инвентарем и оборудованием. Лечение
направлено на полное или частичное снижение до эко-
номически безопасного уровня численности паразита в
гнезде пчел и быстрейшее восстановление их нормаль-
ной жизнедеятельности.
Нозематоз. Болезнь взрослых рабочих пчел, маток
и трутней, вызываемая микроспоридией Nosema apis.
Возбудитель — внутриклеточный паразит эпи-
телиальных клеток средней кишки пчел. Споры ноземы
овальные, сильно преломляют свет. Размерами (4,3—
5,5) X (2,2—3,5) мкм. Оболочка гладкая или слегка вол-
нистая, трехслойная, толщиной 0,2—0,3 мкм. У одного
полюса споры она тоньше, образует микропиле 0,8 мкм.
Внутри споры различают зонтикоподобный пластинча-
тый поляропласт; полярную трубку длиной 250—
280 мкм, свернутую в 33—34 витка, уложенную в два
слоя; спороплазму (зародыш) с двумя ядрами и зад-
нюю вакуоль (рис. 16).
5
16. Споры ноземы:
а — общий вид; б —- продольный срез споры ноземы (стрелками ука-
заны полярные трубки).
128
Из ротовой полости пче-
лы споры через 30 мин по-
падают в среднюю кишку,
где под действием пищева-
рительных соков поляро-
пласт увеличивается в раз-
мерах, оказывает давление
на стенки и’внутреннее со-
держимое споры. Прикреп-
ленная к переднему полюсу
споры полярная трубка вы-
ворачивается и с силой, спо-
собной пробить оболочку не-
скольких клеток, выбрасы-
вается, увлекая за собой со-
держимое (спороплазму) споры. Процесс выбрасывания
полярной трубки и инокуляция через ее просвет в клет-
ки хозяина зародыша, которого после выхода из споры
называют планонтом (амебулой), происходят мгновен-
но, в доли секунды.
В протоплазме, реже в ядре клетки, паразит про-
ходит сложный цикл развития, включающий стадии
мерогонии и спорогонии (рис. 17). Покрытый одно-
слойной мембраной планонт увеличивается в размерах
и превращается в меронт (шизонт). Происходит деле-
ние ядер' внутри клетки паразита, образуется много-
ядерный плазмодии, который после разделения цито-
плазмы распадается на двуядерные клетки. Этот про-
цесс повторяется дважды (шизогония I и II порядков).
Меронты первого и второго поколений различаются
размерами и интенсивностью окраски ядер и цитоплаз-
мы. После завершения мерогонии у паразитов форми-
руются вторая оболочка и клетка носит название спо-
ронта. Каждое ядро споронта делится надвое, затем
происходит разделение цитоплазмы клетки, в резуль-
тате чего формируются два споробласта, преобразующих-
ся в споры. Полный цикл развития паразит заканчива-
ет через 48—72 ч. Заражение пчел возможно при тем-
пературе от 10 до 37°С (оптимум развития — 31 °C).
Жизнеспособность спор во внешней среде зависит
от многих факторов. В трупах пчел в лабораторных ус-
ловиях они сохранялись от 4 мес до 6 лет, в почве пе-
ред ульями — от 44 дн. до 2 лет, на сотах и в меде —
1,5—2 года, в воде при температуре 20°С — 90—ИЗдн.
9—381
129
При нагревании до температуры 57—65°C споры поги-
бают через 10—15 мин, в текучем паре—1—5 мин, в
4%-ном формалине при температуре 25°C — в течение
часа; в 2%-ном растворе натрия гидроокиси (едкого
натра) при температуре 37°С—15 мин; 80%-ной ук-
сусной кислоте (200 мл на улей) при 16°С — 5—7 дн.;
в парах хлоруксусной кислоты (1 мл/м3) при 18 °C —
2 ч, в 10%-ной хлорной извести— 10—12 ч; ультрафио-
летовые лучи в зависимости от интенсивности инакти-
вируют сухие споры через 5—22 ч, споры в воде—че-
рез 37—51 ч.
Эпизоотологические данные. Болезнь мо-
жет возникать во всех зонах разведения медоносных и
среднеиндийских пчел. Чаще регистрируется в север-
ных и центральных районах, реже — на юге. Заболева-
ние отмечают весной, реже — осенью. Источник зара-
жения — больные пчелы или матка. Споры паразита
выделяются с экскрементами, которые попадают на
поверхность тела пчел, соты с пергой и медом. Семьи
пасеки заражаются в результате перестановки старых
непродезинфицированных сотов, сотов с кормом или
расплодом из больных семей в здоровые, подсадки в
семьи больных нозематозом маток, блуждании пчел,
пчелином воровстве, с различными насекомыми, имев-
шими контакт с инвазированным материалом.
Предрасполагающими факторами заболевания яв-
ляются продолжительная зимовка, низкое качество
зимнего корма (наличие пади, субтоксических доз ядо-
химикатов), высокая влажность и беспокойство пчел в
зимовнике, длительная неблагоприятная для лета пчел
погода, ослабление семей пчел в результате отравле-
ний, заболеваний, вызванных возбудителями иной при-
роды; нарушения в кормлении (недостаток белка в
прошедший сезон года), скармливание большого ко-
личества сахара в зимовку; комплектование пасеки в
северных районах страны южными породами (кавказ-
ская, итальянская) пчел.
Патогенез. Паразит проникает в наименее за-
щищенные эпителиальные клетки задней части средней
кишки, где отслаивается перитрофическая мембрана.
Позже поражаются различные участки средней кишки
(рис. 18). С развитием нозематозного процесса пора-
женные клетки отторгаются в просвет кишечника, ско-
рость отторжения значительно превосходит восстанов-
130
18. Гистологический срез участка средней кишки, поражен-
ной ноземой (оригинал).
ление эпителия. В результате нарушения всасывания
питательных веществ быстро расходуются белки орга-
низма. Нарушается углеводный, жировой, минераль-
ный, водный обмены. Изменение обмена веществ у
больных пчел приводит к ускоренному старению ор-
ганизма. Гипофарингиальные железы, ответственные
за выработку личиночного корма и инвертирование
сахара, у пораженных пчел быстро атрофируются. Де-
генеративным изменениям подвергается яичник маток,
в результате, вероятно, снижается выделение маточно-
го феромона, ответственного за единство семьи.
В связи с недостаточностью белка больные нозема-
тозом пчелы больше потребляют пыльцы, которая ма-
ло переваривается и усваивается. В кишечнике созда-
ются условия, благоприятные для развития микрофло-
ры, все это приводит к отравлению организма продук-
тами распада.
Клинические признаки. Различают две фор-
мы проявления нозематоза: типичную (явную) и скры-
тую (латентную). Первая отмечается в зонах с уме-
ренным и холодным климатом, вторая — во всех зонах
9*
.131
земного шара, характерна для субтропиков и тропиков.
Явную форму наблюдают в конце зимы и весной. При
зимовке пчелы беспокоятся, издают непрерывный шум,
вылетают из улья. Потребляют больше корма. Из улья
исходит неприятный запах, стенки и соты покрыты пят-
нами фекалий. Около летков, на дне улья большое ко-
личество погибших пчел. Весенний облет недружный,
пчелы ползают около улья. Брюшко их мягкое, растя-
нутое, при вскрытии средняя кишка увеличена, белого
цвета, поперечная исчерченность исчезает; задняя киш-
ка увеличена или нормальная. Пчелы вялые, мало ре-
агируют на внешние раздражения. Их летная деятель-
ность, медосбор и опылительная активность снижаются
на 50 % и более.
При поражении 60 % пчел в семье отсутствует ме-
досбор. Развитие семей плохое, площадь расплода со-
кращается. Матка прекращает откладку яиц, часто про-
исходит смена маток. Выращенные в больной семье
матки неполноценны. Больные трутни теряют способ-
ность к осеменению. Часто семьи пчел погибают в
конце зимы и весной. При скрытой форме болезни от-
мечается слабое проявление внешних признаков забо-
левания. Нозематоз часто протекает совместно с дру-
гими болезнями.
Диагноз. Предположение на нозематоз основы-
вается на наличии пятен жидких фекалий на стенках
улья и сотах, массовой гибели пчел, маток в конце зи-
мы и весной, плохом развитии семей пчел в активный
период. Для окончательного диагноза в лабораторию
высылают не менее 50 погибших пчел (при гибели
семьи зимой пчел берут из среднего слоя подмора со
дна улья).
Дифференциальный диагноз. Нозематоз
необходимо отличать от сальмонеллеза, колибактерио-
за, гафниоза, падевого токсикоза, незаразного поноса
пчел.
Профилактика. Для предупреждения ноземато-
за необходимо, чтобы семьи пчел в период своей актив-
ной деятельности постоянно имели в достаточном коли-
честве белковый корм. В зимовку оставляют сильные
семьи с большим количеством молодых пчел на добро-
качественном цветочном меде. Слабые семьи пчел, не
успевшие развиться летом, сажают в один улей по 2—
3 семьи и хорошо утепляют. Для зимовки используют
132
сухие, хорошо вентилируемые помещения с температу-
рой не выше 2 °C и относительной влажностью 80%.
Часть зимних кормовых запасов заменяют сахаром (5—
8 кг), при обнаружении пади в меде его откачивают
полностью и семьям дают сахарный сироп, который
скармливают в теплое время до наступления холодов
с учетом последующего выхода молодых пчел, не
участвовавших в переработке сахара.
Основной способ профилактики нозематоза — систе-
матическая ежегодная дезинфекция сотов. Соты дезин-
фицируют в парах уксусной кислоты (200 г 80%-ной
ледяной уксусной кислоты на двенадцатирамочный улей
в течение 5 сут при температуре 16—18 °C или 7 сут
при более низкой температуре). Можно хранить пус-
тые соты и соты с кормом в парах 33%-ной уксусной
кислоты (эссенции) в течение всей зимы. После обра-
ботки соты проветривают до исчезновения запаха в те-
чение 1—2 сут.
Меры борьбы. В случае заболевания зимой
проводят раннюю выставку семей пчел из зимовника
для очистительного облета. Из гнезд удаляют соты,за-
грязненные фекалиями. Пчел пересаживают в чистые
ульи. Из старых гнезд переносят только соты с распло-
дом, предварительно очистив рамки. Семьи утепляют и
им скармливают сахарный сироп.
Ульи и хорошо отстроенные соты из семей пчел
после механической очистки дерева подвергают дезин-
фекции путем нанесения из гидропульта 4%-ного рас-
твора формалина. Увлажненные соты ставят в улей,
который плотно закрывают, щели замазывают, держат
в течение 4 ч при температуре 20°C. Для дезинфекции
также используют пары формалина. В чайник нали-
вают 300 мл воды и 100 мл формалина и нагревают
до кипения. Пар по резиновой трубке поступает в улей
с находившимися в нем сотами, температура внутри
улья должна быть 50—55°C. Дезинфицируют не менее
30 мин. При этом методе следует предохранять соты
от прямого попадания пара. Запах формалина удаляют
промывкой водой с последующим опрыскиванием 1%-
ным раствором нашатырного спирта. Для дезинфекции
стенок и дна улья используют также прижигание их
огнем паяльной лампы. Одежду, лицевые сетки, хол-
стики с ульев, мелкий инвентарь кипятят 20—30 мин.
Инвентарь и оборудование (кроме сотов с пергой
133
и медом) дезинфицируют также газами. Споры теряют
жизнеспособность при обработке окисью этилена
(1000 мг/л, экспозиция 48 ч при температуре 43°C) или
смесью окиси этилена и бромистого метила (ОКБЭМ)
в соотношении 1:25 (1500—2000 г/м3, экспозиция 72 ч,
температура 10—28°C и относительная влажность
36—89%). Обеззараживание газами проводят под
пленкой ПК-4 вне помещений на специально оборудо-
ванной площадке. Необходимы тщательная герметиза-
ция и соблюдение специальных правил работы с этими
газами.
Для обеззараживания соты выдерживают также
24 ч при температуре 48,4 °C или 4—8 сут при 42—45 °C
(относительная влажность 40—60 %).
Лечение. Из лечебных средств при нозематозе
применяют фумагиллин. Содержимое флакона раство-
ряют в небольшом количестве теплой воды и затем при-
ливают при помешивании к 25 л сахарного сиропа.
Теплый лечебный сироп, приготовленный перед упот-
реблением, дают в чистых кормушках или сотах по
0,25 л на одну семью ежедневно в течение 21 дня. Все-
го на семью расходуют около 5 л такого сиропа. Пре-
парат можно также давать за 15—20 дн. до выставки
пчел из зимовника в смеси со специально приготовлен-
ной сахарной пастой (канди), которую кладут на рам-
ки улья над клубом. Препарат не стерилизует организм
пчелы от возбудителя, действует на паразита только
при наличии его в кишечном тракте хозяина. Устойчи-
вости ноземы к фумагиллину не установлено, сильно
пораженные (50 % и более пчел в семье) семьи труд-
нее поддаются лечению.
Амебиаз. Болезнь, характеризующаяся поражением
мальпигиевых сосудов..
Возбудитель — простейшие Malpighamoeba mel-
lificae. Сохраняются во внешней среде в виде шарооб-
разных цист (рис. 19) размером 5—8 мкм. Циста по-
крыта гладкой, трудно воспринимающей окраску обо-
лочкой. Цитоплазма разделена на экто- и эндоплазму,
при просмотре в микроскопе — двухконторная, имеет
ядро (1 мкм) с ядрышком крупного размера. При за-
глатывании цисты скапливаются в задней части сред-
ней кишки и после множественного дробления превра-
щаются в подвижные вегетативные формы с неболь-
шим жгутиком. Эти формы внедряются в просвет маль-
134
19. Цисты амебы.
пигиева сосуда, жгутик исчезает, движение клетки осу-
ществляется с помощью псевдоподий (небольшого раз-
мера со слегка согнутым заостренным концом). В этой
стадии происходит повторное деление надвое и вновь
возникают клетки со жгутиком. При неблагоприятных
факторах последние инцистируются. При температуре
23—32°C цикл развития паразита продолжается 21—
28 дн. Созревшие цисты продвигаются током жидкости
в просвет кишечника и выделяются с экскрементами
пчелы. В сухих пятнах фекалий на сотах цисты сохра-
няются не менее 5—6 мес.
Эпизоотологические данные. Заражение
происходит при заглатывании с кормом и водой цист
паразита. Источник возбудителя — больные пчелы.
К заражению восприимчивы взрослые рабочие пчелы и
матки при содержании их в нуклеусах, вероятно, трут-
ни. Болезнь регистрируют в апреле— мае. В перенес-
ших амебиаз семьях заболевание может повториться на
следующий год.
Патогенез. Расположившиеся на стенках маль-
пигиевых сосудов амебы проникают своими псевдопо-
135
днями в межклеточные пространства и. путем осмоса
резорбируют питательные вещества. Пораженные клет-
ки мальпигиевых сосудов атрофируются, теряют спо-
собность выводить продукты обмена (ураты). Накапли-
вание их в организме приводит к отравлению, сниже-
нию устойчивости. Скопления амеб могут вызывать ме-
ханическую закупорку мальпигиевых сосудов, приво-
дить к их разрыву.
Клинические признаки. Пчелы обычно поги-
бают вне улья во время полета, поэтому основным при-
знаком заболевания является постеленное уменьшение
пчел в семье. Иногда отмечают на пасеках ползающих
с увеличенным брюшком пчел, пятна фекалий на стен-
ках и сотах улья. У пораженных пчел мальпигиевы со-
суды стекловидные, увеличенные. Болезнь часто проте-
кает совместно с нозематозом, при двойной инвазии ги-
бель пчел возрастает.
Диагноз. Предварительный диагноз ставится на
основании эпизоотологических данных и признаков бо-
лезни. Для окончательного диагноза в лабораторию
высылают не менее 10—20 живых пчел с признаками
поражения или 50 их трупов. Проводят микроскопию
суспензии мальпигиевых сосудов (или брюшко трупов
пчел) в нативных препаратах на цисты амеб. Иногда
используют дополнительную окраску суспензий на пре-
парате.
Профилактика и меры борьбы такие же,
как при нозематозе.
Лечение. Специфические средства не разрабо-
таны.
Грегариноз. Болезнь взрослых пчел, вызванная па-
разитированием в кишечнике грегарин.
Возбудители — простейшие из подотряда Сер-
halina. Наиболее широко распространены представите-
ли рода Leydiana. Тело вытянутое, размером у взрос-
лых форм (споронтов) 120—160 мкм, разделено на пе-
редний отдел — протомерит и задний — дейтомерит, со-
держащий ядро (рис. 20). У молодых грегарин (трофо-
зоиты или цефалонты) на переднем конце протомерита
располагается третий членик — эпимерит.
Споронты созревают в гамонты, соединяются друг
с другом, образуя сизигий. Это образование покрыва-
ется плотной оболочкой (циста), внутри которой фор-
мируются гаметы одинаковой (изогамия) или разной
136
20. Грегарины:
1 — споронт; 2 — цефалонт с округлым эпимеритом; 3—цефалонт, прикрои
ленный к клетке хозяина; 4—маленький цефалонт с большим плотным =ri,r-.
меритом; 5 — цефалонт (слева внизу) и споронт; 6 — споронт и споры позе-
мы (слева внизу) (Хитчок, 1948 г.).
формы и величины (анизогамия). Затем гаметы слива-
ются и образуют зиготу, которая покрывается плотной
оболочкой, превращаясь в спору. Иногда внутри цисты
часть протоплазмы остается недифференцированной
(остаточное тело). Цисты часто имеют специальное об-
разование для выхода спор — спородукт.
13?
Для определения вида грегарин имеют значение
форма и размеры эпи-, прото- и дейтомерита трофо-
зоита, споронта, гамет, способ выхода спор из цисты
(через спородукт, путем разрыва стенки) и т. д. Цикл
развития грегарин в пчеле около месяца. Споры грега-
рин погибают при замораживании.
Эпизоотологические данные. Заражаются
пчелы при заглатывании спор паразита во время прие-
ма воды из источников, загрязненных фекалиями или
трупами погибших от грегариноза пчел. Споры выхо-
дят из цист обычно в воде. Заболевание регистрируется
в зонах тропиков и субтропиков в дождливый период.
В умеренном^ и холодном климатах практически не
встречается.
Патогенез. Заглоченные споры прорастают в
средней кишке, образовавшиеся трофозоиты прикрепля-
ются к клеткам эпителия средней кишки,- иногда про-
никают в гемоцель и прикрепляются с наружной сто-
роны мальпигиевых сосудов. Питаются путем осмоса,
усваивая углеводы. Количество паразитов в одной пче-
ле может быть от единичных экземпляров до 3000.
Клинические признаки. Продолжительность
жизни зараженных пчел сокращается, здоровые особи
не пускают и удаляют больных из улья. Средняя киш-
ка пораженных пчел бледная. Семьи резко слабеют,
иногда гибнут. Заболевание протекает отдельно или
совместно с нозематозом или амебиазом.
Диагноз. Ставят его на основании эпизоотологи-
ческих данных, признаков болезни и микроскопии сус-
пензии средней кишки пчел. Для диагностики высы-
лают 20—30 пчел из подозреваемой в заражении семьи
в ветеринарную лабораторию.
Профилактика, меры борьбы и лечение
такие же, как при нозематозе.
Критидиоз. Болезнь, вызываемая паразитированием
жгутиковых простейших в кишечнике пчел.
Возбудители — Crithidia (Leptomonas) apis, Сг.
mellificae. Подвижные стадии Cr. apis веретеновидной
формы, задний конец вытянут в виде ленты. Размер
паразита 3X9,5 мкм, ядро (0,7—1,4 мкм) сферическое,
расположено центрально. Толстый жгутик длиной около
16—20 мкм. Кинетопласт расположен на расстоянии
4 мкм от переднего конца тела. Паразитируют в тон-
кой кишке пчел.
138
Cr. mellificae обычно яйцевидной формы, задний ко-
нец заострен. Паразит размером 7,1X5,5 мкм. Ядро
расположено центрально или смещено к задней части
тела, впереди или сбоку него расположен кинетопласт.
Паразитов находят в области складок задней кишки,
реже—в конечном отрезке тонкой кишки.
Устойчивость лишенных жгутиков эллиптических
форм паразита (5—6 мкм), соответствующих стадии
цист, во внешней среде не изучена.
Эпизоотологические данные. Заражаются
пчелы при поедании корма, воды и очистке сотов, за-
грязненных возбудителем. Жгутиконосцев находят у
рабочих пчел, трутней и маток в весенне-летний период.
Патогенез. Патогенное значение жгутиконосцев
остается недостаточно выясненным. В местах их при-
крепления слущивается эпителий, микрофлора глубоко
проникает в ткани. В результате этого возможно раз-
витие септицемии.
Клинические признаки. Характеризуются
ослаблением или плохим развитием пораженной семьи
пчел. Иногда отмечают понос. При вскрытии поражен-
ных пчел на эпителии кишечника тонкой и начальном
отрезке толстой кишок можно видеть округлые желтые
или охряно-желтые наложения, представляющие розет-
коподобные скопления паразитов.
Диагноз. Наличие желтых и охряно-желтых на-
ложений в тонкой и толстой кишках дает возможность
предполагать наличие критидий. Окончательный диаг-
ноз устанавливают по микроскопии нативных и окра-
шенных по Романовскому—Гимза мазков. Необходимо
исключить другие заболевания.
Профилактика и меры борьбы не разра-
ботаны.
Лечение. Хороший результат получен при скарм-
ливании 1 л сахарного сиропа с растворенным в нем
0,5 г сульгина в течение 2 дн. Курс лечения повторяют
через 5—7 дн. 3 раза.
Мермитидоз. Болезнь взрослых пчел, вызываемая
нематодами.
Возбудители — личинки круглых червей рода
Mermis или Agamermis (рис. 21). Самки мермитид (род
Mermis) откладывают яйца на поверхности травянистых
растений. Плодовитость самок достигает до 14 000 яиц.
При заглатывании в кишечнике насекомых из яиц вы-
139
21. Инвазионные личинки мермитид.
ходит личинка длиной 0,74 мм и диаметром 0,034 мм.
Она активно проходит через стенку кишечника в по-
лость тела насекомого, где развивается. Продолжи-
тельность развития самцов паразита длится 4—6 нед,
самок — 8—10 нед. К этому времени они достигают
размеров соответственно 20—60 и 50—160 мм. Паразит
выходит наружу через хитиновый покров хозяина. Вы-
шедшие личинки проникают в почву и. здесь зимуют.
Весной следующего года они линяют, превращаются во
взрослых червей. После оплодотворения самки присту-
пают к откладке яиц. Интенсивно яйца откладываются
в дневное время в июне — июле. Дождливая погода
благоприятствует кладке яиц.
Самки червей рода Agamermis откладывают яйца на
почву. Вышедшие из яиц личинки активно вползают на
стебли растений и при контакте с насекомым прони-
кают через его хитиновые покровы в тело. До полово-
зрелого состояния внутри тела хозяина паразит раз-
вивается 1—1,5 мес у самцов и 2—2,5 мес у самок. Хо-
зяева мермитид—в основном прямокрылые насекомые,
цикл развития паразита в медоносной пчеле в боль-
шинстве случаев не завершается.
Яйца мермитид сохраняют жизнеспособность в те-
чение всего лета. Самки, не успевшие отложить яйца,
140
зимуют и приступают к дальнейшей яйцекладке в сле-
дующий сезон.
Эпизоотологические данные. Заражаются
пчелы чаще в июне — августе на растениях при сборе
нектара, пыльцы или воды (росы), не исключено ин-
вазирование пчел при очистке ульев. Матки, трутни,
расплод заражаются при передаче воды рабочими пче-
лами. Возможно активное внедрение личинок Agamer-
mis в улей. Поражению пчел благоприятствуют бли-
зость грунтовых вод, мелкие стоячие пруды, лужи, бо-
лота вблизи пасеки, теплое влажное лето, перерывы в
медосборе.
Клинические признаки. Поражения наблю-
даются у незначительного числа (около 1 %) пчел
семьи. Больные насекомые теряют способность полета,
ползают около летка. При выходе паразита из тела пче-
лы погибают.
Диагноз. Устанавливают его по наличию личи-
нок мермитид при вскрытии грудной или брюшной по-
лости пчел и трутней. Иногда обнаруживают парази-
тов в кишечнике внешне здоровых пчел. Для уточнения
диагноза 50—100 погибших пчел высылают в ветери-
нарную лабораторию. Паразитов следует отличать от
личинок волосатиков.
Профилактика. Для предупреждения пораже-
ния пчел мермитидами пасеки располагают в сухих
местах, оборудуют поилками с проточной водой, пчел
содержат в чистых сухих ульях; последние'размещают
на подставках высотой 30 см, периодически выкаши-
вают траву перед ульем.
Лечение не разработано.
Акараиидоз. Болезнь взрослых рабочих пчел, маток
и трутней, вызываемая паразитированием в их тра-
хейной системе клещей. Международным эпизоотиче-
ским бюро отнесен к карантинным болезням (спи-
сок В).
Возбудителе—клещ Acarapis woodi (рис. 22).
Самки размером (100—200) X (70—100) мкм, самцы —
(100—170) X (60—100) мкм. Тело овальное, сплюсну-
тое, беловатого цвета. У самки на последнем членике
задней пары ног по 2 короткие и 2 длинные щетинки,
на спинной стороне тела 5 щитков. Спинная сторона
тела самца состоит из 3 щитков, последний членик зад-
141
22. Самка Acarapis woodi
ней пары ног вооружен ко-
ротким шипом и длинной
щетинкой.
Клещ — типичный пара-
зит медоносной и среднеин-
дийской пчел, имеет колю-
ще-сосущий ротовой аппа-
рат и питается гемолимфой
хозяина. Женская дейто-
нимфа спаривается с сам-
цом в трахее. Оплодотво-
ренная дейтонимфа через
72 ч линяет, превращаясь
во взрослую самку, которая
тут же или через сутки при-
ступает к откладке яиц или
выходит из трахеи на на-
ружную поверхность тела
пчелы.
течение жизни откладывает
Одна самка клеща в
7—10 белых овальных яиц. Прикрепляются они к по-
верхности трахеи пчелы клеющим веществом. Через 3—
6 дн. оболочка яйца прорывается и из него появляется
передняя часть тела личинки. После питания, периода
покоя и линьки шестиногая личинка проходит стадию
нимфальной аподермы (протонимфы) и превращается
в подвижную восьминогую дейтонимфу, а затем во
взрослого клеща. Весь цикл развития продолжается у
самца 10—13 дн., у самки 11—16 дн. Клещи живут
до 40 дн. Количество самок бывает больше, чем
самцов.
Вышедшие на поверхность тела оплодотворенные
самки клеща передвигаются по краю волоска пчелы и
при контакте с другой пчелой переходят на последнюю.
По струе воздуха самка находит отверстие трахеи, про-
никает в нее и начинает откладывать яйца. Первона-
чально поражается первая пара грудных трахей, в
дальнейшем клещи расселяются в глубь ее, проникают
в брюшные и головные воздухоносные мешки. В одной
пчеле обнаруживают от единичных особей до 150 экз.
клещей. В период зимовки вышедшие из трахей самки
питаются у основания крыльев.
Вне пчелы клещи быстро погибают. В погибших пче-
лах сохраняются от 12 ч до 6 сут.
142
Эпизоотологические данные. Основной ис-
точник заражения — больные пчелы. Поражаются глав-
ным образом молодые рабочие пчелы и матки до 7—
10 дн., редко до 18 дн. Внутри семьи пчелы перезаража-
ются постепенно, до заболевания 50 % пчел гнезда про-
ходит 3—5 лет. Распространению возбудителя способст-
вуют бесконтрольная перевозка пораженных семей,
объединение слабых семей, подсадка зараженных маток,
пчелиное воровство, перелеты пчел. Паразит более ин-
тенсивно размножается у пчел пасек, расположенных в
низких сырых местах.
Патогенез. При болезни отмечают потерю гемо-
лимфы и белка организма, кислородное голодание тка-
ней пчелы вследствие нарушения состояния стенок тра-
хеи; увеличение микрофлоры в просвете пораженной
трахеи, возможна инокуляция некоторых возбудителей
в гемолимфу пчел. Не исключена также возможность
выделения клещом токсических веществ. В результате
этого сокращается срок жизни пораженных пчел, сни-
жается их устойчивость к заражению другими возбу-
дителями, возникают септические заболевания.
Клинические признаки. Течение болезни
хроническое. С момента заражения в течение нескольких
лет она протекает скрыто (часто ее трудно обнару-
жить). Явные признаки отмечают при поражении одной
трети, половины и более пчел в семье.
Основной симптом заболевания — ползающие пчелы,
неспособные к полету, которых особенно много можно
наблюдать весной в первый день выставки семей из зи-
мовника или летом после продолжительной нелетной
погоды. У ряда насекомых отмечают неправильное поло-
жение крыльев (раскрылица). Брюшко у больных пчел,
вышедших из зимовки, обычно увеличено. Трахеи в за-
висимости от длительности поражения имеют в начале
желтый, затем коричневый и, наконец, черный цвет. На
таких пасеках пчелы погибают зимой или весной.
Диагноз. Ставят его на основании обнаружения
акараписов в измененных трахеях пчел при их микрос-
копии. Клещей следует отличать от акараписов, парази-
тирующих на поверхности тела пчел, и акароидных
клещей, в массе встречающихся в гнездах пчел и иног-
да заходящих в трахеи трупов. Для лабораторного ис-
следования высылают не менее 50 пчел от каждых 3—5
семей с признаками поражения или свежих трупов пчел.
143
Профилактика. Не допускают завоза больных
акарапидозом семей в благополучную местность. В зо-
нах, где ранее наблюдали это заболевание, ежегодно
весной отбирают пчел из нескольких семей для исследо-
вания па акарапидоз. Пасеки располагают в сухих воз-
вышенных местах.
Меры борьбы. При обнаружении хотя бы одной
семьи на всю пасеку и окружающие хозяйства в зоне
5 км устанавливают карантин, который снимают после
полной ликвидации болезни. Запрещаются ввоз и вывоз
пчел из неблагополучной местности. В зависимости от
эпизоотической обстановки больные семьи могут быть
уничтожены путем закуривания сернистым газом.
Лечение. Применяют фольбекс или фольбекс ВА
(неорон, акпин). Оба препарата (в виде полосок) сжи-
гают и дымом обрабатывают пчел. Перед этим за 24 ч
удаляются из ульев 1—2 сотовые рамки, пчелам дают
жидкий сахарный сироп. Вечером свободную от сота
рамку с прикрепленной к ней тлеющей полоской вносят
в середину гнезда. Улей герметизируют, леток закры-
вают на 1 ч. Фольбекс применяют 8 раз, а фольбекс
ВА — 6 раз через 7 дн. (еженедельно). Обработка
фольбексом ранней весной или осенью может вызвать
гибель маток в отдельных семьях (пчелы этих семей
обычно не берут заданный корм). Для лечения акара-
пидоза применяют также концентрированную муравьи-
ную кислоту (см. варрооз).
Экзоакарапидоз. Поражение тела взрослых пчел кле-
щами рода Acarapis.
Возбудители. Болезнь вызывается наружным
клещом (A. externus), располагающимся на нижней и
боковой поверхностях шеи пчелы; спинным клещом
(A. dorsalis), паразитирующим сверху в бороздках гру-
ди, реже — у основания крыльев, на крыльях, первом
брюшном сегменте; блуждающим клещом (A. vagans),
находящимся у основания и на жилках второй пары
крыльев, втором брюшном сегменте и других частях те-
ла пчелы (рис. 23).
Оплодотворенные самки откладывают 2—5 яиц в
местах локализации на теле хозяина. Яйца приклеива-
ются к волоскам тела пчелы. Развитие подобно
A. woodi. Полный цикл развития самцы завершают на
9—11-й день, самки — на 11 — 16-й день. Количество
самцов и самок одинаковое. В подвижной стадии раз-
144
Л. dorsalis
Acarapls Exlernus
23. Места обитания акараписов (Моргенталлер, 1934).
вития они питаются гемолимфой пчел. На одной пчеле
обнаруживают до 6—100 экз. клещей в различных ста-
диях развития. Основное размножение наружного клеща
происходит с января по март с появлением молодых
(1—10-дневного возраста) пчел. Спинной клещ менее ог-
раничен возрастом хозяина.
Клещи погибают на трупах пчел через 3 дня, на по-
верхности рамок и улья — в течение суток.
Эпизоотологические данные. Клещи рас-
пространяются летными пчелами при контакте поражен-
ных семей со здоровыми. На одной пчеле можно найти
все указанные виды клещей. Наибольшее поражение
пчел отмечено зимой (октябрь — декабрь). Клещи спо-
собны переносить возбудителей вирусных болезней.
Патогенез. Сокращение длительности жизни пчел
из-за потери гемолимфы.
Клинические признаки. При слабом пораже-
нии они отсутствуют. При значительной численности
клещей в гнезде отмечают беспокойство пчел, частичный
или полный распад клуба, большой подмор, гибель от-
дельных семей пчел. Весной при первом облете около
ульев наблюдают ползающих, неспособных к полету
пчел.
Диагноз. Устанавливают его путем микроскопии
смывов с тела 50 пчел. Необходимо отличать этих пара-
зитов от трахейного клеща (A. woodi) и акароидных кле-
щей.
Профилактика. Не допускается размещение по-
раженных семей пчел среди здоровых.
Ю--381
145
24. Pyemotes ventricosus:
а—голодная самка; б — напитавшаяся самка с прикрепившимися
к ее телу самцами (Туманов, 1951),
Лечение. Применяют те же препараты, что при
акарапидозе пчел. Однако эти клещи к ним более устой-
чивы.
Пиемотоз. Болезнь открытого расплода и иногда
взрослых пчел, вызываемая клещами рода Pyemotes.
Возбудители — пузатый клещ (Р. ventricosus) и
клещ Херфси (Р. herfsi). Молодые самки пузатого кле-
ща желтоватого цвета, продолговатые, размером 223Х
Х80 мкм, после питания они становятся шаровидны-
ми— 1—1,5 мм в диаметре. Самцы размером 164Х
Х90 мкм (рис. 24). Оптимальная температура для раз-
вития клеща 25°C. Самки живородящие. На 8-й день
после оплодотворения рождают половозрелых самцов,
затем самок. Количество самцов от одной самки не пре-
вышает 3—4 %. Один самец оплодотворяет несколько
самок. Самцы питаются, прокалывая тело самки; по-
следние паразитируют на вредителях зерна: личинках
бабочек, жуков, двукрылых, равнокрылых. Может на-
падать на человека, вызывая сильный зуд и жжение, ли-
хорадку, головные боли, тошноту, множественное обра-
зование красноватых узелков на коже человека (зерно-
146
вая чесотка). Одна самка дает потомство 275 экз. кле«.
щей. Неоплодотворенные самки дают в потомстве сам-
ЦО в.
Биологические особенности клеща Херфси аналогич-
ны пузатому клещу. Напитавшиеся самки шаровидной
формы, размером 0,3—0,4 мм. Являются паразитами
преимущественно личинок жуков.
Самец пузатого клеща без питания живет 24 ч, сам-
ка — 36 ч. Питающаяся самка живет до 38 дн. Самки
клеща Херфси живут на трупах пчел в течение 20 дн.
Эпизоотологические данные. Пиемотоз
обычно регистрируют на пасеках, расположенных вбли-
зи мест хранения зерна или зерновых продуктов. Кле-
щи заносятся в улей пчелами и другими насекомыми,
с хранящимися сотами, утеплительным материалом.
Патогенез. Питание клещей на открытом 4—5-
дневном расплоде пчел приводит к почти полному унич-
тожению личинки, от которой остается оболочка. Клещ
способен инокулировать в тело личинок бактерии, при-
водящие к их гибели и загниванию. Более мелкие кле-
щи Херфси вызывают закупорку ротового аппарата
взрослых пчел, в результате чего они гибнут от голода.
Клинические признаки. Болезнь чаще отме-
чается в слабых семьях пчел, семьях, содержащихся на
расширенных гнездах. Обычно погибает расплод на
краю рамки. На одной личинке могут паразйтировать
от 3 до 40 самок клеща, тело последней выглядит как
бы посыпанным пылью. Нередко признаки болезни сход-
ны с европейским гнильцом и варроозом — в ячейках
находят загнившую массу. У взрослых пчел клещи про-
никают в межсегментные перегородки и сосут гемолим-
фу. При закупорке ротового отверстия клещами пчелы
становятся вялыми, брюшко их сжато. Сила семей
резко сокращается, иногда наблюдается гибель отдель-
ных семей.
Диагноз. Ставят его на основании обнаружения
клещей в пораженном расплоде или смывах с тела пчел.
Необходимо дифференцировать от европейского гниль-
ца.
Профилактика. Соблюдают ветеринарно-сани-
тарные правила содержания пчел, включающие система-
тическую очистку и дезинфекцию ульев, выбраковку
старых сотов, хранение сотов в чистом помещении, тща-
10's
147
тельную просушку утеплительного материала на
солнце.
Меры борьбы. Из семей удаляют соты с пора-
женным расплодом и перетапливают их на воск. Пчел
пересаживают в чистый улей. Гнезда сокращают и утеп-
ляют. При работе с пораженным материалом необходи-
мо соблюдать правила личной гигиены.
Лечение не разработано.
Варрооз (варроатоз). Тяжело протекающее заболе-
вание личинок, куколок и взрослых пчел. Карантинная
болезнь (список Б Международного эпизоотического
бюро) возникла в конце 50-х годов в связи с переходом
обитающего в гнездах среднеиндийской пчелы клеща
на нового хозяина — медоносную пчелу. Заболевание за-
регистрировано в странах Азии, Европы, Северной Аф-
рики и Америки. В СССР установлено с 1964 г.
Возбудитель — гамазовый клещ Varroa jacob-
soni. Самка коричневого цвета, слегка выпуклая со спин-
ной стороны, размером (1—1,2) X (1,5—1,9) мм. Тело по-
крыто щетинками, имеет колюще-сосущий аппарат и хо-
рошо развитые 4 пары конечностей (рис. 25). Самец
молочно-белый, размером (0,8—0,9) X (0,7—0,9) мм, не
питается.
Откладке яиц молодыми или зимовавшими самками
предшествует дополнительное питание на личинках от-
крытого расплода или взрослых пчелах в течение 4—12
сут. После питания самки паразита проникают на дно
ячейки рабочей пчелы за день, а в трутневый за 1—3
дня до запечатывания. Они остаются неподвижными в
25. Varroa jacobsoni:
а —самка; б — самец (по Ланге и др., 1976),
148
ЛЕТНИЙ СЕЗОН
Личинка Предкуколка Куколка Имаго
Дни 7-8 9
развития 6—7 g
10-11 12-16 17—20 21 пчела
9-13 14—19 20-23 24 трутень
Самка Варроа:
— неосемененная
— осемененная
— на пчелах
— на расплоде
— переход из одной
ячейки в другую.
Q Самец
о о Яйца
Личинки в
яйцевых оболочках
Hi Hj Протонимфы
Н2 Н2 Дейтонимфы
26. Цикл развития Varroa jacobsoni.
корме личинки. После запечатывания ячейки и потреб-
ления личинкой остатков корма клещ активизируется,
питается, продвигаясь к верху ячейки. После сплетения
кокона и перехода личинки в стадию предкуколки самка
паразита откладывает беловатые яйца размером (0,5—
0,7) X (0,5—0,6) мм (рис. 26).
Из первого неоплодотворенного яйца, имеющего внут-
ри сформировавшуюся шестиногую личинку, развивается
самец, из оплодотворенных яиц — самки. Самка в сутки
откладывает одно яйцо. В ячейке с рабочей пчелой она
149
кладет в среднем 3—4 яйца (максимум 5), на трутне —
4 яйца (максимум 6—7). При проникновении несколь-
ких самок в ячейку число отложенных ими яиц сни-
жается.
Оптимальные условия для развития клеща: темпера-
тура 34—36 °C и относительная влажность воздуха 60—
80 %. Из яйцевой оболочки приблизительно через 24 ч
выходит подвижная протонимфа, превращающаяся по-
следовательно в дейтонимфу, а затем во взрослого кле-
ща. В каждой подвижной фазе развития перед линькой
клещ питается гемолимфой хозяина. Полный цикл раз-
вития самца длится 5,5—6 сут, самки — 6,5—7 сут.
Яйца, отложенные самкой на 15—16-й день в пчели-
ном и на 18—19-й день в трутневом расплоде, не успе-
вают развиться до взрослых форм (Акимов, Пилецкая,
1986). Самец оплодотворяет только молодых самок, ко-
торые после вскрытия ячейки вместе с самкой — основа-
тельницей потомства покидают ее. Самец погибает. Сам-
ка-основательница в среднем через 4 дня вновь проника-
ет в ячейку для откладки новой порции яиц. В течение
своей жизни (весной — осенью. 2,5—4 мес) она способ-
на отложить 25 яиц, для чего ей требуется до 4—6 ячеек
расплода.
В расплоде в активный период жизнедеятельности
гнезда может содержаться до 70—90 °/о клещей. В период
мая — июля зимняя генерация самок паразита заменя-
ется на новую. Однако темпы размножения клеща за-
висят от многих факторов, и прежде всего от температу-
ры и влажности. На прирост клещей влияют климати-
ческие и природные условия, порода пчел, сила семей,
соотношение пчелиного и трутневого расплодов в ней в
течение сезона и т. д.
Самки клещей зимуют на пчелах, глубоко проникая
между брюшными сегментами, и питаются гемолимфой.
Питание постоянное, ритмичное, с чередованием перио-
дов активного потребления гемолимфы, с более дли-
тельным покойным состоянием. В течение зимовки
(150 дн.) для сохранения жизнеспособности самке кле-
ща требуется 5,5 мкл гемолимфы при наличии ее в ор-
ганизме зимующей пчелы в среднем 4,3 мкл.
Устойчивость клеща во внешней среде зависит от тем-
пературы и влажности. В голодном состоянии в опти-
мальных для жизнедеятельности условиях паразит со-
храняется до 5—7 сут, в запечатанном расплоде при
150
температуре 20 °C — до 30—40 сут (Смирнов, 1975). По-
теря 5—10 % воды в организме приводит к нарушению
питания и размножения у 50 % самок. Погибают они
после потери 10—20 % воды.
Эпизоотологические данные. Источник за-
ражения — инвазированные семьи пчел. Клещ распро-
страняется блуждающими пчелами, пчелами-воровками,
трутнями, при подсиливании семей зараженным распло-
дом, с роями, при кочевках пасек, купле и продаже
пчел и маток. Основное место сосредоточения клеща в
активный период — печатный расплод и внутриульевые
пчелы. Трутневый расплод поражается в 7—15 раз
больше, чем расплод рабочих пчел.
Патогенез. В результате болезни пчелы ослабе-
вают, потомство рождается маложизнеспособное, тело
пчелы перегружается паразитом, снижается устойчи-
вость к заражению различными возбудителями. Клещ
способен сохранять в своем теле и активно переносить
патогенные для пчел вирусы и бактерии.
Клинические признаки. Паразитирование
клеща на куколке пчелы вызывает различные наруше-
ния в ее организме.
Наибольшие изменения наблюдаются во второй пе-
риод развития хозяина. Вышедшие из ячеек пораженные
пчелы значительно мельче и легче. В их теле меньше со-
держится белка и жира, резко падает количество лизо-
цима, ответственного за устойчивость пчел. У рабочих
пчел и трутней часто уменьшено брюшко, отсутствуют
Крылья.
Число уродливых пчел в семье пропорционально сте-
пени поражения. У внешне нормальных пораженных
пчел в 1,5—2 раза сокращается продолжительность жиз-
ни. У них хуже развиты гипофарингиальные железы, за
счет чего снижается способность к инвертированию саха-
розы, выкормки расплода. Масса обножки и, вероятно,
содержание медового зобика у пораженных пчел мень-
ше, чем у здоровых. Сокращаются срок жизни маток и их
плодовитость. Уменьшается число трутней в семьях, па-
дает их способность к оплодотворению маток.
Внешние признаки болезни появляются обычно через
3—4 года после заражения. При сильном поражении,
особенно осенью, расплод пестрый, погибшие личинки и
куколки находятся в различной степени разложения,
загнившая масса легко удаляется из ячейки, часть кры-
151
шечек над печатным расплодом провалена, некоторые
отверстия в крышечках неправильной формы, часто с
белым кантом (следы испражнений клещей). Иногда в
результате сильного раздражения некоторые личинки
выходят из ячеек, и их находят на дне улья и предлет-
ковой площадке. Семьи не обеспечивают себя кормом,
резко ослабевают и погибают, особенно после осеннего
пополнения кормовых запасов сахаром.
У пошедших в зимовку пчел плохо развито жировое
тело, они беспокойны, плохо формируют клуб, оправля-
ются внутри улья. Пораженные варроозом пчелы погиба-
ют в период зимовки или резко ослабевают, большое ко-
личество погибших пчел скапливается на дне улья.
Варрооз часто протекает совместно с другими забо-
леваниями пчел.
Диагноз. Наличие клеща в гнездах пчел устанав-
ливают по его обнаружению на куколках трутневого,
пчелиного расплодов, на взрослых пчелах или в мусоре
на дне улья. Варроа следует отличать от других гама-
зовых клещей и браул, встречающихся на пчелах. Диаг-
ноз на заболевание или гибель семей пчел от варрооза
может быть поставлен только при учете степени пора-
жения пчел (свыше 10%) и имеющихся или имевших-
ся ранее признаков болезни. Пораженность определяют
поздней осенью (зимой), исследуют 50 пчел из семьи,
не имеющей расплода, и результат умножают на 2. По-
ражение ниже 10 % указывает на носительство; 3—
Ю %—на вероятность ослабления семей в период зи-
мовки и необходимость принятия срочных мер по лече-
нию весной; 1—3%—целесообразно применение сокра-
щенного курса лечения весной или использование зоо-
технических приемов летом; ниже 1%—лечение вес-
ной — летом может быть исключено, обработки проводят
осенью после откачки меда.
Дифференциальный диагноз. При обна-
ружении загнивающих личинок дифференцируют забо-
левание от европейского гнильца; при выявлении
уродств куколок и взрослых пчел исключают пораже-
ния пчел египетским вирусом, близкородственное разве-
дение, нарушение температурного режима гнезда.
Профилактика. Возможна на изолированных
территориях при отсутствии завоза пораженных пчел.
Меры борьбы. Направлены они на максимальное
152
сокращение численности паразитов внутри гнезда. Про-
водят постоянно и систематически.
Семьи пчел содержат в хорошо освещенных солнцем
местах на подставках высотой 25 см от уровня почвы, в
ульях с хорошими ориентирами на передней стенке и
снабженными сетчатым подрамником (клещеуловите-
лем). Ульи комплектуют свежеотстроенными сотами и
сотами не более 3 лет эксплуатации. Систематически
удаляют трутневый расплод с помощью комбинирован-
ной рамки (обычная рамка с двумя отдельными легко
разъединимыми секциями). По мере запечатывания
трутневого расплода рамку удаляют, осторожно ножом
срезают крышечки, куколок трутней с клещами вытря-
хивают на лист бумаги. При наличии на пасеке других
инфекционных заболеваний собранный материал сжига-
ют.
На благополучных по этим болезням пасеках куколок
трутней растирают, массу процеживают через 1—2 слоя
марли. Собранную жидкость добавляют в количестве
10 % к сахарному сиропу, который дают семьям пчел.
Материал, смешанный с сахарной пудрой 1 : 2, можно
хранить в холодильнике. Соты промывают в 2—3%-ном
растворе уксусной кислоты (столовый уксус), затем во-
дой, сушат и повторно используют.
С приносом пыльцы в улей семьи пчел расширяют за
счет постановки в середину гнезда рамок с вощиной.
Поздней весной приступают к созданию отводков. Для
этого из основной семьи отбирают в новый улей весь
печатный расплод с частью обсиженных его пчел и од-
ну-две рамки с однодневными яйцами. Через 2—3 дня в
этот улей вновь помещают рамки с печатным распло-
дом из основной семьи.
Вместе с расплодом в созданный отводок переносят
до 95 % всех находящихся в основной семье клещей. По-
следнюю не подвергают акарицидной обработке до осе-
ни. В созданном отводке на яйцах пчелы закладывают
маточники, из которых оставляют один. На 15—16-й день
после сформирования отводка и выхода пчел и матки
приступают к его обработке препаратами. Возможны
и другие способы создания отводков или безрасплодного
периода в семье.
Необходимо тщательно следить, чтобы все семьи па-
секи были в достаточном количестве обеспечены белко-
вым кормом. Скармливание сахара для пополнения зим-
153
них кормовых запасов осенью не должно превышать 5—
7 кг на семью.
Лечение. Пчелиные семьи обязательно обрабатыва-
ют весной, летом после откачки меда и осенью одним из
следующих препаратов:
дымом фенотиазина (варрофен, варроксан) —таблет-
ка на семью силой 5 улочек, леток закрывают на 15—
20 мин, обрабатывают 3 дня подряд, повторно препарат
применяют через 7 дн.;
фольбексом (по одной полоске на семью, леток за-
крывают на 30 мин, обрабатывают 2 дня подряд; исполь-
зование ранней весной и осенью возможно только на
семьях, активно потребляющих сахарный сироп, кото-
рый ставят за сутки до обработки);
фольбексом ВА (акпин, неорон) — по одной полоске
4 раза через 4 дня, леток закрывают на 1 ч;
парами формицида или концентрированной муравьи-
ной кислоты (полиэтиленовые пакеты 20X30 см с 2—3
пластинами картона, пропитанного 30—50 мл муравьи-
ной кислоты, или заполненные ею в том же объеме поли-
этиленовые крышки, закрытые сверху картоном, ставят
на 3—5 дн. сверху рамок, накрывая полиэтиленовой
пленкой, весной курс лечения повторяют через 12 дн., ис-
парение не должно превышать 6—8 мл в сутки);
опрыскиванием 2 %-ной щавелевой кислотой или
10 %-ной молочной кислотой в дозе 8—10 мл на одну
рамку, обработку повторяют через 10—12 дн.;
варроатином (аэрозоль вводят в течение 1,5—2 с в
каждую улочку пчел, 3—5 с в леток; леток суживают до
1 см в течение 12 ч; весной проводят две обработки,
осенью 4 раза через 24 ч);
опудривание тимолом (0,25 г порошка на улочку
пчел, или 10—15 г препарата помещают в мешочке на
верхние планки рамок, обработку повторяют через 4 или
7 дн. 2—3 раза);
варроабраулином (3—5 г порошка на рамку, обраба-
тывают 3—5 раз через 6—7 дн.).
Помимо перечисленных средств в СССР для борьбы
с варроозом пчел рекомендованы дым тиолина (одна по-
лоска на улей, леток закрывают на 30 мин, обработку
повторяют 2—3 раза через 24—48 ч), пары санвара
(20 мл жидкости помещают на холстике на дне улья,
держат. 10—12 дн.); скармливание перпцпна-гранулята
154
осенью (5 г препарата смешивают с 1 л сахарного сиро-
па, препарат дают трижды через 7 дн.).
Указанные средства борьбы используют при темпе-
ратуре окружающего воздуха не ниже 7—16°С. Они
обеспечивают необходимый эффект при проведении кур-
сов лечения в указанные периоды года в сочетании с зоо-
техническими приемами борьбы (установка клещеулови-
телей, удаление трутневого расплода, создание безрас-
плодного периода при формировании отводков). Все ви-
ды обработки должны быть прекращены за 30—45 дн.
до откачки меда.
В последние годы для борьбы с варроозом были
предложены более совершенные препараты, использова-
ние которых возможно поздней осенью (при темпера-
туре ниже 10°C), когда в семьях пчел отсутствует
расплод. Применяют амитраз — водную суспензию пре-
парата, содержащую 0,00625 % активнодействующего
вещества, вносят из шприца-автомата в дозе 10 мл на
улочку дважды через 7 дн. при внешней температуре
воздуха от +5 до —5°C. Перицин жидкий также вводят
в виде водной суспензии, содержащей 0,032 % активно-
действующего вещества, в дозе 10 мл на улочку пчел
дважды через 24—48 ч при температуре внешнего воз-
духа не ниже 2 °C.
Из препаратов этой группы за рубежом применяют
апистан (флувалинат) в виде полихлорвиниловых лент
размером 25x4 см с 10 %, активного вещества. Ленты
помещают в середину гнезда на 2 мес зимой.
Эффективность указанных препаратов достигает
98—100 %, число обработок ограничивается одним кур-
сом лечения в год. Одновременно с этим снижается опас-
ность загрязнения остатками препаратов товарного ме-
да. При использовании препаратов необходимо соблю-
дать правила личной безопасности.
Помимо применения химических препаратов, для
снижения численности клещей используют также терми-
ческий метод обработки пчел. Пчел из семьи вытряхива-
ют через специальную воронку в сетчатую кассету. По-
следнюю помещают в камеру (рис. 27) с температурой
45 °C на 30 мин. Кассету периодически встряхивают, вра-
щают. В камеру должен поступать воздух не менее
0,5 м3 в минуту. После обработки пчел помещают в
улей. Обрабатывают пчел не более одного раза в сезон.
155
1
27. Схема термокамеры (общий вид).
/Vе п/ лп Наименование элементов I Размеры, мм Род ма- ’еРиРмР
дЛиЛИ Uilil.- ! ОЛи.
1 Съемная двухстенная крышке 150 150 25
2 Корпус напжнс-ЛлЛ ввухтн. 1200 150 150 rvo
3 Окна Оля встряхивания на с см 2 100 100 5 фанера
9 Окна смотровые остекленные 2 950 950 3 сшенло
5 Зяектрошитон с реле.рметнами / 205 205 28 дерево
6 Термометры на ТОО °C 2 номдин
7 Сетна-сворник нлещей ; 700 100 6,7 металл
8 вентиляционные отверстия 0-12
9 Электрокамин или тп/плитыт 7 Мощи, да 1нЗт
Нельзя обрабатывать пчел в период интенсивного медо-
сбора или кормления сахарным сиропом.
В комплексе мер борьбы с варроозом пчел важное
значение имеют дезинфекционные мероприятия. Еже-
годная систематическая дезинфекция всего инвентаря и
оборудования и особенно сотов крайне необходима для
предупреждения появления смешанных инфекций. Для
уничтожения самок клеща достаточно выдержать про-
мытые соты, вычищенные и промытые ульи, инвентарь
в течение 15 сут в помещении, недоступном для пчел.
При необходимости возможна обработка ульев, сотов,
инвентаря сернистым газом (150 г/м3) или бромистым
метилом, ОКЭБМ (200 г/м3) в течение 24 ч.
Тропилелапсоз. Поражение печатного расплода, со-
провождающееся его гибелью или рождением маложиз-
неспособных трутней и рабочих пчел.
Возбудитель. Болезнь вызывается клещом Тго-
pilaelaps clareae — светло-желтого до коричневого цве-
та,размером (0,9—1) X (0,5—0,6) мм (рис. 28). Спин-
ной щиток покрыт большим количеством коротких жест-
ких щетинок, задние краевые щетинки длинные и уп-
ругие. Ротовой аппарат самок колюще-сосущего типа.
Оплодотворённая самка откладывает 3—4 яйца на
стенку ячейки с личинкой вскоре после ее запечатыва-
ния. Через 24 ч-из яйца выходит протонимфа, которая
после линьки превращается в дейтонимфу, а затем во
взрослого клеща. Соотношение самцов и самок в ячей-
ке 1:1. Вышедшие из ячеек молодые самки способны
к откладке яиц через 1—2 дня. Весь цикл развития
156
продолжается 8—9 дн. Ос-
новная масса клещей нахо-
дится внутри ячеек с рас-
плодом, на взрослых пчелах
встречается незначительное
число паразитов. Клещ ис-
пользует пчелу как тран-
спорт, не питается и спосо-
бен сохраняться на ней не
более 1—2 сут.
В северных широтах, где
зимой в семьях пчел отсут-
ствует расплод, клещ поги-
бает.
28. Tropilaelaps clareae.
Эпизоотологические данные. Основной
источник заражения — пораженные пчелиные семьи.
Резервуаром клеща в местах его обитания являются ди-
кие гигантские и гималайские пчелы. Отрутневевшие
семьи поражаются в большей степени.
Патогенез. Нарушение нормального функциони-
рования семьи пчел из-за гибели расплода и снижения
жизнеспособности взрослых пчел.
Клинические признаки. Около летков и на
дне ульев находят выброшенных пчелами личинок, ку-
колок и уродливых пчел. Расплод разбросан по соту.
Количество его постепенно сокращается. Погибшие ли-
чинки теряют блеск, изменяется форма их тела, перед-
ний конец некоторых погибших личинок выдается из
ячейки.
Окукливание личинок часто задерживается. От-
мечается гибель куколок, или они завершают свое раз-
витие до взрослой пчелы; тело последней бывает дефор-
мированным, крылья недоразвиты, часто отсутствуют
ноги. Семьи пчел слабеют и погибают. Иногда при силь-
ном поражении гнезда они слетают. Возможно одновре-
менное поражение семей пчел клещами Т. clareae и
V. jacobsoni, однако первый вид из-за большей скорости
размножения в течение 2 лет вытесняет последний.
Диагноз. При вскрытии печатного расплода (осо-
бенно трутневого) находят от 1 до 4 клещей, иногда
число паразитов достигает 24—36 экз. на ячейку. Погиб-
ших клещей можно обнаружить в мусоре на дне улья.
Для лабораторного исследования направляют печатный
расплод размером 3x15 см. Подвижных клещей внут-
157
ри ульев лучше собирать посредством мокрой кисточки.
Клеща необходимо отличать от других гамазид, встре-
чающихся в улье.
Профилактика. Запрещение завоза больных се-
мей пчел.
Меры борьбы. При появлении заболевания при-
нимают решение об уничтожении больных семей. При по-
ражении значительного числа семей пчел из них удаляют
расплод, кроме сотов с засевом. Дно улья покрывают
листом бумаги, смазанным вазелином, или ставят сет-
чатый подрамник. Семьи заносят в прохладное помеще-
ние на 3—4 дня.
Лечение. Больные семьи обрабатывают концентри-
рованной муравьиной кислотой в течение 6—13 дн. при
ее испарении 5 см3 в день. Положительные результаты
получены также при удалении расплода и заключении
матки в клеточку на 9 дн.; применении тактика (амитра-
за), серы в порошке, смеси серы с нафталином, удале-
нии расплода и матки при обработке фенотиазином.
Мелиттифиоз. Гибель открытого расплода.
Возбудитель. Болезнь возникает в результате ин-
тенсивного развития популяции клеща Meiittiphis
alvearius в гнездах пчел. Самки темно-коричневого цве-
та, почти округлой формы, размером 0,8Х (0,6—0,7) мм.
Спинной щиток лишен щетинок в центральной части, по
бокам и сзади они игольчатые (рис. 29).
Эпизоотологические данные. Клещ обна-
ружен в гнездах пчел ряда стран Европы и Новой Зе-
ландии, на территории
СССР — в Сибири, Даль-
нем Востоке, однако забо-
левание встречалось только
на отдельных пасеках За-
падной и Восточной Сибири.
29 Melittiphis alvearius.
30. Браула (Брюггер, 1934),
15S
Клинические признаки. Болезнь характери-
зуется гибелью открытого расплода, иногда с симпто-
мами, напоминающими европейский гнилец.
Диагноз. В летний период клеща чаще находят на
верхних планках гнездовых рамок. От V. jacobsoni и
Т. clareae отличается формой и меньшими размерами
тела. Мелиттифиоз необходимо дифференцировать от ев-
ропейского гнильца.
Профилактика и меры борьбы. Содержат
сильные семьи пчел в чистых ульях. В последние годы
в связи с широким использованием акарицидов против
варрооза клещ мелиттифиоза практически не обнаружи-
вается.
Браулез. Болезнь маток и рабочих пчел, вызываемая
паразитированием браул.
Возбудители — слепая браула Braula соесй, бра-®
ула шмитца — В. smitzi, восточная браула — В. orientalis.
Браулы — бескрылые насекомые размером (1,3—1,6) X;
X (0,8—1,1) мм, красно-бурого цвета (рис. 30). Тело
покрыто темными щетинками. Голова большая, плоская,
треугольная, имеет глаза, светлые усики, ротовой аппа-
рат направлен вниз и состоит из верхней губы, челюст-
ных щупиков, покрытых волосками, и слабо развитой
нижней губы. Грудь короткая, шайбовидная. Брюшко
слегка овальное, у самцов более вытянутое. На конце
брюшка у самок имеются характерной формы церки, у
самцов — половой аппарат (гипопигий). Конечности пя-
тичлениковые, бедра толстые, голени слегка изогнуты
и к койцу расширяются, лапки оканчиваются гребенкой
из желтых хитиновых зубцов и двумя булавовидными
подушечками. Цикл развития браул тесно связан с био-
логией пчелы.
Слепая браула встречается в западных и южных рай-
онах страны. В центральных и северных областях на-
секомые обычно не выживают. Насекомые спариваются
весной на соте или на хозяине, этот процесс длится от
8 мин до одного часа. Откладка яиц самкой начинается
через 2 дня после оплодотворения. Она кладет в сутки
одно, реже — несколько яиц (в сезон — около 200), ко-
торые помещает на внутреннюю сторону крышечки ячей-
ки с медом до момента ее полного запечатывания,
редко располагает яйца на дне и стенках пустых ячеек.
Яйца эллипсовидные, беловатые, с узкой, сильно изре-
159
зап ной каймой, суживающейся к полюсам, размер яиц
(0,7—0,8) X (0,36—0,39) мм.
Через 5—7 дн. из яйца выходит белая, длиной 0,8 мм
личинка. Она питается воском и имеющимися в нем зер-
нами пыльцы. Личинки прокладывают характерные из-
витые, длиной от 2 до 10 см туннели на внутренней сто-
роне крышечек ячеек (рис. 31). Диаметр хода личинки
равен сначала 0,3—0,5 мм, затем по мере достижения
личинкой размера 2 мм расширяется до 0,75—0,78 мм.
Личинки движутся только в одном направлении. В кон-
це хода личинки окукливаются. Развиваются личинки в
течение 44—52 дня. Куколки белые, затем становятся
желтоватыми, форма тела грушевидная, длина 1,4—
1,6 мм( развиваются они 14—15 дн. Вышедшие из коко-
на взрослые браулы белого цвета, через 6 ч у них тем-
неет голова, а через 12—24 ч — все тело. Полный цикл
продолжается 63—74 дня.
Браула шмитца обнаружена в Закавказье. К отклад-
ке яиц приступает после оплодотворения в феврале. Сам-
ка кладет от 1 до 5 яиц на наружную поверхность за-
печатанных медовых ячеек сота, через 5—7 дн. кладки
яиц делает одно-двухдневные перерывы. Яйца разме-
ром (0,8—0,9) X (0,4—0,5) мм. Кайма широкая, мало-
изрезанная, однако на полюсах большие вырезки. Самка
откладывает до 200 яиц. Продолжительность развития
эмбриона в яйце 5—6 дн., личинки — 40—49 дн., кукол-
ки — 12—13 дн., весь цикл проходит за 63—67 дн. Браулы
31. Ходы личинок браул с внутренней стороны медовых
крышечек (Полтев, Нешатаева, 1977).
160
32. Майка:
а — личинка, внедрившаяся в межсегментные перегородки ва спинной сто-
роне брюшка пчелы; б — личинка (большое увеличение); а — самка жука-
нарывника (Полтев, Нешатаева, 1977).
темнеют на 4-е сутки. Личинка проделывает ходы дли-
ной до 9 см.
Восточная браула распространена на Дальнем Вос-
токе. Самки приступают к откладке яиц через 12—15 дн.
после выхода из куколки. Яйца кладут на наружную по-
верхность крышечек ячеек с медом и расплодом, реже —
на дно и стенки пустых ячеек. По биологии близка к
брауле шмитца.
Паразиты обычно располагаются сверху груди матки
или рабочих пчел, реже встречаются на нижней стороне
груди трутней. Питаются они кормом маток и пчел. Для
этого браулы задними конечностями обхватывают голову
пчелы, а передними возбуждают верхнюю губу до тех
пор, пока не появится на язычке капелька корма, кото-
рую они сразу же съедают. Браулы быстро передвига-
ются от одной пчелы к другой и в течение одной мину-
ты могут взять корм у 7—8 пчел. Часто паразит отби-
рает корм при его передаче от одной пчелы к другой или
кормлении рабочими пчелами матки и трутней.
Зимуют взрослые браулы текущего года рождения,
обычно они располагаются в центре зимующего клуба
на матке и находящихся рядом с ней пчелах. Количество
браул в осенне-зимний период на матке может дости-
гать 156 экз., имеется сообщение об обнаружении 371 осо-
би. Со второй половины весны и летом браулы распо-
лагаются вблизи расплода на пчелах-кормилицах. В этот
период на матках находят от 1 до 10 экз. браул и 1—3 на
11-331
161
рабочих пчелах и трутнях. Без питания браулы погиба-
ют на 2—4-й день.
Эпизоотологические данные. Источник воз-
будителя — пораженные браулами пчелы. Из семьи в
семью они передаются при подсадке инвазированных
маток, перестановке сотов с расплодом и кормом, пере-
лете трутней и пчел, размещении на пасеке роев неиз-
вестного происхождения. Взрослые браулы способны
прикрепляться к движущимся предметам, их находили на
шмелях, жуках-бронзовиках. Однако роль этих насе-
комых в распространении заболевания, вероятно, огра-
ничена. Интенсивному развитию браул в семье благо-
приятствуют мягкая и короткая зима, старые соты.
Патогенез. Браулы перегружают тело маток и ра-
бочих пчел, ослабляют их из-за недостатка питания.
Клинические признаки. Пораженные пчелы
беспокойные, стремятся удалить со своего тела парази-
та. При сильном поражении весной семьи слабо разви-
ваются, пчелы-кормилицы из-за недостатка корма вос-
питывают меньше расплода, матки сокращают или пре-
кращают яйцекладку. Сокращается летная способность
пчел и соответственно этому медосбор. Зимой клуб пчел
бывает рыхлым, из-за беспокойства пчелы потребляют
больше корма, испражняются внутри улья, повышается
гибель рабочих пчел, часто погибают матки.
Диагноз. Ставят его на основании обнаружения
браул на теле маток и пчел. Для подтверждения диаг-
ноза обнаруженных браул высылают в ветеринарную ла-
бораторию. При постановке диагноза следует учитывать
эпизоотические данные, клинические симптомы, число па-
разитов на матке. Наличие единичных (1—2) браул на
последней и такого же числа на двух-трех рабочих пче-
лах из 100 осмотренных свидетельствует о носительстве.
Профилактика. Предупреждают занос браул с
неблагополучных пасек.
Меры борьбы. На неблагополучной пасеке уста-
навливают карантин. Весной через каждые 10—14 дн.
дно ульев очищают, с запечатанного меда снимают вос-
ковые крышечки ножом или вилкой и перетапливают.
В последние годы в связи с массовыми систематически-
ми обработками против варрооза количество браул в
семьях сократилось; браулез перестал регистрироваться
на многих пасеках в стране.
162
Лечение. Применяют фенотиазин, фольбекс (см.
варрооз). Опавших браул собирают и сжигают.
Мелеоз. Болезнь медоносных и одиночных пчел, вы-
зываемая паразитированием личинок (триунгулин) жу-
ков маек (Meloe).
Возбудитель. Жуки маек имеют отвесную голову,
соединенную с туловищем шееподобной перетяжкой. Ок-
рашены в яркие цвета, надкрылья короткие. Питаются
растениями. Встречаются на юге страны. Самки откла-
дывают от 2 до 10 тыс. желтоватых яиц в ямки на поч-
ве. Через 23—25 дн. из яиц выходят личинки (триунгу-
лины), которые взбираются на цветущие растения и рас-
полагаются в середине цветка. При посещении насеко-
мыми таких цветков они быстро перемещаются на их
тело. В последующем триунгулины развиваются в коло-
ниях одиночных пчел, где они проходят сложный цикл
развития в ячейках с расплодом и кормом до взрослого
насекомого.
Для медоносных пчел опасность представляют три-
унгулины пестром (М. variegatus), синей (М. violaceus),
обыкновенной (М. proscarabeus) и венгерской (М. hun-
garus) маек.
Триунгулины пестрой майки черного цвета, длиной
2,5—3,8 мм, тело плоское. Голова заострена, имеет пу-
чок из 7 веретеновидных щетинок, челюсти серповидные,
на внутренней поверхности имеют тонкие пильчатые
зубцы. На последнем сегменте брюшка 4 приблизительно
равной длины щетинки. У триунгулин остальных видов
маек голова не заострена, пучок щетинок на ней отсут-
ствует, на заднем конце тела имеются две длинные и
несколько коротких щетинок. Личинки обыкновенной
майки размером 1,2X1,5 мм, желто-коричневого цвета;
венгерской майки — 5X1 мм, от желто-оранжевого до
коричневого цвета; синей майки — 1,7X0,2 мм, светло-
желтые или желтые с более темными ногами.
Личинки пестрой и венгерской маек питаются гемо-
лимфой медоносных пчел. Триунгулины пестрой майки
прикрепляются между кольцами брюшка пчелы (рис. 32),
между брюшком и грудью, кольцами груди, головой и
грудью, в местах прикрепления ног к груди; венгерские
майки локализуются на суставах конечностей и на ниж-
ней стороне шеи пчелы; обыкновенная и синяя майки пол-
зают по телу насекомого. На одной пчеле можно найти
11*
163
1—2, реже — до 20 и больше личинок маек. В гнездах
медоносных пчел триунгулины не развиваются.
На теле погибших личинок пчел триунгулины способ-
ны сохраняться до 30 дн.
Эпизоотологические данные. Заражаются
пчелы на цветках, в местах обитания одиночных пчел на
юге страны. Заболевание регистрируют в период мас-
сового выхода триунгулин из яиц.
Патогенез. Прикрепившиеся паразиты вызывают
сильные разрушения межсегментных перегородок тела
пчелы, приводят к беспокойству пчел.
Клинические признаки. Течение болезни ча-
ще всего кратковременное, лишь иногда она длится 2—
3 нед. Количество пораженных пчел в сильных семьях
значительно больше, чем в ослабленных, и достигает
от нескольких десятков до тысяч. Особенно большой вред
наносят личинки маек при поражении пчел перед глав-
ным взятком. У летка и на дне улья находят погибших
пчел. Живые пчелы беспокоятся, падают на землю, под-
прыгивают, пытаются очистить свое тело.
При паразитировании триунгулин пестрой майки рез-
ко ослабляется организм пчел, погибают они на 1—4-й
день после нападения. При попадании в улей они могут
переходить с одной рабочей пчелы на другую и на мат-
ку. Одна личинка вызывает гибель 1—3 пчел. При пора-
жении личинками венгерской майки отмечена гибель до
80 % пчел в семье. Триунгулины других видов маек
приводят к беспокойству пчел.
Диагноз. Ставят его на основании обнаружения
характерных личинок на теле взрослых пчел с учетом
признаков болезни и ее эпизоотологических особеннос-
тей.
Профилактика. Не следует располагать семьи
пчел в местах массового размножения маек. Распашка
земли позволяет резко сократить их численность.
Меры борьбы и лечение. Пораженные семьи
пчел обрабатывают табачным дымом (50 г махорки вы-
сыпают на раскаленные угли дымаря) вечером, ульи
должны быть герметичными. Обработку повторяют через
3—5 дн. Упавших на дно улья личинок маек тут же
сжигают.
Мелиттобиоз. Поражение личинок и куколок перепон-
чатокрылых (медоносная пчела, пчелы-листорезы, шме-
ли и др.) мелиттобиями.
164
Возбудитель — Melitto-
bia acasta (рис. 33). Длина
самки насекомого менее 1 мм,
черного или темно-коричнево-
го цвета, блестящие, вооруже-
ны яйцекладом. Самцы бес-
цветные, без крыльев и глаз,
не питаются. Самки потребля-
ют тканевую жидкость хозяев,
на теле которых они отклады-
вают яйца. К яйцекладке спо- 33. Самка мелиттобии.
собны девственные и оплодо-
творенные самки. В выборе хозяев неразборчивы.
Проникая в гнездо насекомых, самки делают от-
верстие в коконе хозяина и парализуют его вве-
дением яйцеклада. Девственные самки откладывают от
1 до 36 яиц на тело хозяина. Из этих яиц выходят сам-
цы, большая часть которых погибает, оставшиеся опло-
дотворяют самку (мать). Оплодотворенные самки
через 11—19 дн. приступают к дальнейшей яйцекладке.
За период жизни одна самка способна отложить до
1200 яиц. Повторное оплодотворение стимулирует от-
кладку яиц. Развитие происходит при температуре 12—
35 °C. Из яиц выходят маленькие червеобразные личин-
ки, которые питаются соками тела хозяина. При темпе-
ратуре 34 °C развитие от яйца до взрослого паразита
продолжается 7—10 дн. Зимуют в фазе взрослой ли-
чинки или куколки.
Самки способны к голоданию в течение 2 мес. При
температуре 0°С взрослые особи погибают через 20 дн.,
куколки — через 40—95, яйца — через 18 дн.
Эпизоотологические данные. Заражение
возможно в период лета самок со второй половины мая
до конца октября.
Патогенез. Самки мелиттобии питаются гемо-
лимфой предкуколки хозяина. При откладке яиц пора-
женное насекомое всегда погибает.
Клинические признаки. Мелиттобии в соот-
ветственных условиях поражают сформированные кукол-
ки маток медоносных пчел. На одной куколке находят
74—281 мелиттобию. В эксперименте мелиттобии ус-
пешно развиваются на непигментированных куколках
или куколках с розовыми глазами рабочих пчел и трут-
ней. Ячейки с пчелиным расплодом более привлекатель-
165
ны для паразита, чем трутневые; он избегает отклады-
вать яйца на личинок, пораженных мешотчатым распло-
дом или клещом варроа. При предоставлении самке
4—5 ячеек расплода в одной ячейке находили от 69 до
156 мелиттобий, при 10 число особей в ячейке снижалось
вдвое. Пассирование паразита на этом хозяине приводи-
ло к увеличению числа особей в ячейке. На крышечке
пораженных ячеек сот или в стенке маточника имеется
небольшое отверстие — место выхода паразита. При
вскрытии таких ячеек находят оставшихся паразитов
и остатки куколки.
Диагноз. Ставят его на основании осмотра и вскры-
тия ячеек. Определение видовой принадлежности пара-
зита проводят по взрослым насекомым.
Профилактика. Для предупреждения поражения
медоносных пчел мелиттобиозом нельзя размещать па-
секи в местах концентрации пчел-листорезов (мегахил).
Меры борьбы и лечение не разработаны.
Мутиллоз. Поражение предкуколок медоносных пчел
и шмелей личинками немок.
Возбудитель. Болезнь вызывается немками (не-•
мотки, мутиллы, пчелиные или барханные муравьи) —
перепончатокрылыми насекомыми семейства Mutillidae,
напоминающими муравьев. На нижней поверхности
брюшка глубокая перетяжка между 1-м и 2-м сегмен-
том. Самцы длиной И —17 мм, имеют крылья. Голова
и грудь коричнево-красного цвета, на брюшке две се-
ребристые перевязи. Самки бескрылые, грудь красно
ватая, брюшко и иоги коричнево-черные, на брюшке три
серебристые перевязи; яйцеклад в выброшенном состо-
янии равен длине брюшка.
Самцы оплодотворяют самок в полете. После спари-
вания самки проникают в расплодную часть гнезда, про-
бивают яйцекладом запечатанные ячейки с расплодом
и откладывают яйца на поверхность кокона тела пред-
куколки или вводят его внутрь своей жертвы. Одна сам-
ка способна отложить до 22 яиц. У вышедших личинок
хорошо развиты челюсти с 4 зубцами, с помощью кото-
рых они .постепенно уничтожают свою жертву. Зрелые
личинки плетут самостоятельный кокон в ячейке или
внутри кокона хозяина. Весь цикл развития продолжа-
ется 30 дн. Зимуют оплодотворенные самки в почве,
самцы погибают.
166
Эпизоотологические данные. Самки спо-
собны активно проникать в улей. За год развиваются
две генерации паразита (в июле и августе — сентябре).
Патогенез. Ослабление семьи пчел из-за гибели
взрослых пчел и расплода.
Клинические признаки. При внедрении в
улей самка вызывает сильное беспокойство пчел. Немка
захватывает их и вводит яйцеклад в тело жертвы по на-
правлению к голове. В течение 12 ч способна уничто-
жить до 185 пчел. При нападении на молодых пчел пи-
тается их гемолимфой и тканями. Откладывает яйца на
предкуколок рабочих пчел и трутней. Пчелы не обраба-
тывают расплод, где находится самка немки; матка в
пораженной семье резко сокращает откладку яиц.
Профилактика. Для предупреждения проникно-
вения немок в семьи пчел ульи размещают на высоте
30 см от земли. Уничтожают самок при выходе их в теп-
л\ ю погоду на прилетную доску улья.
Меры борьбы не разработаны.
Конопидозы (син. физоцефалез). Поражение взрос-
лых летных медоносных пчел, пчел-листорезов и шмелей
личинками мух семейства Conopidae.
Возбудитель. Болезнь вызывают личинки мух
родов Physocephala (Ph. vitata), Zodian (Z. cinereum)
и др. (рис. 34). Известно около 600 видов конопид, из них
100 видов обитают на территории нашей страны. Взрос-
лые мухи средней величины, с большой шаровидной го-
ловой, превышающей ширину груди. Усики часто удли-
ненные, хоботок длинный, твердый. Брюшко стройное,
34 Physocephala vitata:
а — личинка; 'б — куколка; в — взрослое насекомое.
167
слабостебельчатое. Окраска тела черного, бурого или
желтых тонов. Муха круглоголовка — Ph. vitata буро-
вато-желтого цвета, длиной 11 мм, голова в диаметре
1,75 мм, грудь длиной 3,5 мм и шириной 1 мм. Брюшко
черное, в задней части красноватое. Вершина брюшка и
задний конец крайних тергитов серебристого цвета. Тем-
но-коричневая куколка яйцевидной формы, размером
7,5X3,5 мм.
Конопиды нападают на насекомых во время полета.
Муха откладывает мгновенным прикосновением в ды-
хальце или на тело хозяина снабженное отростками яйцо.
Вышедшая из него личинка через дыхальце проникает
в трахею, а затем в брюшную полость пчелы. Личинка
питается, уничтожая внутренние органы брюшка, а за-
тем мышцы груди пчелы. Взрослая личинка грушевидной
формы, головной конец расположен в груди пчелы. Ку-
колка созревает внутри личиночной шкурки. Белый, а
затем буро-коричневый кокон заполняет брюшко насе-
комого. Мухи выходят из куколки через 20—25 дн., но
большинство их зимуют и вылетают на следующий год.
Эпизоотологические данные. Болезнь ре-
гистрируется во второй половине лета, чаще на юге
страны.
Патогенез. -Ослабление семей из-за гибели взрос-
лых пчел.
Клинические признаки. Болезнь регистриру-
ют во второй половине лета. Пораженные насекомые
теряют способность к полету, брюшко их резко увели-
чивается. Погибших пчел находят около ульев или в по-
ле, трупы обычно лежат на спине с вытянутым во всю
длину хоботком и с полным, растянутым, иногда под-
вижным брюшком. Сквозь межсегментарные перепонки
просвечиваются беловатая личинка или темный пупа-
рий паразита. Здоровые пчелы удаляют малоподвижных
пчел из улья. Количество больных пчел в семьях и ос-
лабление последних подвержено значительным колеба-
ниям. Иногда отмечают резкое ослабление семей.
Диагноз. Ставят его по обнаружению характер-
ных личинок или куколок в брюшке погибших пчел. Не-
обходимо дифференцировать паразита от личинок и
куколок мух, развивающихся в погибших пчелах (лож-
ный миазм).
Профилактика. Систематическая очистка пред-
летковых площадок перед ульями и территории пасеки
168
от трупов пчел. Собранный
материал сжигают.
М е р ы б о р ь б ы не раз-
работаны.
Сенотаиниоз. Поражение
медоносных, одиночных пчел
и шмелей личинками серых
мясных мух.
Возбудитель — муха
рода Senotainia. На терри-
тории нашей страны извест-
но 10 видов, в том числе в
европейской части изучены
3 вида, из них наиболее
полно—S. tricuspis (рис.
35). Самки длиной 5—8 мм,
пепельно-серые, с широки-
ми белыми полосами на го-
лове. Второй тергит брюшка
на -середине заднего края
имеет две длинные щетинки. Мухи селятся чаще по
опушкам сосновых лесов, летом обычно вблизи гнезд
шмелей или на крышках ульев. Мухи инвазируют выле-
тающих взрослых пчел на лету, откладывают на их тело
в области сочленения головы с грудью личинок. Одна
муха способна отложить 200—300 личинок. Личинки бе-
лые, веретеновидные, размером (0,5—0,9) X (0,60—
0,77) мм. Тело состоит из 13 сегментов. В течение 15 мин
они активно внедряются через тонкие хитиновые обо-
лочки шеи в грудь пчелы и располагаются между слюн-
ными железами. В последующие 36 ч — 9 сут (обычно
3—4 дня) личинка активно питается мышцами хозяина.
После гибели пчелы она достигает размера (1,1—1,3) X
Х0,3 мм и продолжает оставаться в трупе 5—7 дн. За-
тем покидает оставшуюся хитиновую оболочку и миг-
рирует в почву на глубину до 20 см, где окукливается.
Куколка боченкообразная, красновато-коричневая, раз-
мером (5,6—7,7) X (2,2—3,1) мм. Полный цикл разви-
тия паразита продолжается 28—35 дн.; зимуют куколки.
Устойчивость паразита в различных стадиях разви-
тия не изучена.
Эпизоотологические данные. Пчелы зара-
жаются в местах обитания сенотаиний. Заболевание ре-
гистрируется с июня по сентябрь, чаще во второй поло-
169
вине июля — первой декаде августа. Наиболее сильно
поражаются пчелиные семьи, расположенные на солн-
цепеке.
Патогенез. Пчелы-сборщицы погибают на 2—9-е
сутки, в большинстве случаев — на 4-е сутки. Время ги-
бели зависит от числа личинок, проникших в организм
пчелы, обычно в теле находят 2—3, реже — больше па-
разитов.
Клинические признаки. Летные пчелы боль-
шей частью гибнут вне пасеки. После неблагоприятной
погоды на пасеке появляются ползающие и прыгающие
пчелы с волочащимися крыльями (характерный приз-
нак).
Диагноз. Ставят его на основании обнаружения
на пасеках мух сенотаиний и их личинок в груди погиб-
ших пчел. Для лабораторного исследования высылают
20—30 пчел с признаками заболевания. Возбудителя
следует отличать от личинок мух, размножающихся в
трупах.
Профилактика. Пасеки размещают в местах
отсутствия мух сенотаиний.
Меры борьбы. На крышки ульев кладут листы
светлой жести или стекла белого цвета, покрытые
0,05 %-ной вазелиновой эмульсией циодрина, или уста-
навливают на крышках ульев тарелки, заполненные во-
дой, в которой тонут мухи. Мухи привлекаются водным
настоем цветов ромашки (50 г сухих цветков ромашки
заливают литром кипятка, настою дают остыть, а затем
в него добавляют 50 г сахара и 2—3 г хлебных дрожжей;
смесь используют через 12 ч после приготовления). Для
уничтожения вышедших в почву личинок в перепахан-
ную почву вносят тиазон (100 г на 1 мг). Мусор полза-
ющих и погибших насекомых на пасеке собирают и сжи-
гают; уплотняют слой земли на пасеках или кладут лис-
ты шифера перед ульями.
Лабораторно-практическое занятие 6
Цель занятия. Исследование пчел и проведение ле-
чебно-оздоровительных мероприятий. Исследовать пчел
на варрооз, акарапидоз, нозематоз, браулез, сенотаиниоз.
Провести оздоровительные мероприятия против варрооза,
акарапидоза, нозематоза, браулеза. Провести дезинфек-
цию на пасеке против нозематоза и амебиаза.
170
Оборудование и материалы: бинокулярная лупа, микроскоп,
компрессориум, предметные и покровные стекла, препаровальные
иглы, пинцеты, скальпели, ножницы, фарфоровые ступки, пипетки,
вата, препаровальные ванночки, кюветы, спиртовки, спирг-эфир,
вода, раствор краски Гимза, раствор Люголя (кристаллт:ческий
йод—1,0, йодистый калий — 2,0, дистиллированная вода — 75,0),
раствор эозина (1 : 100), фумагиллин, фольбекс, фольбекс ВА (ак-
пин, неорон), муравьиная кислота и формнцид, щавелевая кислота,
варроатин, тимол, 80 %-ная уксусная кислота, 5 %-ный раствор
натрия гидроокиси (едкого натра).
Место проведения занятия. Учебный класс, пасека.
Методика проведения занятия. Работу проводят в два
этапа: выявление неблагополучных семей на пасеках о
отбором от них проб материала и исследование в лабо-
раторных условиях. Ограниченные сведения могут быть
получены при исследовании пчел в зимовнике, более де-
тально учащиеся ознакомятся с проявлениями болезней
на пасеках в активный период жизнедеятельности пчел.
Каждому периоду осмотра соответствуют определенные
болезни и их признаки. Независимо от того, в какое вре-
мя проводят обследования, им должен предшествовать
тщательный сбор анамнестических данных у пчеловода
пасеки об отмеченных ранее и наблюдаемых в настоя-
щее время болезнях пчел (их признаки, сезон появле-
ния, продолжительность заболевания, распространение
на пасеке и окружающих пасеках, особенности прошед-
шего развития, медосбора и зимовки, количество и но-
мера слабых и плохо развивающихся семей, какие ле-
чебные, дезинфекционные и общеорганизационные меро-
приятия проводились на пасеке, их результат и пр.).
При осмотре семей пчел в зимовнике обращают вни-
мание на наличие и показания термометра и психро-
метра; состояние стен, потолка (наличие конденсата),
работу приточно-вытяжной системы вентиляции, соот-
ветствие объема помещения, его занятости семьями пчел,
особенности и правильность расположения ульев, наличие
грызунов (норы, наличие фекалий, изгрызенные остат-
ки), оборудованность ульев заграждениями от мышей,
наличие перед ульями трупов и выходящих пчел, состоя-
ние легковых отверстий (покрыты фекальными масса-
ми, закрыты трупами пчел, обледенели). В отдельные
пакеты осторожно собирают подмор со дна ульев согну-
той Г-образно проволокой для исследования; прослуши-
вают семьи пчел, выявляют погибшие (осторожно вве-
денная ладонь руки под утепление над холстиком не
171
ощущает тепла; при прослушивании после легких посту-
киваний по улью отсутствует реакция пчел).
Наличие большого количества погибших и выползаю-
щих пчел, загрязненных фекалиями летков, большой
подмор на дне улья, шума пчел в нем, отсутствие едино-
го теплового пятна над рамками улья, гибель отдель-
ных семей — все это свидетельствует о неблагополучной
зимовке пчел, в том числе вызванной инвазионными за-
болеваниями (нозематоз, амебиаз, акарапидоз, экзоака-
рапидоз, варрооз). Погибшие семьи пчел выносят из зи-
мовника, тщательно разбирают и осматривают для выяс-
нения причин гибели.
В активный период жизнедеятельности пчел после
сбора анамнеза о пасеке приступают к ее осмотру. При
внешнем осмотре выявляют сильные и слабые семьи по
лету пчел с учетом освещенности ульев пасеки. Отмеча-
ют состояние ульев, их размещение, количество погиб-
ших пчел на предлетковых площадках и около поилки,
состояние трупов взрослых пчел. При миазах на груди
или брюшке иногда заметны отверстия, при вскрытии
целых трупов обнаруживают личинок или куколок насе-
комых; при варроозе, тропилелапсозе— уродливых мел-
ких пчел и трупы. Наличие выброшенного расплода (ли-
чинки, куколки пчел) указывают на варрооз, тропилелап-
соз. Ползающие пчелы (чаще весной брюшко увеличе-
но, крылья иногда расставлены, средняя кишка увели-
чена, беловатого цвета, исчерченность сглажена) —приз-
нак нозематоза. Отдельные крылья вывернуты у пчел
весной при первом облете или после продолжительной
нелетной погоды — свидетельствует о акарапидозе. При
мермитидозе отмечают волосовидные образования в по-
лости тела. Следы испражнений, темные фекальные пят-
на на прилетной доске, передней стенке улья — признаки
нозематоза, амебиаза, наличия мутилл.
Отбирают наиболее подозрительные по заболеванию
семьи пчел. Обращают внимание на утепления улья, сос-
тояние верхних планок (большое количество мелких
клещей — признак мелиттифиоза, следов испражнений
или фекальных пятен — нозематоза), на правильность
сборки гнезда и соответствие рамок силе семьи (при ос-
мотре в период медосбора часть пчел находится вне
улья). Наличие фекальных пятен на разделительной
доске, стенках и дне улья свидетельствует о нозематозе,
амебиазе.
172
На дне улья выявляют погибших взрослых пчел, ли-
чинок, куколок, количество и состояние трупов, присут-
ствие паразитов, клещей варроа, тропилелапс, мелит-
тифис и других членистоногих, наличие кормовых запа-
сов (отдельно меда, перги) и их состояние (закисание
или засахаривание меда, заплесневение, выкрашивание
перги), состояние и внешний вид внутриульевых рабочих
пчел и матки (уродливые пчелы, наличие на пчелах бра-
ул, клещей варроа).
При варроозе, тропилелапсозе обращают внимание
на наличие яиц в ячейках сотов, расположение и состоя-
ние расплода (расплод пестрый, ячейки с разновозраст-
ным расплодом разбросаны по поверхности соты, в части
открытых ячеек — загнившая, легко выделяемая масса,
крышечки над печатным расплодом с отверстиями непра-
вильной формы, вокруг некоторых из них белая полоска).
Обнаружение легко выделяемой гнилостной массы в от-
дельных ячейках, остатков оболочек личинок и личинок,
покрытых пылевидным налетом, чаще на сотах с краю
гнезда, свидетельствует о пиемотозе.
Собранный при осмотре семей пчел материал иссле-
дуют в лаборатории на нозематоз и грегариноз. У пчелы
выделяют среднюю кишку (у насекомого отделяют го-
лову и пинцетом за последний сегмент брюшка вытяги-
вают кишечник), готовят суспензию, которую исследуют
под средним увеличением микроскопа в слегка затенен-
ном поле зрения.
Для обнаружения амеб выделенный кишечник поме-
щают в каплю воды, отходящие в концевом участке
средней кишки нитевидные образования — мальпигиевы
сосуды осторожно отделяют препаровальными иглами,
переносят в чистую каплю воды (растворы Люголя и
эозина), разрывают и растирают. Суспензию просмат-
ривают под средним увеличением микроскопа на наличие
цист и амеб или готовят окрашенный мазок, который
просматривают под иммерсионной системой микроскопа
на наличие вегетативных форм амеб.
На критидии исследуют суспензию тонкой и передне-
го отрезка задней кишки в затененном поле зрения мик-
роскопа с последующим просмотром окрашенного мазка
под иммерсионной системой. Для выявления возбудителя
акарапидоза у пчел удаляют голову, ноги, острым лезви-
ем бритвы или ножницами делают срез средней груди
(1—1,5 мм) у основания крыльев. Срезы укладывают на
173
18—24 ч в 5 %-ный раствор натрия гидроокиси или ки-
пятят 4—5 мин в нем, затем промывают водой и пинце-
том помещают на компр$ссориум между двумя стекла-
ми. Просматривают прй слабом увеличении микроскопа
на наличие измененных (с пятнами) трахей и клещей
в них.
Для детального осмотра клещей обнаруженные участ-
ки измененной трахеи переносят в каплю воды на пред-
метное стекло и просматривают в затененном поле зре-
ния под средним увеличением микроскопа. В целях иск-
лючения экзоакарапидоза 30—50 умерщвленных эфиром
пчел помещают во флакон с жидкостью Удемана (87 час-
тей спирта 70%-ного, 5 частей глицерина и 8 частей
ледяной уксусной кислоты), тщательно встряхивают
10 мин, оставляют на сутки, вновь встряхивают в тече-
ние того же времени, удаляют пчел, жидкость центрифу-
гируют (10 мин при 2 тыс. об. в минуту), осадок иссле-
дуют под микроскопом.
При варроозе осматривают тела взрослых внутрн-
ульевых пчел и куколок из печатного трутневого рас-
плода; при пиемотозе и мелиттифисе — личинок пчел
открытого расплода. Диагноз на личинок маек ставят
путем осмотра поверхности пчел-сборщиц; мелнттобий
и мутилл — по обнаружению имаго, при вскрытии подо-
зреваемых в поражении ячеек печатного расплода рабо-
чих пчел; сенотаиний . и конопид—по вскрытию тела
пчел-сборщиц, соответствующего обнаружения в груди
и брюшной полости личинок паразита. Во всех случаях
выделенных возбудителей необходимо дополнительно
изучить под сильным увеличением лупы или слабом уве-
личении микроскопа.
Контрольные вопросы
1. Какие болезни относят к инвазионным и какие возбудители
их вызывают?
2. Назовите болезни, вызываемые простейшими, и пораженные
ими органы пчел.
3. Расскажите о протозойных болезнях, имеющих широкое рас-
пространение.
4. Как поставить диагноз на нозематоз?
5. Какие болезни относят к арахиозам?
6. Как поставить диагноз на варрооз и браулез?
7. Назовите меры борьбы с акарапидозом и варроозом.
8. Какие болезни пчел относят к энтомозам?
9. Расскажите о миазах пчел.
174
10. Какой материал и в какое время года отбирают для диаг-
ностики инвазионных болезней?
11. Как ставят диагноз при инвазионных болезнях пчел?
12. Какие инвазионные болезни относят к карантинным и каке
ними бороться?
НЕЗАРАЗНЫЕ БОЛЕЗНИ
Наиболее часто на пасеках регистрируют незаразные
болезни или патологические состояния, обусловленные
нарушениями кормления, содержания и разведения пчел.
В 85—87 % случаев эти болезни приводят к гибели или
ослаблению семей пчел или являются причинами воз-
никновения заразных заболеваний.
Углеводная недостаточность (голодание, углеводная
дистрофия). Массовая гибель пчел в результате недо-
статка углеводного корма.
Этиологические данные. Болезнь наблюдают
в любое время года: весной — при израсходовании про-
шлогодних запасов, пчелином воровстве; летом — при от-
сутствии цветущих медоносов или длительной неблаго-
приятной для лета пчел погоде; осенью — при хищении
меда пчелами-воровками, осами, резком сокращении
гнезда; зимой — при недостатке кормов, неправильной
сборке гнезда, кристаллизации или брожении меда. При
беспокойстве пчел в зимний период потребление меда
увеличивается. Массовую гибель пчел от голодания ча-
ще отмечают зимой и весной.
Клинические признаки. Весной даже при
наличии в семьях меда, но в небольшом количестве (ме-
нее 8 кг), пчелы плохо выполняют внутриульевые рабо-
ты, матка сокращает откладку яиц, семьи плохо разви-
ваются. Отсутствие корма в гнезде приводит к быстрой
гибели взрослых пчел, иногда пчелы слетают, оставляя
лишенное корма гнездо. Пчелы-сборщицы погибают во
время полета, внутриульевые пчелы становятся малопод-
вижными, а затем гибнут. Около летков находят выбро-
шенных личинок и. трупы взрослых пчел, количество ко-
торых резко возрастает после неблагоприятной погоды.
У погибших пчел кишечник запустевший, вдвое сниже-
но количество глюкозы в гемолимфе. Средняя кишка
подвергается быстрому разложению.
Зимой при выслушивании гибнущих от голода семей
пчел слышен характерный звук шелеста сухих листьев.
При кристаллизации меда шум интенсивный, находят
175
много кристаллов меда на летке и дне улья; при броже-
нии меда ощущается кислый запах, вокруг летка, перед-
ней стенки улья и на сотах видны пятна испражнений,
осмотр кормовых запасов обычно подтверждает отмечен-
ные признаки. Пчелы погибают внутри улья, в ячейках
пустых сотов находят погибших пчел, расположенных го-
ловой ко дну ячейки.
Диагноз. Ставят его на основании клинических
признаков и осмотра гнезда пчел, оценки количества,
качества меда и мест положения рамок с кормом по от-
ношению к находившемуся клубу пчел в период зимов-
ки. При кристаллизации меда ячейки заполнены сухой
твердой массой корма, при закисании открытые ячейки
содержат водянистый субстрат, печатные ячейки — с вы-
пуклыми, часто прорванными выходящими газами кры-
шечками, водянистая пенистая жидкость стекает по по-
верхности сота, она покрывает дно улья и трупы пчел.
Наиболее частая причина гибели пчел от голода зи-
мой— неправильная сборка гнезд, когда находящиеся
в клубе пчелы не в состоянии перейти на имеющиеся за-
пасы корма с краев гнезда или подняться в верхний
корпус улья (при увеличенном расстоянии между рам-
ками корпусов). Погибших пчел находят в стороне или
под сотами с медом.
Профилактика. С целью предупреждения голо-
дания каждую семью пчел обеспечивают в районах Се-
вера, Урала, Сибири и Дальнего Востока не менее 28—
30 кг, а в остальных районах — не менее 18—25 кг доб-
рокачественного меда. Падевый мед, а также мед, полу-
ченный при медосборах с рапса, редьки полевой, вере-
ска, хлопчатника, подвергшийся кристаллизации, заме-
няют на сахар. Сахарный сироп скармливают с учетом
времени его переработки в течение 2—3 нед при внешней
температуре выше 12 °C и последующей замены пчел,
участвовавших в переработке сахара, на новых, идущих
в зимовку.
В центральных областях страны сахар обычно скарм-
ливают сразу же после откачки меда и заканчивают к
1 сентября. Осенью после выхода всех пчел из расплода
собирают гнезда для зимовки. Удаляют все пустые соты,
оставшиеся после выхода пчел из расплода. Полные
рамки с медом располагают по краям гнезда, а в сере-
дине помещают рамки с 1,5—2 кг меда. Для облегчения
перехода клуба пчел с рамки на рамку иногда под хол-
176
стик над центром гнезда помещают небольшую планку
или в центр гнезда ставят рамки, полностью заполнен-
ные медом, а рамки с постепенно уменьшающимся запа-
сом кормов смещают к краям улья.
Характер сборки гнезда определяется конкретно в
каждом хозяйстве опытным путем. Смещение клуба от
центра гнезда зависит от неравномерного обогрева сте-
нок улья в период зимовки. При сборке гнезд следят,
чтобы ячейки были заполнены зрелым медом (запечата-
ны).
Соты с незапечатанными, заполненными медом
ячейками (из-за несвоевременного позднего скармлива-
ния сахарного сиропа или позднего медосбора) удаля-
ют, так как такой мед склонен к закисанию, броже-
нию.
Зимой следят за показателями относительной влаж-
ности в зимовнике, увеличение влажности выше 75—
85 % будет благоприятствовать закисанию корма, сни-
жение— его кристаллизации. Весной в семьях пчел долж-
но находиться не менее 10 кг меда. В этот период про-
водят оценку количества меда, восполняют недостаток
кормов. В активный период медосбора проводят профи-
лактические мероприятия по предупреждению пчелиного
воровства и проникновению в ульи различных живот-
ных— расхитителей меда.
Меры борьбы. При отсутствии корма в семьях
им дают сахарный сироп (2 : 1), подогретый до 40—45 °C.
Сироп наливают в литровую банку, горло которой обвя-
зывают двумя слоями марли. Банку переворачивают и
ставят над клубом, тщательно утепляют. Подкормку
дают не более одного раза в месяц. Весной более удобно
подкармливать пчел закристаллизовавшимся медом в
марле или медово-сахарным тестом (канди), которые
в виде лепешки массой 200—500 г кладут в области клу-
ба на рамки под холстик. В случае кристаллизации
меда в ульях пчелам дают воду. Для этого в бутыль
с водой помещают длинный хлопчатобумажный фитиль
и конец его вводят в верхний леток улья или через про-
резь в холстике подводят прямо к клубу пчел, следят,
чтобы вода ие замерзла. При закисании меда проводят
ранний облет пчел, меняют рамки с забродившим медом
на доброкачественный.
Белковая дистрофия. Нарушения в семье пчел из-за
недостатка белка (перги).
12—381
177
Этиологические данные. Заболевание про-
является в течение всего года, однако наиболее ярко вы-
ражено в активный период жизнедеятельности пчел, осо-
бенно весной и осенью. Возникновение белковой дистро-
фии связано с недостаточным поступлением, отсутстви-
ем перги в улье, ее неполноценностью; со скармливанием
большого количества сахара при недостаточном коли-
честве перги; нарушениями процессов расщепления, вса-
сывания и обмена веществ в организме пчелы в резуль-
тате различных факторов.
Недостаток пыльцы в природе происходит из-за за-
держки цветения растений-пергоносов вследствие холод-
ной погоды, небольшого количества или отсутствия пер-
гоносов на местности. В зависимости от видов растений,
их разнообразия и состояния погодных условий изменя-
ется качество пыльцы, собираемой пчелами. Проморо-
женная, заплесневевшая или измененная в результате
жизнедеятельности клещей и других членистоногих пер-
га (пыльца) не усваивается пчелами. Дефицит перги
в гнездах часто создает сам пчеловод при размещении
пчел в теплицах, подсиливании семей открытым распло-
дом или скармливании сахара без учета количества бел-
кового корма в семье или его поступления из природы.
Патогенез. От наличия пыльцы (перги) зависят
способность пчел к выкармливанию личинок, переработ-
ке нектара в мед, отстройка сотов, устойчивость пчел
к различным заболеваниям, продолжительность жизни
пчел,, нормальное функционирование матки и трутней,
число и качество воспитываемого расплода.
В активный период жизнедеятельности в гнезде сме-
няется 4—5 поколений пчел, недостаток пыльцы в одном
из них отражается на последующих и в конечном счете
на зимовке, способности семьи к развитию в следующем
году.
Клинические признаки. Пчелы малоактивны,
недоразвиты, мелкие. Матка сокращает или прекращает
откладку яиц, личинки отстают в росте, часто находят
истонченных, удлиненных личинок. Пчелы поедают часть
личинок (каннибализм), выбрасывают их. Печатного
расплода немного, он часто пестрый. Вышедшие из ячеек
пчелы гибнут в возрасте 3—10 дн. Семьи пчел постепен-
но слабеют и погибают. Весной, поздней осенью и зимой
болезнь ускоряется при осложнении белкового голодания
нозематозом и варроозом.
178
Диагноз. Ставят его на основании учета перги
в семьях, гибели взрослых пчел, выбрасывания личинок,
сокращения или прекращения откладки яиц маткой.
Профилактика. Пчелиные семьи обеспечивают
полноценным белковым кормом. Пасеку располагают не
далее 1000 м от медоносов. В семьи пчел ставят зара-
нее заготовленные рамки с пергой. В активный период
необходимо иметь в каждой семье не менее двух сотов,
заполненных с обеих сторон пергой. Такие соты заготав-
ливают в период активного приноса пыльцы, хранят их
в сахарной пудре или в парах уксусной кислоты (см.
нозематоз).
Пополнять запасы корма на зиму сахаром следует
в умеренных количествах (5—7 кг) и обязательно в при-
сутствии достаточного количества перги в ульях. Точно
так же следует учитывать наличие белкового корма в
семьях при пополнении гнезд открытым расплодом. Для
выращивания одной личинки требуется 125—128 мг пер-
ги, т. е. приблизительно одна заполненная пергой ячей-
ка сота (140 мг).
Меры борьбы и лечение. При отсутствии пер-
ги пчелам дают в кормушках или сотах пыльцу. Пыльцу
собирают с помощью пыльцеуловителей, установленных
в активный период ее сбора пчелами на здоровых семьях.
Свежесобранную пыльцу смешивают с сахарной пуд-
рой (2:1), хорошо уплотняют, сверху засыпают слоем
сахарной пудры и хранят в плотно закрытых банках в
холодильнике ( + 4 °C). При отсутствии пыльцы пчелам
скармливают различные заменители. Однако следует
учитывать, что ни один из предложенных заменителей
или их смеси не обеспечивают эффекта, равноценного
пыльце.
Наиболее благоприятное воздействие на семьи пчел
оказывает скармливание гомогената трутней (см. вар-
рооз), препарата СОТ (Борисова и др., 1987), белково-
витаминного корма АМ-50, гидролизатов белков. В прак-
тике пчеловодства получили широкое применение сухие
дрожжи, свежее молоко, сухое молоко (порошок), сое-
вая мука и др.
Заменители используют в виде жидкого корма сов-
местно с сахарным сиропом (0,5 кг свежего молока к
1,5 кг сиропа, дают ежедневно по 300—400 г) или в виде
теста канди (4 части дрожжей + 6 частей сахарной пуд-
ры + 6 частей меда, смешать до получения однородной
12*
179
массы). Дают заменители по 500—700 г в марле или
полиэтиленовом мешочке, помещая на верхние планки
сотовых рамок.
Хороший результат получают при скармливании
3—4 раза через 24 ч по 1 л сахарного сиропа с поли-
амином (225 мл препарата + 910 г сахара + 225 мл во-
ды). Препарат лучше применять в период небольшого
поступления (или наличия) пыльцы в улей. Дрожжи
используют осенью, молочный протеин стимулирует раз-
витие пчел весной.
' Фитотоксикозы (син. нектарный, пыльцовый, частич-
но падевый токсикозы). Отравления пчел алкалоидами,
глюкозидами, эфирными маслами, органическими кисло-
тами, некоторыми сахарами при потреблении нектара,
пыльцы и пади с отдельных растений.
Фитотоксикозы пчел слабо изучены. Сведения об
отравлениях пчел на растениях в большинстве случаев
базируются на наблюдениях пчеловодов. Имеющийся
материал фрагментарен. В большинстве случаев отсут-
ствуют конкретные данные по исследованию пыльцы,
нектара, медвяной росы с ядовитых растений на наличие
и концентрацию токсических веществ в них. Специфика
проявления так называемого пыльцового токсикоза
(майской болезни) обусловлена, как показывают совре-
менные данные, микроорганизмами (см. спироплазмоз).
Поэтому нельзя считать оправданным разделение от-
равлений пчел на пыльцовый, нектарный и в ряде слу-
чаев падевый токсикозы, приводимые в ранних руковод-
ствах.
Из 19 000 видов высших растений (без учета заве-
зенных из различных частей света) нашей флоры отрав-
ления пчел могут вызывать около 80 видов, принадле-
жащих к 35 семействам. Опасность для пчел нектара и
пыльцы у многих видов этих растений непостоянна, за-
висит от условий произрастания, почв, погоды и т. д.
Возникновение фитотоксикозов связано также с обили-
ем и массовостью цветения этих растений при отсутст-
вии других источников нектара и пыльцы на местности.
Подобные ситуации возникают при определенных погод-
ных условиях, размещении пасек в местах, занятых оп-
ределенной монокультурой или в зонах выпаса скота,
который избирательно выщипывает травы, не трогая ядо-
витые. Мед, откачанный из ульев пострадавших семей,
может вызывать отравления людей,
180
Этиологические данные и клинические
признаки. Токсикозы чаще наблюдают в мае — июне,
они длятся в зависимости от срока цветения растений
10—25 дн. Развитию болезни способствуют похолодание,
дожди, засуха и другие факторы, влияющие на медосбор.
Признаки отравления появляются раньше всего у пчел-
сборщиц.
Из семи видов чемерпц (Veratrum), произрастающих
на территории Союза, отравления пчел вызывают чеме-
рица Лобеля (V. lobelianum), черная (V. nigrum), бе-
лая (V. album), даурская (V. dahuricum) и, вероятно,
другие виды чемериц. Ядовиты нектар и пыльца, содер-
жат алкалоиды протовератрин, жервин и другие, глю-
козид— вератрамарин. Отравление наступает через 2-—
120 мин. У насекомых отмечают паралич конечностей,
в первую очередь задних. Молодые пчелы более чувст-
вительны, чем старые. Пчелы, получившие ограниченное
количество нектара и пыльцы, выздоравливают. Возмож-
но отравление людей медом с примесью нектара чеме-
риц,
Нектар и пыльца репчатого лука (Alium сера) со-
держат в эфирном масле дисульфид (C6H12S2). С повы-
шением температуры при низкой влажности содержание
его увеличивается. У отравленных пчел отмечают угне-
тенное состояние, расстройство пищеварения, изменение
стенки кишечника, снижение яйцекладки у матки, час-
тично гибель личинок. Из улья выделяется неприятный
гнилостный запах.
Лютики (Ranunculus) содержат ядовитое летучее ве-
щество анемонол (протоанемонол), вызывают отравле-
ние пчел (бетлахская болезнь) ранней весной. Пчелы вы-
ходят из улья, трясутся, кружатся на земле, крылья рас-
ставлены, хоботок вытянут, брюшко уменьшено; семьи
слабеют и погибают.
Борец высокий (Acanitum excelsum) и волчий (А. 1у-
coctanum) содержат алкалоид аконитин. Признаки от-
равления у пчел наступают через 25 мин — 5 ч. Молодые
пчелы более чувствительны и погибают после конвуль-
сивных движений перед летком и на дне улья. В зави-
симости от поступившей в организм дозы и внешней
температуры пчелы-сборщнцы погибают в полете при
температуре 8—12 °C, при 20—25 °C часть их выживает.
Признаки отравления в семье продолжаются в течение
2-—13 дн, Мед, содержащий пыльцу борца высокого, вы-
181
зывает у людей обильное слюноотделение, тошноту, рво-
ту, понос, озноб, нарушение ритма сердца, общую сла-
бость.
Отравление пыльцой и нектаром конского каштана
(Aesculus hippocastaneum), калифорнийского (A. call*
fornica), павия (A. pavia), содержащими смесь сапони-
нов (эскулюссапонин, эскулин и др.), регистрируется в
период засушливой погоды. Отравление (болезнь Бука)
характеризуется дрожанием взрослых пчел, потерей ими
волосков с тела и способности к полету, гибелью молодо-
го расплода, деформацией тела куколок и их гибелью,
вышедшие из ячеек пчелы часто без ног и крыльев, мель-
че обычного, матки уродливые (шмелевидные), отрутне-
вевают.
Рододендроны (Rhododendron) желтый (R. luteum),
понтийский (R. ponticum), кавказский (R. caucasicum)
и другие содержат грайянотоксины. Летные пчелы по-
гибают у растений или на территории пасеки. В даль-
нейшем признаки болезни появляются в семьях, пчелы
возбуждены, стремительно вылетают из улья и падают
на предлетковую площадку. Лежат на боку или спи-
не с согнутым брюшком и иногда с расставленными
крыльями, крутятся на одном месте и интенсивно жуж-
жат. Возбуждение через 8—10 мин сменяется угнете-
нием, параличом ножек, усиков, длительным подерги-
ванием телом и гибелью. Погибают матки, трутни, от-
крытый расплод, а затем печатный. Признаки пораже-
ния более выражены в сильных семьях, продолжаются
2—3 дня, при значительных запасах ядовитого («пьяно-
го») меда в гнезде могут наблюдаться длительное вре-
мя. Семьи пчел значительно ослабевают, часть их поги-
бает.
Диагноз; Устанавливают его пр признакам отрав-
ления: гибель через продолжительное время после на-
ступления изменений в поведении (часть пчел выздо-
равливает). Фитотоксикозы регистрируются в период
цветения определенных растений. Окончательный диаг-
ноз может быть поставлен в лаборатории: по строению
зерен пыльцы из меда и нектара определяют вид расте-
ния, проводят специальные исследования на алкалоиды,
глюкозиды, исключают инфекционные заболевания.
Профилактика. Вокруг пасеки сеют медоносы.
Меры борьбы. В пострадавших семьях удаляют
кормовые запасы, подкармливают пчел жидкшм (1:2 или
182
1:3) сахарным сиропом в течение 1—2 дн. Собирают
пчел с признаками паралича около ульев, рассыпают
их тонким слоем (около 0,5 см) в ящик и вносят его
в теплое (22—25 °C) помещение, по мере восстановле-
ния способности пчел к полету их выпускают. Дресси-
руют пчел на неядовитые растения.
Падевый токсикоз. Заболевание пчел, вызванное на-
личием пади в корме пчел.
Этиологические данные. Падь — сладкая
клейкая жидкость растительного или животного проис-
хождения. Образуется отдельными растениями (медвя-
ная роса) или представляет собой выделения тлей, чер-
вецов, листоблошек, нимф пенниц, питающихся соками
растений. Падевыделение обильно в лесной зоне. В ря-
де стран Западной Европы падь является источником
медосбора. Один гектар вяза в условиях Рязанской об-
ласти дает до 726 кг пади, а липы — 774 кг. Выделению
пади способствует жаркая сухая погода во второй по-
ловине лета.
Падевый мед обычно темного цвета (падь с пихты
и тальника дает прозрачный светлый мед), содержит в
8,6—10 раз больше минеральных солей, непереваримых
для пчел сахаров (мелезитозы, маннозы и др.), спор во-
дорослей, грибов, токсинов последних и различных твер-
дых аэрозолей из атмосферы.
Патогенез. Высокое содержание мелезитозы в па-
девом меде приводит к кристаллизации зимних запасов
корма, в результате чего может наступить гибель пчел
от голодания. Содержание большого количества спор гри-
бов при плохом инвертировании сахара в зимних запа-
сах вызывает взбраживание меда.
В результате потребления падевого меда в условиях
зимовки резко перегружается кишечник пчел балласт-
ными веществами. Из-за изменения соотношения калия-
натрия развивается жажда у пчел, нарушается целост-
ность перитрофической мембраны кишечника. Все это
приводит к возбуждению пчел.
Клинические признаки. В лабораторных ус-
ловиях признаки заболевания пчел отмечают через 48 ч,
гибель наступает на 3—6-й день. В естественных усло-
виях зимой течение болезни продолжительное. Север-
ные породы пчел по сравнению с южными более ус-
тойчивы к заболеванию. Пчелы беспокоятся, около лет-
ков и на дне улья много погибших пчел. На передней и
183
внутренних стенках ульев и на сотах пятна испраж-
нений. При вскрытии ульев ощущается неприятный за-
пах. У живых пчел брюшко увеличено, средняя кишка
дряблая, темно-коричневого цвета, легко рвется. При
падевом токсикозе обычно отмечают много погибших
пчел на пасеке или рядом с пасекой.
Проявление падевого токсикоза в активный период
жизнедеятельности семей пчел — явление сравнительно
редкое. Известные в литературе случаи падевого токси-
коза с течением болезни 2—3 дня, повышенной гибелью
молодых пчел, матки и расплода скорее всего связаны с
наличием алкалоидов и глюкозидов (см. фитотоксикоз)
в пади.
Диагноз. Ставят его на основании этиологических
данных, клинических признаков заболевания, результа-
тов вскрытия пчел и лабораторного исследования меда
на наличие пади, исключение других заболеваний.
Падевый мед в сотах выглядит в виде темно-коричне-
вых островков, он более вязок, цветочный запах отсутст-
вует (при взятии его горячей чайной ложкой или раз-
мешивании в стакане с горячей водой), иногда имеет
своеобразный привкус.
Профилактика. В период отсутствия медосбора
в данной местности проводят посевы медоносов с уче-
том сроков цветения. Перед формированием зимних за-
пасов мед исследуют на падь. Заменяют недоброкачест-
венный мед на цветочный. В лесной зоне обязательно
часть корма заменяют на сахар.
Меры борьбы. При неблагополучной зимовке да-
ют пчелам воду, снижают температуру в зимовке до
— 1 °C. Проводят сверхраннюю выставку пчел для очис-
тительного облета, пчел пересаживают в чистые ульи,
гнездо сокращают, утепляют, дают доброкачественный
корм.
Химический токсикоз. Отравление пчел химическими
веществами.
Этиологические данные. Отравление пчел
токсическими веществами связано в основном с широким
использованием пестицидов для борьбы с вредителями
сельскохозяйственных культур; промышленными выбро-
сами различных предприятий, реже с применением за-
грязненного солями (в основном хлористого натрия) са-
хара на корм пчелам (солевой токсикоз).
Поступающие в окружающую среду в виде газообраз-
184
ных, жидких или твердых частиц различные химические
вещества обычно заносятся пчелами в улей, и их кон-
центрация в гнезде может быть в 1000—100 000 раз боль-
ше, чем в воздухе, и в 1000—10 000 раз выше, чем в
растениях. Благодаря этой особенности гнезда пчел ис-
пользуют для индикации состояния окружающей среды.
Вместе с тем это свойство делает пчелу особенно уязви-
мой к различным загрязнениям.
Степень и характер проявления отравлений зависят
от количества, химических и физических свойств ве-
ществ или используемых препаратов, способов, условий и
сроков их внесения в окружающую среду, фазы разви-
тия и видового состава растительности, погодных усло-
вий и времени детоксикации (обезвреживания) в при-
роде.
Отравления пчел пестицидами обычно наблюдаются
при несвоевременной информации пчеловодов о време-
ни, месте и характере химических обработок, при нару-
шении правил обработки, отсутствии на пасеках соот-
ветствующего оборудования для изоляции пчел в улье,
несвоевременной перевозке семей пчел в безопасное мес-
то. Причиной отравления могут служить также непра-
вильное хранение ядохимикатов, небрежная работа при
составлении рабочих растворов пестицидов.
Патогенез. Отравление пчел зависит от химиче-
ской природы веществ, способа его проникновения в ор-
ганизм. Фосфорорганические соединения блокируют фер-
мент холинэстеразу, участвующую в передаче возбуж-
дений в ганглиях нервной системы. Многие хлороргани-
ческие пестициды нарушают калий-натриевое соотноше-
ние в мембранах нервных волокон. Фтор в виде фторис-
того водорода и фторида кремния действует как дыха-
тельный яд, разрушая стенки трахеи пчелы, при поступ-
лении с кормом нарушает процессы гликолиза и мине-
ральный обмен. Мышьяк блокирует ферментные процес-
сы, хлористый барий нарушает водный баланс.
В первую очередь отравлению подвергаются пчелы-
сборщицы. На степень отравления влияют сила семей,
порода и возраст пчел. После посещения подвергшихся
обработке цветков пчелы-сборщицы заносят нектар и
пыльцу в улей. Поступивший корм передается от пчелы
к пчеле, поступает к матке, трутням, личинкам.
Клинические признаки. Различают сверхост-
рое, острое и хроническое течения отравления. Сверхост-
185
рое течение возможно при сборе нектара, содержащего
высокотоксичные вещества, поступлении в организм боль-
ших доз препарата при обработке работающих в поле
пчел ядохимикатами контактного или фумигантного дей-
ствия, промышленном выбросе опасных веществ в высо-
ких концентрациях. Пчелы обычно погибают в поле, не
долетев до улья. Семьи ослабевают из-за потери летной
пчелы. Степень ослабления зависит от числа вылетевших
из улья пчел-сборщиц.
В период интенсивной работы пчелиной семьи отрав-
ление летных пчел настолько значительное, что остав-
шиеся в улье пчелы не покрывают полностью расплод
и он гибнет от голода и охлаждения.
Сверхострое отравление возможно также при внесе-
нии пестицидов в семьи пчел, особенно при закрытом
летке. В этом случае на дне улья отмечают массу погиб-
ших пчел, нередко оборваны и деформированы соты.
Острое течение отравлений бывает чаще. Это отме-
чается при занесении пчелами нектара или пыльцы, со-
держащих медленнодействующие вещества или небольшую
концентрацию высокотоксичных- соединений. При отрав-
лении пчелы становятся злобными. Около летка находят
большое количество погибших и погибающих взрослых
насекомых, выброшенный расплод. Обычно гибели пчел
предшествует стадия возбуждения, сменяющаяся угне-
тением. Выраженность этих стадий бывает неодинаковая.
У погибающих пчел отмечают параличи крыльев, ног,
они выбрасывают содержимое зобика (рвота), редко
наблюдают понос. При вскрытии погибших пчел их ки-
шечник часто не содержит корма, средняя кишка укоро-
чена.
Возможна гибель маток, реже — открытого рас-
плода. Сильное ослабление семей из-за потери летной
пчелы приводит к гибели оставшегося расплода.
Хроническое течение отравления возникает при пос-
туплении в улей сублетальных (не вызывающих гибель)
количеств пестицидов, промышленных выбросов (соли
свинца, кадмия и некоторых других элементов), пере-
становке сотов с кормом из семей, ранее погибших от от-
равления, скармливании загрязненного различными со-
лями сахара (солевой токсикоз). Из-за постоянной по-
вышенной гибели пчел семьи плохо развиваются. В пе-
риод зимовки у таких семей образование зимнего клуба
нарушается, пчелы выползают из улья и погибают, со-
186
ты, передняя и внутренние стенки покрыты пятнами исп-
ражнений.
Диагноз. При отравлении пестицидами и промыш-
ленными выбросами принимают во внимание внезап-
ность и одновременность гибели пчел в большинстве и
во всех семьях пасеки. Пасеки обследуют комиссионно.
Составляют акт о нанесенном ущербе, приводят данные
о применяемых пестицидах (промышленных выбросах),
способах и времени их внесения, расположении цветущих
медоносов (перганосов) по отношению к обработанным
участкам, о наличии на указанной территории водных
источников, признаках гибели пчел. Берут пробы для
исследования в лаборатории: не менее 500 пчел в стек-
лянной чистой посуде, 100 г меда, кусок сота 15X15 см
с пергой, а также любой другой материал из семей пчел
или пасеки с наличием подозрения на загрязнения хи-
мическими соединениями. При исследовании на солевой
токсикоз высылают 200—300 г сахара, из которого гото-
вили сахарный сироп.
Пробы опломбируют и высылают вместе с сопроводи-
тельным документом и копией акта обследований. В со-
проводительной указывают, на какой яд следует провес-
ти исследование. Отбирают и доставляют пробы в ла-
бораторию в возможно короткое время, так как некото-
рые пестициды нестойки и быстро разрушаются.
Профилактика. За 3—5 дн. удаляют на 5—7 км
пасеки из мест, где предусматривается применение пести-
цидов. Пасеки возвращают на свое место через 10—
14 дн. после окончания обработки. При невозможности
вывоза пчел гнезда расширяют пустыми сотовыми рам-
ками, магазинными надставками с 4—5 сотами и сверху
накрывают сетками, используемыми при кочевках. На
сетки кладут холстики и накрывают крышкой улья. Ве-
чером непосредственно перед обработкой летки закры-
вают, удаляют из улья холстики, снимают прилетные
доски, приподнимают крышку улья на 1,5—2 см с над-
ветренной стороны. В жаркую погоду укрывают крышки
ульев травой или ветками. Пчелам ежедневно дают в
сотах до 1,5 л воды или увлажняют положенную на
кочевую сетку вату (мешковину).
С целью предупреждения отравления в период обра-
ботки семьи пчел также заносят в зимовник. Длитель-
ность изоляции пчел зависит от времени распада (дето-
ксикации) • используемых пестицидов в окружающей
187
среде и колеблется от 1 до 7 сут; при пониженной внеш-
ней температуре и высокой влажности срок изоляции
увеличивают на 1—2 дня, при обработке в теплицах —
на 2—3 дня.
Следует избегать размещения пасек вблизи метал-
лургических комбинатов, фосфатных, стекольных, кир-
пичных заводов, теплоэлектростанций, около дорог с ин-
тенсивным автомобильным движением.
Меры борьбы. При отравлении семьи пчел со-
кращают и утепляют, из улья удаляют рамки с незапе-
чатанным медом и пергой. В гнезде оставляют такое
количество расплода, которое может быть покрыто пче-
лами. Семьям в течение 3—4 дн. дают жидкий сахар-
ный сироп. Освободившиеся ульи очищают, промывают
5 %-ным раствором щелочи, затем чистой водой и про-
жигают огнем паяльной лампы до легкого побурения.
Сотовые рамки с медом и пергой от погибших семей пе-
ретапливают на воск, последний используют для техни-
ческих целей.
При появлении признаков неблагополучной зимовки
пчел из-за наличия недоброкачественного корма (суб-
токсические дозы пестицидов, солевой токсикоз) ульи
рано выставляют из зимовника, заменяют корм на доб-
рокачественный.
Застуженный расплод. Гибель расплода, появление
уродливых пчел в результате охлаждения семьи.
Этиологические данные. Застуженный рас-
плод чаще наблюдают весной; он возникает при резком
снижении температуры окружающего воздуха, плохом
утеплении гнезда, потере значительного количества пчел
в результате отравлений и заболеваний, при длительном
выдерживании сотов с расплодом вне гнезда пчел.
Клинические признаки. Погибший открытый
и печатный расплод обычно находят сбоку и внизу ра-
мок, чаще — по' их периферии. Личинки увеличиваются
в объеме и остаются без изменений. Цвет их вначале
желто-белый, концевые сегменты сероватые, затем они
становятся темно-коричневыми, черными. Ткань сухая,
крошащаяся, иногда водянистая, мажущаяся, Ощуща-
ется слабый запах сероводорода или кислый. Гибель пе-
чатного расплода обнаруживают позже. Крышечки его
иногда с отверстиями. На груди и брюшке куколок нахо-
дят темно-зеленые, серо-зеленые и коричневые пятна,
глаза их быстро темнеют. Постепенно куколки превра-
188
щаются в темно-коричневые мумии, легко удаляемые из
ячеек.
Диагноз. Ставят его по признакам заболевания.
При посеве из трупов личинок и куколок микроорганиз-
мы не выделяются или обнаруживают банальную микро-
флору.
Профилактика. В период холодной и неустойчи-
вой погоды пчел содержат в сжатом утепленном гнезде,
весь расплод внутри его должен быть покрыт взрослыми
пчелами. Не следует осматривать гнездо в это время.
В случае осмотра гнезда нельзя длительно держать со-
ты с расплодом вне улья.
Меры борьбы. При обнаружении погибшего рас-
плода его удаляют, гнездо сокращают и утепляют, при
необходимости пополняют кормовые запасы.
Запаривание пчел. Быстрая гибель взрослых пчел и
расплода в результате повышения температуры и влаж-
ности.
Этиологические данные. Болезнь возникает
при возбуждении пчел в ульях с закрытыми летками и
недостаточной вентиляции при перевозке пчел, изоляции
их во время обработок пестицидами, транспортировке
маток, пакетов или содержании роя в тесной, плохо вен-
тилируемой роевне.
Клинические признаки. Слышится сильный
шум, потолочные доски или укрывающие рамки холсти-
ки, а иногда и стенки улья сильно нагреты. Затем шум
стихает, из летка улья нередко вытекает мед. При ос-
мотре гнезда находят массу погибших или погибающих,
покрытых медом черных пчел, соты оборваны. Незна-
чительная часть оставшихся живых пчел быстро и бес-
цельно перемещаются по стенкам улья, машут крылья-
ми, последние теряют прозрачность.
Диагноз. Ставят его на основании осмотра пчел и
состояния гнезда.
Профилактика. Для предупреждения запарива-
ния при перевозках, пересылках пчел или изоляции се-
мей в ульях оставляют ограниченные запасы печатного
меда, создают свободное пространство внутри улья, вен-
тиляционные отверстия закрывают от проникновения
света.
Меры борьбы. Необходимо быстро открыть гнез-
до, предоставить пчелам свободный вылет, очистить дно
улья от погибших пчел и оборванных сотов.
189
Стерильные яйца (син. замерший или сухой засев).
Внешне нормальные, отложенные маткой яйца не раз-
виваются, или эмбриональное развитие в них прекраща-
ется на определенной стадии.
Этиологические данные. Причины появления
стерильных яиц недостаточно выяснены. Предполагают,
что они могут быть связаны с наличием триплоидных
(с утроенным набором хромосом) маток, которые дают
в потомстве полностью или частично нежизнеспособные
яйца. В других случаях матка откладывает яйца с внут-
рихромосомными структурными нарушениями, при этом
около 5 % яиц дают нормальных здоровых пчел. Нару-
шения нормального развития в яйцах наблюдают у ма-
ток медоносной пчелы, инструментально осемененных
спермой трутней среднёиндийской пчелы.
Клинические признаки. Семьи пчел с подоб-
ного рода нарушениями слабые, в ячейках рабочих
пчел и трутней видны яйца с различной степенью накло-
на ко дну ячейки и неодинаковой степенью развития (от
первого расщепления яйца до полного развития личинки
в яичной оболочке, последняя часто сморщивается). Ря-
дом с лежащим яйцом матка откладывает второе. Иног-
да отмечают откладку стерильных яиц маткой после пе-
риода нормальной яйцекладки. Личинки в ячейках со-
тов отсутствуют или имеются в ограниченном количе-
стве. Взрослые пчелы обычно удаляют погибшие яйца
или рядом с ними (обычно у яиц со сформировавшейся
личинкой) откладывают корм. Считается, что послед-
ний случай связан с недостатком личиночного корма
из-за отсутствия необходимого количества пчел-корми-
лиц в отрутневевших семьях, полученных налетом на
матку. Однако последующие исследования показали, что
в некоторых хозяйствах с близкородственным разведе-
нием до 17,5 % маток дают стерильные яйца.
Меры борьбы. Замена маток в неблагополучных
семьях пчел на полноценных маток из другой местности.
Генетическая летальность (син. незаразный генети-
ческий пестрый расплод, замерший или пустой рас-
плод). Поражение, характеризующееся наличием пест-
рого расплода в семье пчел в связи с гибелью личинок,
предкуколок и куколок, имеющих летальные гены.
Этиологические данные. Поражение обычно
встречается при длительном близкородственном разве-
дении; спаривание маток с трутнями от маток-сестер
190
приводит к рождению диплоидных трутней. Потери от
генетической летальности варьируют в поколениях от
единичных погибших особей (такие потери остаются не-
замеченными пчеловодом, так как пчелы быстро удаля-
ют погибшую особь) до гибели 18% рабочих пчел и
трутней.
Клинические признаки. Личинок диплоид-
ных трутней в течение 6 ч после их выхода из яйца съе-
дают рабочие пчелы. Количество таких личинок в от-
дельных семьях может достигать до 47 %. Однако пора-
жение чаще устанавливают на печатном расплоде. Боль-
ше гибнут предкуколки. Они серого или черного цвета,
мешкоподобные, с водянистым содержимым, часто сход-
ны с признаками мешотчатого расплода. Отмечают так-
же гибель куколок, имаго, которые не в состоянии
вскрыть крышечку ячейки и погибают внутри ее, семьи
плохо развиваются, расплод пестрый.
Поражение следует дифференцировать от гибели ли-
чинок и куколок пчел в результате мешотчатого рас-
плода и от других инфекционных заболеваний.
Меры борьбы. Смена маток в неблагополучных
семьях. Завоз маток и трутневого расплода из благопо-
лучных хозяйств другой местности.
Болезни маток и трутней. Помимо отмеченных об-
щих болезней рабочих пчел, маток и трутней, у послед-
них могут наблюдаться и специфические функциональ-
ные нарушения.
Этиологические данные. Некоторые молодые
матки, выведенные в период длительной неблагоприят-
ной погоды или поздним летом и осенью при отсутствии
трутней, откладывают неоплодотворенные яйца, дающие
трутней. Аналогичное явление происходит у старых ма-
ток или маток с недостаточным количеством спермы в
семяприемнике. Иногда отмечают трутовочность маток.
В ряде случаев матки оказываются бесплодны из-за на-
рушения обменных процессов (атрофия яичника, амило-
идное перерождение), различных уродств в строении
отделов полового аппарата, нарушения проходимости
яйцевыводящих путей, из-за закупорки их спермой, час-
тями полового члена трутня, сдавливании опухолями,
фекальными массами и т. д.; охлаждения. Обычно та-
кие матки удаляются рабочими пчелами.
При взятии некоторых молодых, интенсивно откла-
дывающих яйца маток за крылья они свертывают брюш-
191
ко, вытягивая его вершину вперед к голове, и момен-
тально становятся жесткими: состояние неподвижности
продолжается от нескольких минут до часа, иногда от-
мечают гибель маток. Этот феномен называют каталеп-
сией маток.
Функциональные нарушения у трутней менее изуче-
ны. Стерильность их отмечают при отсутствии семенни-
ков, перерождении стенок семенных пузырьков, наруше-
нии подвижности спермиев (кольцевидные спермин).
При близкородственном разведении у трутней сни-
жается продолжительность жизни, повышается чувстви-
тельность к снижению температуры, сокращаются число
вылетов и длительность полета, уменьшается число
скермиев. Оплодотворенные такими трутнями матки не-
полноценны.
При гибели (удалении) или плохой матке и отсутствии
в гнезде яиц и 1—3-дневных личинок у части рабочих
пчел развиваются яичники и такие пчелы-трутовики на-
чинают откладывать неоплодотворенные яйца (отрутне-
вение семьи).
Клинические признаки; Трутовики отклады-
вают яйца беспорядочно как в очищенные, так и в не-
очищенные ячейки, иногда в ячейки, содержащие неболь-
шое количество меда и перги. Яйца кладут, прикрепляя
к стенке ячейки, часто в одну ячейку кладут несколько
яиц. Каждая трутовка способна отложить от 19 до 32 яиц.
Такие семьи ослабевают, содержат большое количество
разбросанного по соту трутневого расплода (горбатый
расплод); запасы корма отсутствуют.
Диагноз. Ставят его по результатам осмотра гнез-
да (отсутствие или небольшое количество яиц, личинок,
их возраст; печатный расплод и соотношение ячеек с
трутнями и рабочей пчелой; присутствие маточников).
При наличии выброшенной из улья живой или недавно
погибшей матки возможно ее исследование в лаборато-
рии на болезни.
Профилактика. Не допускают родственного раз-
ведения маток. Обеспечивают правильное содержание и
кормление пчел. На пасеках содержат 20 % запасных
маток. Следует избегать брать руками маток.
Меры борьбы. Необходимо заменить матку. При
гибели матки успех приема новой в семью зависит от
длительности безматочного состояния семьи и времени
года (весной пчелы лучше принимают маток, чем в ав-
192
густе — сентябре). В отрутневевшей семье удаляют из-
быток корма (или на 2 дня заносят в прохладное поме-
щение) и весь расплод; ставят в нее соты с яйцами и от-
крытым расплодом из нормальных семей в таком коли-
честве, которое могут обогреть и кормить имеющиеся
взрослые пчелы. Через 6—8 дн. расплод (после запеча-
тывания) удаляют в семью, откуда он был взят ранее,
и в исправляемую семью вновь помещают максималь-
ное количество открытого расплода и яиц. Спустя 6—
8 дн. удаляют образовавшиеся маточники, оставляют
часть печатного расплода и вводят матку.
Незаразные заболевания как факторы, способствую-
щие развитию инфекционных и инвазионных болезней.
Нарушения в кормлении, содержании и разведении пчел
являются благоприятными факторами развития на пасе-
ках различных заболеваний.
Из-за недостатка корма плохо развиваются семьи
пчел; старые насекомые не заменяются новыми, вышед-
шими из расплода, увеличивается обсемененность гнез-
да различными возбудителями, накопившимися в более
взрослых пчелах. В результате интенсивной нагрузки
взрослых пчел по выращиванию расплода продолжитель-
ность их жизни и устойчивость к заражению снижаются.
Плохое развитие весеннего поколения пчел отражается
на последующих (всего в течение активного периода сме-
няется 4—5 поколений), в результате в зимовку идут
пчелы, которые не могут обеспечить ухода за распло-
дом в следующем году. Кроме того, такие пчелы недос-
таточно устойчивы претив развития вирусов, сохраняю-
щихся в их организме, или других возбудителей, посту-
пающих извне. Гибель пчел, содержащих в своем орга-
низме недостаточное количество белка, ускоряется при
нозематозе, варроозе, которые приводят к еще больше-
му увеличению дефицита протеина.
Недоброкачественные корма с содержанием субтокси-
ческих доз пестицидов, большое количество неперевари-
мых веществ (падевый токсикоз, различные добавки в
кормах осенью) способствуют нарушению целостности
перитрофической мембраны средней кишки, облегчая
проникновение возбудителей нозематоза, сальмонеллеза,
гафниоза, колибактериоза. Перегрузка задней кишки не-
переваримыми остатками корма вызывает дефекацию
пчел в улье и тем самым способствует перезаражению
их внутри семьи.
13—331
193
Нарушения в содержании пчел также приводят к ря-
ду нежелательных явлений в семье, способствующих их
повышенной восприимчивости к заболеваниям. Беспо-
койство пчел в период зимовки мышами, различного ро-
да сотрясениями здания (при расположении зимовника
вблизи дорог, предприятий, от ударов веток деревьев
и т. д.) вызывает повышенное возбуждение пчел, боль-
шее потребление корма, в результате чего пчелы испраж-
няются в улье и перезаражаются возбудителями различ-
ных кишечных инфекций. Этому же способствует по-
вышенная влажность в зимовнике.
В активный период повышенная влажность в улье
(размещение его без подставки на почве) приводит к
более интенсивному развитию клеща варроа. Содержание
пчел в гнездах на сотах более 3 лет эксплуатации спо-
собствует возникновению гнильцовых заболеваний, но-
зематоза и других заразных болезней. Накоплению в
гнездах опасных для пчел возбудителей также способст-
вует отсутствие систематической очистки и дезинфекции
ульев, сотов, инвентаря и оборудования пасеки; переда-
ча возбудителей внутри пасеки или пасек возможна при
скармливании сахарного сиропа из общей кормушки.
Нарушение в разведении семей пчел — немаловаж-
ный фактор, приводящий к появлению различных бо-
лезней. Часто используемый прием усиления семей за
счет переноса сотов с расплодом и обсиживающими его
пчелами является одним из ведущих факторов в рас-
пространении заболевания внутри пасеки. Таким путем
могут быть переданы практически все заразные заболе-
вания (аналогичное действие оказывает обезличенная
постановка в улей сотов для осушки после откачки меда,
или сотов с кормами, заготовленными больными семь-
ями). Размножение и содержание пораженных семей
приводят к большей концентрации возбудителя на ог-
раниченной территории пасеки. Занос патогенов на па-
секу часто наблюдается при отлове роев неизвестного
происхождения, покупке маток или пакетов с неблаго-
получных пасек.
Одним из факторов, вызывающих в последнее время
заболевания пчел, является лекарственный токсикоз —
нарушение в организме пчел в результате неправильного
использования лекарственных веществ. Неумеренное
применение антибиотиков с целью стимуляции развития
семей, предполагаемой профилактики или лечения без
194
учета чувствительности возбудителя к ним создает опас-
ность попадания препаратов в пищевой мед и другие
продукты пчеловодства, вызывает образование устойчи-
вых патогенов к лечебным средствам, приводит к изме-
нениям в организме пчел. В таких семьях пчел в после-
дующем часто возникают мешотчатый расплод или ас-
косфероз. Использование непроверенных средств лече-
ния или нарушение наставлений по их применению в от-
ношении дозы, кратности и времени обработки обычно
ведут к загрязнению пищевого меда применяемыми ле-
чебными средствами, ослаблению и гибели семей пчел.
Следует всегда помнить, что:
использование лекарственных средств в пчеловодст-
ве является крайней мерой, когда все остальные спосо-
бы ликвидации заболевания не дают результатов;
применение препаратов дает эффект только в соче-
тании с приемами по улучшению кормления, содержа-
ния и разведения пчел;
ни одно из средств, особенно в запущенных случаях
заболевания, не дает 100 % эффективности, многие из
них обладают побочным нежелательным действием;
использование лечебных средств приводит к увеличе-
нию экономических и трудовых затрат на содержание
пасеки.
Борьба с болезнями пчел должна базироваться в ос-
новном на профилактике: размножении и содержании на
пасеке хорошо развивающихся семещ систематической
жесткой выбраковке слабых, получении полноценных ма-
ток из здоровых, не подверженных заболеванию семей
пчел пасеки и систематической (через каждые 1—2 го-
да) замены маток в гнездах пчел на новых, выведенных
в устойчивых к заболеваниям, хорошо развивающихся
семьях пчел. На пасеке также постоянную ведут рабо-
ту по сохранению и поддержанию семей пчел в крити-
ческий период их жизнедеятельности — смене поколения
пчел весной; по отстройке сотов, ежегодно заменяя и
выбраковывая не менее !/з имеющихся; осуществляют
мероприятия, направленные на улучшение кормления, со-
держания, развития пчел, дезинфекцию сотов, ульев, ин-
вентаря и оборудования; поддерживают чистоту и поря-
док на пасеке.
Дифференциальная диагностика. Диагностика неза-
разных болезней пчел складывается в основном из ре-
зультатов осмотра семей пчел, зимовника, территории па-
13’
195
секи, сбора анамнестических данных по особенностям
кормления, содержания и разведения пчел; анализа сос-
тояния на ряде соседних пасек. Лабораторные исследо-
вания необходимы при подозрении на падевый, хими-
ческий токсикозы, исключении возбудителей инфекцион-
ных и инвазионных болезней, имеющих сходные клини-
ческие проявления.
Диагностика болезней пчел очень трудна, учитывая
сходство признаков поражения, частое наличие смешан-
ных заболеваний и носительства возбудителей. Поэтому
в каждом конкретном случае диагноз ставят на основа-
нии эпизоотологических данных, признаков заболевания
и результатов лабораторного исследования. Значение
каждого из этих компонентов в отдельности для поста-
новки диагноза относительно.
Эпизоотологические данные учитывают: наличие за-
болеваний на пасеке в прошлом, отлов роев и приобре-
тение семей пчел (пакетов, маток, расплода, сотов, уль-
ев и инвентаря) с других пасек, наличие заболеваний на
соседних пасеках, в том числе при перевозке семей пчел
на медосбор, время появления заболевания в настоящем
и др. Нозематоз, амебиаз, гафниоз, сальмонеллез, коли-
бактериоз, европейский гнилец, филаментовироз и дру-
гие чаще проявляются весной. В конце весны и первой
половине'лета регистрируют мешотчатый расплод, аско-
сфероз, химический токсикоз, летом — хронический пара-
лич, американский гнилец, различные энтомозы, осенью —
варрооз, зимой — падевый и химический токсикозы, но-
зематоз, варрооз.
При получении эпизоотологических данных следует
учитывать их относительность, они не всегда полны; све-
дения при опросе требуют многократной проверки из-за
возможной фальсификации; многие болезни могут про-
являться в различное время года.
Более информативные сведения получают при осмот-
ре семей пчел. При этом учитывают:
количество погибших пчел на предлетковых площад-
ках. Гибель пчел может быть естественной (5—10 экз.);
количество погибших насекомых может быть большим
при наличии старых пчел (черные, блестящие) в семье,
особенно весной, а также в случае нападения чужих
пчел (борьба их на предлетковой площадке); при хими-
ческом токсикозе и других заболеваниях;
состояние трупов пчел. При септицемии трупы легко
196
распадаются при прикосновении к ним; при миазах —
на груди или брюшке иногда заметны отверстия от вы-
шедших личинок насекомых; при варроозе, тропилелап-
созе, египтовирозе — уродливые, мелкие пчелы и трутни;
мелкие пчелы и трутни встречаются при использовании
старых сотов; уродства могут отмечаться при близкород-
ственном разведении;
выброшенный расплод около ульев наблюдается при
механическом повреждении его во время осмотра, попада-
нии на поверхность личинок посторонних веществ (при
опылении или опрыскивании лекарственными препара-
тами); при голодании и перегревании пчел; при нали-
чии заболеваний расплода (варрооз, тропилелапсоз, ев-
ропейский гнилец, аскосфероз, аспергиллез, мешотчатый
расплод, египтовироз и др.);
ползающих пчел около улья наряду с подмором от-
мечают при ряде заболеваний: нозематозе (чаще весной,
брюшко пчелы увеличено, крылья иногда расставлены
в стороны, при вскрытии средняя кишка увеличена, бе-
ловатого цвета, исчерченность сглажена), падевом ток-
сикозе (средняя кишка у ползающих пчел черного, тем-
но-коричневого цветов, легко рвется при выделении), спи-
роплазмозе (задний отдел кишечника переполнен плот-
ным содержимым желтого цвета, иногда переполнена
средняя кишка), акарапидозе (весной или после дожд-
ливой холодной погоды наблюдают отдельных пчел с
вывернутыми крыльями), хроническом вирусном пара-
личе (черные пчелы, резкое возбуждение у отдельных
насекомых), различных вирозах, бактериозах, сопровож-
дающихся размножением в гемолимфе микроорганизмов,
риккетсиозе (дрожащие, скапливающиеся отдельными
кучками пчелы с белой гемолимфой), химическом ток-
сикозе (часть пчел резко возбуждена, часть находится в
угнетенном состоянии, много трупов), миазах (брюшко
увеличено, на теле погибающих пчел иногда заметны
отверстия ст вышедших личинок);
большого количества пчел, свисающих с прилетной
доски (некоторые пчелы активно вентилируют улей), от-
мечается при перегревании семьи, при передозировке
некоторых лекарственных препаратов;
наличие на прилетной доске, передней стенке улья, вок-
руг леткового отверстия, сотах и внутренних стенках улья
темных пятен фекалий при нозематозе, амебиазе, коли-
бактериозе, сальмонеллезе, гафниозе;
197
неприятный, несвойственный запах при вскрытии
улья отмечают при гнильцах, различного рода заболе-
ваниях пчел, сопровождающихся расстройством кишеч-
ника, при химическом токсикозе;
отсутствие яиц в ячейках сота в активный период
жизнедеятельности пчел при прекращении откладки яиц
маткой, вследствие ее гибели, заболевании, бесплодия;
содержание нескольких яиц в одной ячейке при недо-
статке ячеек в гнезде, заболевании матки или одрутневе-
нии семьи (в последнем случае — большое количество
трутневого расплода);
расплод пестрый, нет сплошного засева — наблюдают
на старых непросвечивающихся сотах или при болезнях
расплода. Гибель незапечатанного расплода, гнилостная
масса с неприятным запахом, при выделении образует
короткие, легко рвущиеся нити, высохшие личинки легко
удаляются — при европейском гнильце; гибель закрыто-
го расплода, гнилостная масса при извлечении тянется
в виде длинной нити, высохшие личинки прилипают к
стенкам ячейки — при американском гнильце; гнилост-
ная масса от погибших личинок и предкуколок в запеча-
танных ячейках с признаками, характерными для евро-
пейского гнильца, — парагнилец; погибшие личинки в
возрасте 5—6 дн. в виде мешочков, высохшие трупы ли-
чинок полулунной формы, легко выделяются из ячей-
ки— при мешотчатом расплоде; личинки мумифицирова-
ны: твердые в виде кусочков мела — при аскосферозе,
личинки твердые различного цвета — при аспергиллезе;
на внешне нормальном печатном расплоде или расплоде
рабочих пчел при вскрытии находят коричневых клещей,
осенью часть личинок загнивает в ячейках с признака-
ми европейского гнильца — при варроозе, тропилелап-
созе; некоторые личинки как бы посыпаны пылью из-за
массы белых шаровидных клещей, часть их погибает с
признаками европейского гнильца, расположены чаще
по краям рамок — при пиематозе; сплошной участок по-
гибшего открытого и печатного расплода с незапавшими
крышечками обычно по краю рамок — при застуженном
расплоде; среди массы пустых ячеек встречаются ячей-
ки с незапечатанными или продырявленными крышечка-
ми, личинки легко выделяются — при генетическом пест-
ром расплоде; ячейки с печатным расплодом частично
или полностью вскрыты, внутри их погибшие уродливые
198
куколки, большое количество погибших и погибающих
молодых пчел — при египтовирозе;
печатный расплод компактный, но по поверхности сто
виден извитой след от вскрытых ячеек, внутри их нор-
мально развитые куколки, или над предкуколками ячей-
ки оттянуты в виде трубок (трубчатый расплод) —на-
рушение, вызванное восковой молью;
пчелы из ячеек печатного расплода не выходят, при
вскрытии ячеек погибшие сформировавшиеся пчелы на-
правлены головой к середине сота — нарушение вызвано
центрифугированием сота с расплодом при откачке меда.
Предварительно поставленный в условиях пасеки ди-
агноз обязательно следует подкрепить лабораторными
исследованиями. Успех этих исследований зависит от
правильности отбора, пересылки проб, достоверности и
полноты сообщенных признаков заболевания в сопрово-
дительном документе, возможностей лаборатории. В по-
следней ставят диагноз на выявленного возбудителя или
наличие опасных химических, биологических (падь) ве-
ществ. Однако обнаружение возбудителя не всегда сви-
детельствует о заболевании, при многих болезнях.(евро-
пейском гнильце с возбудителями Вас. alvei и Enterococ-
cus faecalis, выделенными не из явно пораженных личи-
нок; колибактериозе, сальмонеллезе, гафниозе, амеби-
азе и др.) возможно носительство. Диагноз на эти болез-
ни ставят только по эпизоотологическим данным, резуль-
татам клинического обследования и лабораторного вы-
деления возбудителя или учитывают степень поражения
пчел в пробе (нозематоз, варрооз). Точность диагноза
возрастает при повторных исследованиях, однако сле-
дует име.ть в виду частое наличие смешанных заболева-
ний в семьях пчел. Поэтому возможны определенные
расхождения диагноза при исследовании различных проб.
Лабораторно-практическое занятие 7
Цель занятия. Обследовать семьи на наличие неза-
разных болезней, выяснить причины их возникновения
и провести оздоровительные мероприятия. Исследовать
мед на наличие пади. Изучить инструкции, наставления,
рекомендации по борьбе с болезнями пчел, провести пас-
портизацию пасек, составить план оздоровительных ме-
роприятий, заявку на приобретение медикаментов, дез-
средств и пр.
199
36. Компаратор.
Оборудование и материалы:
пробирки, пипетки измеритель-
ные, штатив для пробирок, спир-
товка, пипетки глазные, стеклян-
ные палочки, компаратор (рис. 36)
с эталоном цветочного меда; мед,
известковая вода (1 часть свеже-
гашеной или негашеной извести+
+ 1 часть воды, раствор выдер-
живают не менее 12 ч), спирт-рек-
тификат (96 %), 25 %-ный раст-
вор уксуснокислого свинца, ди-
стиллированная вода.
Место проведения заня-
тия. Лабораторный класс,
пасека.
Методика проведения за-
нятия. Падь в меде можно
определить следующими ре-
акциями.
Известковая про-
ба-— в пробирку помещают равное количество меда и
воды, тщательно размешивают, 1 мл раствора переносят
в другую пробирку и добавляют 2 мл известковой воды,
смешивают и нагревают до кипения. При наличии пади
выпадает хлопьевидный осадок, величина последнего
указывает на количество пади.
Спиртовая реакция — к 1 мл водного раствора
меда добавляют 10 мл спирта и взбалтывают. При нали-
чии пади раствор мутнеет.
Уксусно-св и нцовая проба — к 0,2 мл меда
(закристаллизовавшийся мед нагревают в водяной бане
до жидкого состояния) приливают 2,4 мл воды, переме-
шивают, добавляют 2 капли 25 %-кого раствора уксусно-
кислого свинца. Пробирку ставят в компаратор и добав-
ляют по каплям воду до выравнивания мутности с эта-
лонным цветочным медом. Если добавлено менее 10 ка-
пель — мед цветочный, более — падевый.
Контрольные вопросы
1. Как предупредить отравления пчелиных семей пестицидами?
2. Какие болезни вызывает нарушение кормления пчел? Как их
устранить?
3. Назовите болезни, вызываемые нарушением содержания
пчел. Способы их устранения.
4. Какие болезни вызывает нарушение разведения пчел? Спо-
собы их устранения?
200
5. Что такое падевый токсикоз? _
6. Какие существуют способы определения пади в меде?
7. Какая связь существует между незаразными и заразными
болезнями?
8. В чем различия постановки диагноза на заразные и неза-
разные болезни?
СМЕШАННЫЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ
При исследовании каждой отдельно взятой пчелы или
различных пчел из одной семьи можно .обнаружить не-
сколько возбудителей или выявить несколько факторов,
приводящих к патологическому состоянию. Возникает
сложная система, в которой, с одной стороны, причин-
ные агенты (возбудители) взаимодействуют между собой
и, с другой — они влияют на хозяина (пчелу). Характер
взаимодействия возбудителей между собой может про-
являться: в усилении действия того или иного агента
или обоих сразу (синергизм), ослаблении или нейтрали-
зации действия (антагонизм), отсутствии влияния друг
на друга (индифферентность).
Смешанные болезни появляются как результат не-
своевременной диагностики, заноса новых возбудителей
из неблагополучных семей пчел окружающих пасек, от-
сутствия систематической дезинфекции и нарушения са-
нитарных норм ухода за пчелами, ослабления организ-
ма пчел в результате первичного заболевания, а также
нарушений в кормлении, содержании, неправильного ис-
пользования лечебных средств.
Общая особенность смешанных болезней — тяжесть
течения, частый неблагоприятный исход, трудности в по-
становке диагноза и выбора мер борьбы. Смешанные
болезни сравнительно слабо изучены. Из первичных бо-
лезней наиболее часто встречаются: нозематоз, варрооз,
вирозы, химический токсикоз, хотя в принципе любое
заболевание может являться толчком для последующих.
Этиологические данные. Нозематоз часто
протекает совместно с другими болезнями, он способст-
вует заражению пчел вирусом хронического паралича.
Вирионы, подобные Y-вирусу, обнаружены внутри спор
ноземы, на поверхности их найден нитевидный вирус
(возбудитель филаментовироза). Нитевидный вирус, Y-
вирус и вирус черных маточников установлены только
у пчел, пораженных ноземой. Вирус мешотчатого рас-
плода и Х-вирус не проявляют такой зависимости. Но-
201
зематоз ускоряет заражение и гибель пчел при скарм-
ливании возбудителей бактериальной природы (Н. alvei,
Вас. alvei, Ps. apisepticum). Часто отмечается смешанное
течение нозематоза о европейским и американским
гнильцами.
Поражение микроспоридией взрослых пчел снижает
их устойчивость к некоторым грибам, например аспер-
гиллам. Большой отход пчел вызывает совместное тече-
ние нозематоза и амебиаза. По данным Бейли, заражен-
ные обоими возбудителями пчелы содержат большое ко-
личество спор ноземы, хотя в наших исследованиях этого
не наблюдалось.
Зарегистрированы случаи смешанного течения нозе-
матоза с критидиозом и грегаринозом, поражения пчел
ноземой и клещом Acarapis woodi. Таким образом, по-
зема благодаря выбрасываемой из спор полярной труб-
ке, вероятно, может быть своеобразным инокулятором
некоторых вирусов, бактерий и грибов в организм взрос-
лых пчел. Она индифферентна по отношению к другим
вирусам, простейшим, клещам,' встречающимся у взрос-
лых пчел, и возбудителям бактериальной природы у рас-
плода. Вместе с тем не исключено опосредовательное
влияние нозематоза за счет снижения устойчивости пчел.
Одной из особенностей проявления варрооза, вызы-
вающего большую озабоченность пчеловодов, является
то, что в результате паразитирования клеща у пчел рез-
ко снижается устойчивость к заражению, кроме того,
самки паразита — активные переносчики возбудителей
инфекционной природы.
Вызываемое вирусом острого паралича заболевание
пчел обычно регистрировалось раньше как лаборатор-
ный феномен при введении в тело насекомого белка.
При варроозе пчел оно приняло самостоятельное значе-
ние. Вирус сравнительно легко передается при пересад-
ке клеща с больной пчелы на здоровую. Клещ также
способен передавать возбудителя филаментовироза (этот
вирус и вирус мешотчатого расплода выделены из орга-
низма клеща). В последние годы на неблагополучных по
варроозу пасеках отмечены случаи гибели семей пчел от
египтовироза — вирусного заболевания куколок и взрос-
лых пчел, характеризующегося их уродствами.
Значительно влияние клеща на бактериальную флору
гнезда пчел. Количество в семье пчел, имеющих микро-
организмы в гемолимфе (такие пчелы быстро погибают),
202
находится в прямой зависимости от числа клещей. Ис-
следование погибших личинок с признаками европей-
ского гнильца при варроозе показывает наличие в них
разнообразных видов банальной микрофлоры. Среди них
встречаются и условно-патогенные микробы, и не исклю-
чена возможность, что пассажирование таких микроор-
ганизмов внутри семей пчел будет приводить к отбору
отдельных, штаммов и возникновению в будущем новых
бактериальных болезней пчел, В экспериментальных ус-
ловиях клещ легко передает возбудителей гафниоза,
американского гнильца, колибактериоза, септицемии.
Эти микроорганизмы и некоторые возбудители европей-
ского гнильца легко выделяются из самок клещей, соб-
ранных в неблагополучных семьях пчел.
Хотя в условиях опытов не удается заразить гриба-
ми пчел с помощью клеща, на неблагополучных по вар-
роозу пасеках, вероятно, в силу снижения устойчивости
возможность возникновения аскосфероза увеличивается
в 2,5 раза.
Смешанная инвазия варрооза и нозематоза приводит
к увеличению гибели пчел. Количество спор ноземы у
пораженных обоими возбудителями пчел сокращается
из-за непродолжительности жизни хозяина. Сила и про-
дуктивность таких семей снижается на 15 % по сравне-
нию с поражением только клещом. При одновременном
поражении семей пчел клещами тропилелаис и варроа
болезнь протекает более тяжело, чем при одной инвазии.
Клещ тропилелапс в силу большей скорости развития со
временем вытесняет варроа из таких семей.
Вирозы, очевидно, имеют очень широкое распростра-
нение, однако еще недостаточно изучены. При введении
в гемолимфу пчел смеси Y-вируса и вируса мешотчатого
расплода отмечена гибель пчел через несколько дней, что
не регистрируется при инокуляции каждого вируса по
отдельности (синергизм). В противоположность этому
вирус острого паралича не размножается вместе с виру-
сом черных маточников и мешотчатого расплода (анта-
гонизм). Возбудитель филаментовироза обнаруживается
самостоятельно и совместно с вирусами острого парали-
ча, черных маточников, мешотчатого расплода. Одно-
временное поражение пчел хроническим параличом и
X- или Y-вирусом приводит к изменению признаков бо-
лезни, характерных для первого заболевания. Часты со-
четания вирусов хронического и острого паралича или
203
иридосценсвируса и вируса Кашмир в одной пчеле.
Только у пораженных хроническим параличом пчел на-
ходят вирус-сателлит, развитие которого зависит от пер-
вого.
Вирусы часто находят совместно с микоплазмами и
бактериями. В гемолимфе больных спироплазмозом пчел,
помимо спироплазм, можно обнаружить размножающий-
ся в их организме вирус (фаг). Нередки сочетания одно-
го или нескольких вирусов с различными патогенными
для взрослых пчел бактериями. В естественных и экспе-
риментальных условиях отмечается одновременное по-
ражение личинок возбудителями европейского гнильца
(Вас. alvei, Enter, faecalis, Вас. laterosporus) и мешот-
чатого расплода. При смешанном течении наблюдают из-
менения в тканях, характерные для обоих заболеваний.
Отмечены случаи интенсивного развития нозематоза в
июне в ослабленных хроническим параличом семьях пчел.
При химическом токсикозе особенно часто опасность
представляют субтоксические дозы пестицидов и про-
мышленных выбросов, находящихся в меде и перге. На-
копление их в организме пчел приводит к изменению
обмена веществ, что отражается на устойчивости к за-
ражению и проявлении заболеваний. Опасные примеси
в корме вызывают изменение перитрофической мембра-
ны кишечника пчел, в результате чего развиваются но-
зематоз и, вероятно, многие бактериальные болезни
взрослых пчел в период зимовки. В активный период
жизнедеятельности пчел обнаруживается прямая связь
химического токсикоза с европейским гнильцом.
Клинические признаки. Признаки смешанных
поражений обычно содержат в себе набор изменений,
характерных для той или иной болезни. Они не всегда
четко выражены, иногда атипичны. При одновременном
поражении пчел хроническим параличом и X- или Y-
вирусом характерных для хронического паралича черных
безволосых пчел не наблюдали.
Диагноз. Подозрения на смешанные заболевания
возникают при наличии смешанных признаков болезней
на пасеке или ее атипичном течении. Для выявления воз-
будителей требуются тщательные комплексные лабора-
торные исследования с подробным учетом анамнестиче-
ских, эпизоотологических данных и признаков пораже-
ния. Иногда в правильной постановке диагноза помога-
ют учет результатов использования тех или иных ле-
204
чебных средств, повторные лабораторные исследования.
Меры борьбы. Проводят их комплексно. Работу
начинают с устранения незаразных болезней пчел. Исп-
равляют нарушения в кормлении, содержании и разведе-
нии пчел; проводят санитарные мероприятия на пасеке.
При интенсивном неправильном применении лечебных
средств прекращают их использование, пчел переводят в
чистый улей, обеспечивают доброкачественным кормом.
Затем приступают к выполнению специфических меро-
приятий, направленных против той или иной инфекции.
При смешанном течении нозематоза с различными бак-
териозами пчел следует учитывать, что совместное приме-
нение террамицина с фумагиллином снижает количество
расплода в семьях, сочетание последнего с окситетрацик-
лином (200 мг на 1 семью) способствует вспышке ме-
шотчатого расплода. Размещение ульев с больными вар-
роозом пчелами на освещенных солнцем местах не долж-
но приводить к их перегреванию, способствующему воз-
никновению хронического паралича.
Контрольные вопросы
1. Какие смешанные заболевания часто встречаются на пасеках?
2. Расскажите об особенностях течения смешанных заболеваний.
3. Какие взаимоотношения могут быть между возбудителями
болезней?
4. Как поставить диагноз на смешанные заболевания?
5. Какие меры борьбы принимают на пасеках при смешанных
болезнях?
ВРЕДИТЕЛИ ПЧЕЛ
К вредителям (врагам) пчел относятся животные или
растительные организмы, повреждающие или уничтожа-
ющие пергу, мед, воск, деревянные части улья, наруша-
ющие кормовую базу и уничтожающие пчел (хищник).
Вредители наносят большой ущерб пчеловодству. Од-
нако для предотвращения его требуется дифференциро-
ванный подход. В одном случае необходимо стремиться
к максимальному уничтожению вредителя, в другом —
к предупреждению возможного вреда, не нанося урон
животному или растению. Упрощенческий подход к унич-
тожению любого вредителя неприемлем, так как ряд ви-
дов, вредных для пчел, в целом оказывают большую
пользу народному хозяйству, отдельные виды стали ма-
лочисленны и редки, а некоторые находятся на грани ис-
205
чезновения и занесены в Красную книгу. И в этой связи
необходимо помнить, что охрана животного и раститель-
ного мира является важной государственной задачей.
Вредители пчел на территории нашей страны оста-
ются еще недостаточно изученными. Основные сведения
получены в европейской части Союза, меньше данных
имеется по Закавказью, Средней Азии и Казахстану, и
крайне плохо изучены районы Западной, Восточной Си-
бири и Дальнего Востока. Численность и видовое раз-
нообразие вредителей не постоянны и подвержены зна-
чительным изменениям. В связи с этим необходимы де-
тальные, постоянные наблюдения за вредителями кон-
кретно на примерах определенных регионов страны, с тем
чтобы своевременно прогнозировать их появление и при-
нять меры к защите пасек.
Видовой состав вредителей пчел очень разнообразен,
и их можно встретить в различных группах животного
и растительного мира.
Клещи (Acarina). Широко представлены они в семьях
пчел, заносятся на тело пчел и других внедряющихся
в семью членистоногих и позвоночных животных с раз-
личных растений, почвы, предлетковой площадки или
с помощью ветра. Известно около 160 различных видов
клещей, относящихся к различным группам (акароид-
ные, хейлетиды, гамазовые, орибатиды, тетранихиды,
скутакариды, аноетиды). Для ряда видов клещей усло-
$вия обитания в улье оказы-
ваются неблагоприятными, и
они быстро погибают, дру-
гая часть этих членистоно-
гих, особенно некоторые ви-
ды акароидных, хейлетид и
гамазовых клещей, успешно
развиваются в семьях пчел,
чаще в мусоре на дне улья.
Здесь можно обнаружить
клещей практически в тече-
ние всего года.
Распространенными ви-
дами являются акароидные
клещи: молочный и домо-
вой (Carpoglyphus lactis и
37. Самка молочного клеща Glycyphagus domesticus
(Захваткин, 1941). (рис. 37, 38), которые ветре-
206
38. Домовый клещ:
а — самец с дорсальной стороны; б — самка с вентральной стороны; в — ги-
попус в протонимфальной оболочке с дорсальной стороны (Хьюз, 1961).
чаются почти в каждой семье. Наиболее благоприятные
условия для размножения этих членистоногих в улье в
центральной зоне нашей страны отмечаются в мае—>
июне, когда на 1 м2 площади на дне улья находят до
200 тыс. экз. их в различных стадиях развития, не счи-
тая яиц. Второй менее значительный пик наблюдается
в октябре.
Самка молочного клеща в оптимальных условиях
(температура 25 °C, относительная влажность 85%) от-
кладывает 278 яиц и живет до 29 дн. Развитие клеща
продолжается около 9 дн., при 0—3°С эти членистоногие
живут до 97 дн., при относительно высокой влажности
(70—90 %) без корма остаются жизнеспособными около
месяца. Клещ обычно встречается в молочных продук-
тах, сухих фруктах.
Оптимальные условия для развития домового клеща:
температура 23—25 °C и относительная влажность 80—
90 % • При 20,6 °C самка в течение жизни откладывает
135 яиц, максимум — 298. Развивается клещ за 22 дня.
Распространен клещ повсеместно,' находят его на
цветах, в пшенице, сене, табаке, сахаре, сыре, в гнез-
дах птиц и амбарных сметках. Поселяясь в семьях пчел,
питается пергой, медом, трупами пчел и органическими
остатками, проникает в ячейки сот, в мед.
При интенсивном размножении в перговых сотах, осо-
бенно при хранении их вне семьи, клещи разрушают пер-
гу, которая становится крошковидной золотисто-корич-
207
левой массой, легко высыпающейся из ячеек. Поверх-
ность сота, рамки, дно емкости для хранения сотов обиль-
но покрыто порошковидным налетом. Поврежденная перга
теряет свои питательные свойства и обычно не потреб-
ляется пчелами. Мед и перга, загрязненные клещами или
продуктами их жизнедеятельности, могут быть опасны
для людей. Некоторые виды этих членистоногих при
вдыхании их с пылью могут вызывать у человека астму
и аллергию (Dermatophagoides spp.), приводить к пора-
жению кожи (см. пиемотоз), служить причиной подост-
рых и хронических бронхитов и бронхопневмоний, яв-
ляться переносчиками возбудителей опасных инфекцион-
ных заболеваний. Ряд видов клещей, встречающихся в
акарофауне улья, относятся к опасным вредителям рас-
тений и продовольственных запасов.
Следует учитывать разнообразие клещей при поста-
новке диагноза на арахнозы пчел. Меры борьбы в ос-
новном сводятся к поддержанию чистоты в ульях, на
пасеке и содержанию семей в сухих непромерзающих
зимовниках. Весь весенний подмор сжигают. При выво-
зе пасек на кочевку (или постановке ульев в теплицы) и
перед возвращением с нее тщательно очищают дно
ульев. Перговые соты хранят в парах уксусной кислоты
(см. нозематоз).
Сольпуги (Solifugae), или фаланги. Своеобразные
членистоногие размером от 10—15 до 50—70 мм, буро-
желтого, песчано-желтого, телесного или темного цвета.
Тело обильно покрыто волосками и щетинками. Голо-
вогрудь разделена на два отдела. Брюшко крупное, ве-
ретеновидное, состоит из 10 сегментов. Ночные хищни-
ки, некоторые виды активны днем. Отмечено нападение
на семьи пчел закаспийской сольпуги в Казахстане.
Проникшая ночью через леток сольпута оставляет на
дне улья большое количество хитиновых покровов своих
жертв, не может выйти из улья из-за сильно раздувше-
гося брюшка и погибает здесь от ужаления пчел утром.
Нападению чаще подвергаются семьи пчел, вывезенные
на медосбор при расположении ульев на земле. С целью
предупреждения урона от сольпуг пчел следует содер-
жать в ульях без щелей, располагать их на подставках,
сужать нли зарешечивать летковое отверстие вечером
при возвращении всех пчел в улей.
Пауки (Aranei). Активные хищники, питающиеся
только живой добычей. Известно более 20 000 видов пау-
208
ков, в том числе на террито-
рии СССР — около 1500 ви-
дов.
Фуражирующие медонос-
ные пчелы, шмели, мегахилы
могут стать жертвой пауков-
бокоходов (Misumena vatia)
(рис. 39). Эти пауки рас-
пространены по всей терри-
тории нашей страны, в Ев-
ропе и Северной Америке.
Тело плоское, передние две
пары ног заметно длиннее
задних. Окраска брюшка из-
менчивая и часто зависит от
39. Misumena vatia иа цвет-
ке (Вильчек, 1959).
цвета венчика цветка, на котором находится паук. Она
варьирует от белой или зеленоватой до ярко-желтой.
У белых экземпляров по бокам брюшка в передней час-
ти иногда бывают красные полосы. Длина тела самок
6,5—10,5 мм, самцов — 3—4,3 мм.
Пауки предпочитают белые и желтые цветки лютика,
купальницы европейской, борщевика сибирского. Ловчих
сетей не строят. Добычу подстерегают, притаившись на
цветках. Пищей являются различные пчелиные насеко-
мые. При нападении паук вонзает хелицеры в затылок
насекомого, вводит яд и высасывает жертву. В течение
часа один паук способен уничтожить до 4 пчел.
На цветках пчел ловят также пауки рода Thomisius,
Паук не плетет ловчих сетей, нападает на пчел, вдвое
превосходящих его по размеру. При попытках проникно-
вения пауков через легковое отверстие ульев пчелы ак-
тивно уничтожают их.
Медоносные пчелы нередко становятся добычей раз-
личных видов тенетных пауков. При тесном расположе-
нии ульев пауки натягивают сети между ними, в таких
случаях количество пчел, попадающих в ловчие сети,
значительно увеличивается.
В последние годы на территории европейских стран
широко распространился паук Argiope bruennichi. Голо-
вогрудь этих пауков широкая и плоская, светло-корич-
невая, с затемненной головной.областью, вдоль боков о
широкими темными полосами, выше покрыта белыми во-
лосками и у живых пауков кажется серебристой. Брюш-
ко длинное, сзади заостренное. Ноги коричневатые, с
14-381
209
черными кольцами и пятнами. Длина тела самки 11—
15,5 мм, самца — 5,5 мм.
Пауки заселяют солнечные открытые места с высо-
ким травянистым покровом. Ловчая сеть располагается
вертикально к земле на расстоянии 30 см от ее поверх-
ности. Сеть достигает диаметра до 30 см и более. В ус-
ловиях Средней Европы паук размножается с конца
августа до конца сентября. Широко распространен на
территории нашей страны от 52° северной широты до
южных границ. В лесах Дальнего Востока пауки из это-
го семейства ткут очень прочные ловчие сети диамет-
ром до 2 м.
В тенетах пауков-кругопрядов 10,5 % жертв состав-
ляют перепончатокрылые. В Азербайджане на пчел на-
падают 34 вида пауков. В тенетах Araneus diadematus
в день находили до 8 пчел, другой вид паука за 2 ч
уничтожал 7 пчел. На некоторых пасеках пауки-тенет-
ники в течение 10 дн. уничтожали около 7 млн пчел.
Вместе с тем пауки активно уничтожают различных вре-
дителей. На одном гектаре леса в Средней Европе в те-
чение летнего сезона они поедают до 200 кг насекомых,
из которых 40—45 %—вредители леса. По мнению Ланг-
строта, некоторые пауки могут быть использованы в во-
дохранилищах для борьбы с восковой молью.
Меры борьбы в основном сводятся к уничтожению
ловчих сетей на пасеках. Коконы пауков целесообразно
собирать и размещать в лесах. Мероприятия по преду-
преждению нападения пауков, не плетущих сетей, не
разработаны.
Многоножки (Myriopoda). Наземные членистоногие
с ясно обособленной головой и многочисленными одно-
образными сегментами тела, несущими конечности. Мно-
40. Стрекоза.
гочисленны на юге страны.
Эти членистоногие ведут ноч-
ной образ жизни и днем на-
ходятся под опавшей лист-
вой, в дуплах, под корой по-
гибших деревьев, в трещи-
нах стен жилых помещений
и т. д. Некоторые виды мно-
гоножек нападают на от-
крытый расплод перед его
запечатыванием и уничто-
жают личинок пчел.
210
Меры борьбы: пчел содержат в исправных ульях без
щелей, летковое отверстие на ночь сужают.
Стрекозы (Odonata). Наносят кратковременный, но
ощутимый вред пчеловодству в период массового появ*
ления. Пчел уничтожают коромысло большое (рис. 40),
коромысло синее, дозорщик и некоторые другие. Стре-
коза нападает сверху на летящую пчелу, схватывает ее
за спину и умерщвляет. Ими иногда уничтожаются до
трети пчел в семьях. Известен случай гибели 65 из 97
семей пасеки при нападении стрекоз. Нередко гибнут
матки, вылетающие для оплодотворения. Стрекозы часто
нападают на пчел во время посещения ими водоемов.
Меры борьбы: в период массового лета стрекоз пасе-
ку переводят в другое место, устанавливают поилки.
Богомолы (Mantoptera). В средней полосе и на юге
страны распространено около 20 видов этого насекомого.
За пчелами охотится богомол обыкновенный, который
ловит пчел на цветах и пожирает их. В день может съесть
до 16 пчел. Существенный вред пчеловодству богомолы
наносят при массовом размножении и отсутствии другой
добычи. Меры для борьбы не разработаны. Богомолы и
стрекозы уничтожают много вредных насекомых и от-
носятся к полезным видам.
Уховертки (Dermaptera). Небольшие или средних раз-
меров насекомые с удлиненным телом и двумя клеще-
видными нечленистыми придатками на конце брюшка
(рис. 41). Питаются листьями, корой, цветами, семена-
ми, плодами, запасами продуктов, отбросами и мелкими
насекомыми, активны ночью. Днем прячутся под кам-
нями, корой деревьев, в траве и различных щелях.
Пчелам наносят вред уховертки обыкновенная, ого-
родная и береговая. В ульях эти насекомые встречают-
ся чаще во второй половине июня, в июле. Поселяются
на потолке в утепляющем материале, в щелях улья, на
сотах, где вскрывают ячейки сот, едят мед, пергу, пов-
реждают и загрязняют соты.
Одна голодная уховертка способна съесть до 300 мг
меда. За 10 дн. 40 обыкновенных уховерток съедают
105,97 г меда, уховертки огородные — 71,84 г. Иногда
крупные виды этих насекомых нападают на больных
взрослых пчел и пораженный расплод, распространяют
возбудителей инфекционных и инвазионных заболева-
ний.
Меры- профилактики: содержат ульи на сухих
местах, свободных от травы, на ножки подставки под
14* 211
41. Уховертка:
/—2 — взрослые; 3 — яйцо; 4—7 личинки (Полтев, Нешатаева,
1977).
улья наносят густой смазочный материал. Утепляющий
материал должен быть сухим. При сильном нападении
уховерток меняют улей, утепляющий материал просу-
шивают. Используют ловушки в виде цветочного горш-
ка, заполненного сеном или соломой. Такие горшки пе-
ревертывают и вешают на небольшие колышки вокруг
ульев или раскладывают вокруг них ловушки, составлен-
ные из двух небольших досок, стянутых резинкой или
веревкой, между досками помещают кожуру от яблок,
раздавленные сливы или вишни. Раз в неделю ловушки
очищают или заменяют на новые.
Притворяшка-вор (Ptinus fur) —жук. Самка по внеш-
нему виду резко отличается от самца по размерам, фор-
ме, окраске тела. Цвет тела от темно-рыжего* до буро-
черного, на подкрыльях по две светлые перевязки. Вто-
212
рая пара крыльев не развита, самки не летают. Тело
шаровидное, размером 2,7—3,1 мм, с длинными и тон-
кими ногами, крупными и выпуклыми глазами и тон-
кими усиками. Самок притворяшек часто принимают
за пауков. Самцы длиной до 4,3 мм, тело удлиненное, ок-
раска однородная, от бурого до темно-рыжего цвета.
Усики длинные, вторая пара крыльев развита, самцы ле-
тают. Личинка кремового или белого цвета с коричневой
головой, покрыта волосками, форма тела дугообразная,
размер 5—5,5 мм. Куколка белая, очень маленькая, изог-
нута (рис. 42).
В зависимости от температуры притворяшка-вор жи-
вет от 11 до 113 дн. Оптимальная температура развития
18—23 °C. Зимуют жуки и их личинки. В центральной
части нашей страны в течение года выводится одно по-
коление. При температуре О °C яйца остаются жизнеспо-
собными 186 дн., личинки — 219, куколки (без кокона) —
49, взрослые жуки — 79 дн. Взрослые жуки при темпе-
ратуре— 15 °C погибают на 9-й день, яйца — на 9-й,
личинки — на 17-й, куколки — на 6-й день. При темпе-
ратуре 55°С взрослые жуки погибают через 1 мин,
яйца — через 8—9, личинки—через 5, куколки — через
7 мин.
Притворяшка-вор сравнительно малоактивен днем, но
весьма деятелен ночью. В ульях взрослые жуки и личин-
ки питаются трупами пчел, погибшим расплодом, пергой
и воском, разрушают соты, повреждают стенки улья и
42. Притворяшка-вор:
/ — самка; 2 — самец; 3 — личинка; 4 — куколка.
213
43. Ветчинный кожеед:
/ — жук; .2 — куколка; 3 — личинка.
утепляющий материал; на
складах поедают пергу в
хранящихся сотах, едят воск
и портят соты. Из личинок
жука выделен возбудитель
септицемии пчел. Личинок
и взрослых жуков находят
в старых сотах. Во всех слу-
чаях стенки и дно многих
ячеек сотов бывают покрыты
крошковидной массой, под
слоем которой видны отвер-
стия. При наружном осмот-
ре разрушения напоминают
ходы малой восковой моли,
однако они отличаются отсутствием нитей паутины и
испражнений. В ульях также встречаются притворяшка-
грабитель и красноногий притворяшка.
Ветчинный кожеед (Dermestes lardarius). Длина тела
7—8 мм. Переднеспинка черная, с редким серо-желтым
пушком, расположенным по кругу. Брюшко черного
цвета. Задний край каждого сегмента окаймлен рыжей
волосяной каемкой. Вершинная половина надкрыльев
черная, передняя часть ржаво-бурая, ограничена зуб-
чатой линией. На ржаво-буром фоне каждого надкрылья
имеются по три отчетливых черных пятнышка. Жуки име-
ют крылья, летают, живут до года.
Тело личинки цилиндрическое, покрыто волосками
различной величины, разбросанными пучками. Спина
бурого или красновато-черного цвета, брюшко — слабо-
желтого. Брюшко постепенно суживается к концу и
оканчивается двумя роговидными выростами. Личинки
быстро, передвигаются.
Куколки желтого цвета с коричневым оттенком, дли-
ной 8—9 мм. Последний сегмент брюшка имеет на спи-
не два шипа, соответствующих шипам личинок (рис. 43).
В сухой среде куколка остается в последней личиночной
шкурке.
Спаривание и яйцекладка начинаются весной при
температуре 16—18°С. В течение жизни самка отклады-
вает по 100—200 яиц, небольшими группами — на суб--
страт, которым питается. Зимует насекомое в стадии
куколки. При формировании взрослых насекомых в ку-
колке осенью они остаются в окружающих их оболочках
214
в состоянии покоя до весны. Взрослые жуки появляются
в улье весной. В нашей стране этот жук широко рас-
пространен и встречается в зернохранилищах, в местах
переработки зерна, кондитерских, колбасных и других
предприятиях, в домах, складах, птичниках, голубятнях.
Кожеед поедает макароны, залежалые просыпи любой
муки, зерна пшеницы, ржи; портит изделия из мяса, са-
ла, шкуры, волос, зоологические коллекции; личинки на-
падают на птенцов домашней птицы.
В сотохраннлищах жуки и личинки охотно поедают
пергу, повреждая при этом соты. В ульях они питаются
пергой, остатками коконов, мертвыми пчелами, выбро-
шенными куколками, мертвыми и живыми личинками
пчел и также разрушают соты.
Соты, пораженные кожеедом, отличаются от сот с вос-
ковой молью отсутствием паутины. Часто кожеед разру-
шает соты вместе с восковой молью. Этому способству-
ют одинаковые условия для размножения обоих вреди-
телей в улье. Личинки жука иногда уничтожают личинок
восковой моли, но это не служит существенным препят-
ствием к ее размножению в улье. Если семья заражена
американским гнильцом, в экскрементах жуков обнару-
живаются споры этого возбудителя. Жуки, переходя из
больных семей в здоровые, могут служить источником
возникновения инфекции. Среди вредителей пчел извест-
ны также кожеед пятнистый, кожеед шубный и другие
виды жуков.
Пестряк пчелиный (Trichodes apiarus). В неопрятно
содержащихся ульях пчел личинки жука наносят ощути-
мый вред — уничтожают личинок и куколок пчел. Над-
крылья жука красные, с темными перевязями и черной
вершиной, тело синевато-черное, покрытое густыми ко-
роткими волосками. Размер жука 10—16 мм. Встреча-
ется преимущественно на цветах зонтичных и сложно-
цветных растений, где охотится за насекомыми, на юге
и в центральных областях — в мае и июне, а на севере —
в июле. При температуре 28 °C самка в течение жизни
(22—29 дня) откладывает 200—263 яйца в трещины
гнезд одиночных и медоносных пчел. Больше поражают-
ся семьи пчел, помещенные в ульях, освещенных солн-
цем.
К яйцекладке способны как оплодотворенные, так и
неоплодотворенные самки жука. Яйца красновато-оран-
жевого цвета, размером 2,1X0,51 мм. Через 17—18 дн, из
215
44. Ктырь с убитой пчелой (Брюг-
гер, 1935).
них выходят личинки,они
живут 107—138 дн. надне
улья и питаются пыль-
цой, мертвыми и умираю-
щими пчелами. Проника-
ют в соты, разрушают их
и пожирают личинок пчел.
Одна личинка жука спо-
собна уничтожить от 18
до 53 личинок пчел. Ча-
сто, повреждая личинок,
заносят в ячейки возбу-
дителей грибковых забо-
леваний. Зимуют личинки
и куколки жука, цикл
развития может продол-
жаться 5 лет и более.
В гнездах пчел и ос развиваются также личинки пест-
ряка украшенного (Т. ornatus). Взрослые жуки держат-
ся на цветах и на них откладывают яйца. Вышедшие из
яиц личинки прикрепляются к осам или пчелам и попа-
дают в гнездо. Пищей их служат личинки хозяев.
Меры борьбы: необходимо на пасеке содержать
сильные семьи, поддерживать чистоту в улье и сотохра-
нилище.
Ктыри (Asilidae). Хищные крупные или средней ве-
личины мухи с хорошо развитыми глазами и вдавленны-
ми теменем и лбом, усики трехчлениковые, с концевой,
палочкой или без нее. Ротовой аппарат колюще-сосуще-
го типа. Слюна содержит яд для членистоногих и ве-
щества, растворяющие внутренности жертвы, которую
схватывают на лету сзади ногами, парализуют и выса-
сывают (рис. 44). Иногда охотятся около летков ульев.
Как враги пчел известны: украшенный ктырь, шершне-
видный, ляфрия рыжая, ляфрия горбатая, ляфрия огнен-
ная и др. Некоторые виды ктырей способны уничтожить
до 140 пчел в сутки.
Меры борьбы: не следует размещать пасеки в
местах массового выплода ктырей.
Складчатокрылые осы (Vespidae). Передние крылья
в состоянии покоя складываются вдоль продольной склад-
кой. Переднегрудь сзади вырезана, достигает основания
крыла. Опасность для пчел представляют шершни
(Vespa): обыкновенный, восточный и дальневосточный
216
45. Шершни:
l — обыкновенный; 2 — восточный.
(рис. 45). Насекомые нападают на пчел и уничтожают
их около летка, на водопое, в поле при сборе нектара, в
период интенсивного лёта, обычно во второй половине
лета, значительно ослабляя семьи пчел. Иногда из-за
нападения сокращается лет пчел на медоносы и они
переключаются на защиту гнезда.
В августе, сентябре на пасеке часто можно заметить
полистов, обыкновенных, средних, лесных, рыжых, не-
мецких ос (Vespula), которые проникают в улей и рас-
хищают мед, могут явиться переносчиками заболеваний
(рис. 46). Разграблению чаще подвергаются слабые
семьи пчел, в результате защиты гнезда многие пчелы
погибают, семьи слабеют. Иногда погибает до 2 % пче-
линых семей.
Оса-полист убивает взрослых пчел для выкармлива-
ния своих личинок. Массовое появление ос на пасеках
46, Складчатокрылые осы:
1— оса-полист и 2 — ее голова: 3 — оса обыкновенная и 4 — ее голова; S —
оса средняя и 6 — ее голова (Полтев, Нешатаева, 1977).
21Z
бывает в определенные годы и часто связано с отсут-
ствием доступных им насекомых в природе.
Профилактика. На пасеке устанавливают ло-
вушки (бутыль, до */з заполненная водой, куда добав-
ляют небольшое количество меда). Для борьбы с осами
рода Vespula предложен аттрактант (эфир-2,4-гексади-
энилбутират) в специальных ловушках в смеси с ин-
сектицидами или хемостерилянтами.
Роющие осы (Sphecidae). Стройные, голые или мало-
волосатые осы, которые в большинстве случаев гнездят-
ся в почве, самки роют норки для своих личинок и снаб-
жают их парализованными насекомыми или пауками.
Наибольшее значение для пчеловодства имеет филант
треугольниковый (филант пчелиный или пчелиный волк).
Осы распространены до широты Ленинграда, однако
чаще всего встречаются на. юге, особенно в районах
Средней Азии. Размер взрослого насекомого 12—16 мм,
окраска черно-желтая. Голова широкая, с сильными че-
люстями и рисунком на лбу в виде короны: у самцов
с тремя зубцами, у самки с двумя. Брюшко желтое, с
черными треугольниками по спинке, ноги желтые
(рис. 47). Наиболее активен в жаркие (20—25 °C и выше)
солнечные" дни с 10 до 18 ч. Самец питается нектаром
растений, выкапывает неглубокие норки. Нора самок
представляет длинный наклонный коридор, переходя-
щий в горизонтальный туннель (длина всего хода 0,3—
1 м) с 5—10 камерами (2,5x1,5 см) по бокам.
На медоносных пчел, реже — андрен и галикт напа-
дает самка, филанта, радиус ее охоты 1,5—2,5 км, иногда
до 5 км. Самки живут 25—40 дн., делают 1—3 гнезда,
в камеры которых кладут 1—6, реже 8 парализованных
пчел. В каждой камере на грудь принесенной пчелы
47. Филанты:
1 — самка филанта коронного и 2 — ее голова; 3-^ самка филаита треуголь*
пикового и 4— ее голова; 5 — самец филантЬ треу'гольникового.
218
самка филанта откладывает белое цилиндрическое яйцо
размером (4—5) X1 мм. Некоторые яйца неоплодотво-
ренные, из яиц через 3—4 дня выходит личинка.
Личинки в течение 2—5 дн. съедают пчел и плетут
блестящий темно-коричневый бутылеобразный кокон, в
котором продолжают развитие от 1,5 до 4 нед. Самцы
выходят на 4—10-й день раньше самок из камер, содер-
жащих 1—2 пчелы; самки развиваются в камерах с 3—
8 пчелами. В стадии куколки филант способен зимовать
8—10 мес.
В течение лета в Европе развиваются две генерации
филанта. Свои гнезда оса устраивает на оголенных от
растительности площадках в сухих легких, супесчаных,
подзолистых и реже суглинистых почвах, по склонам
оврагов, рвов, канав дорог. Часто возникают большие
колонии хищника.
При отлове фуражирующих пчел в поле и на пасеке
филант парализует их и, надавливая своими лапками
на брюшко, извлекает нектар и гемолимфу. Если гнездо
у самки филанта не готово, то она бросает пчелу. В пе-
риод массового лета филанта пчелиные семьи резко ос-
лабевают, часто прекращают работу.
Из других насекомых этого семейства необходимо
указать на паляруса золотистого, который также напа-
дает на пчел. Биологические особенности его схожи с
филантом, но он встречается реже.
Для борьбы с филантом запахивают почву и засева-
ют ее травами или обильно смачивают водой и покры-
вают соломой, листьями, хворостом, в норы филанта
заливают инсектициды. В период массового лета этих
насекомых в июле — августе целесообразно бывает уда-
лить пасеку из неблагополучной зоны.
Муравьи (Formicidae) —бескрылые насекомые
(крылья имеют самки в период спаривания и самцы, но
последние живут недолго). Брюшко стебельчатое, сте-
белек имеет одно или два кольца. Муравьи отмечаются
в семьях пчел почти на всех пасеках. Наиболее часто
встречается садовый или черный муравей, рыжий лесной,
темно-бурый лесной и другие виды. В некоторых случаях
при нападении на улей они способны разграбить запа-
сы меда в семье, вынося за сутки до 1 кг меда. Из сла-
бых семей уносят яйца пчел, поедают личинок. Иногда
нападают на ослабевших пчел у летков или в поле, се-
лятся в утеплениях ульев и могут заносить в семьи
219
различных возбудителей (американского и европейского
гнильцов). Однако в целом деятельность муравьев мож-
но считать положительной, так как они уничтожают мно-
гие виды вредных членистоногих, очищают пасеку от
трупов пчел.
С целью предупреждения нападения муравьев на
семьи пчел пасеку размещают в местах, не занятых их
гнездами. При наличии гнезд муравьев их осторожно со-
бирают и переносят на расстояние 100—150 м от пасеки.
Уничтожение муравьиных гнезд, особенно в лесной
местности, чревато большими неприятными последствия-
ми для окружающей растительности, а значит, и для
пчеловодства. Посадка томатов на пасеке обычно от-
пугивает муравьев. Репеллентными свойствами против
муравьев обладают также котовник кошачий, хризанте-
ма обычная, свежие листья черного ореха, метиловый
и этиловый спирты, бура, порошок серы, пищевая соль.
Для предупреждения нападения муравьев ульи ставят
на специальные подставки, ножки которых смазывают
нефтью, автолом, солидолом или другими минеральны-
ми маслами. При нападении .муравьев улей тщательно
очищается от них. Для уничтожения троп муравьев места
их проходов и размещения протирают спиртом. Основ-
ная мера профилактики нападения муравьев — содер-
жание сильных пчелиных семей на пасеке в добротных
ульях.
Чешуекрылые (Lepidoptera). К этой группе вредите-
лей относятся насекомые четырех различных семейств
отряда бабочек: огневки (Pyralidae), настоящие моли
(Tineidae), бражники, совки.
Большая восковая моль (Galleria mellonella). Пчели-
ная огневка, клочень, мотылица, шашень — распростра-
нены по всему земному шару, где есть пчелы, за исклю-
чением районов с суровым климатом или расположен-
ных на высоте свыше 1500—2000 м над уровнем моря.
Особенно сильно этот вредитель размножается в мест-
ностях с теплым климатом.
Самки длиной от 1,5 до 3,5 см (в среднем 13 мм).
Крылья и тело их покрыты чешуйками. Цвет передних
крыльев фиолетово-серый со светло-бурыми и темными
пятнами, задних — серый с темными штрихами по зад-
нему краю. Задний край передних крыльев ровный, а
задних — закругленный. В спокойном состоянии самка
держит крылья сложенными крышеобразно. Голова ее
48. Большая восковая моль:
1 — сот, пораженный молью; 2 — гусеница; 3 — кокон; 4 — куколка; 5 — ба-
бочка-самец; 6 — бабочка-самка; 7 — яйца.
удлинена и суживается вследствие направленных вперед
щупиков, имеет опушение и короткий хоботок, большие
фасетчатые глаза, подвижные тонкие усики, состоящие
из 60 члеников. Брюшко состоит из 10 члеников, при
надавливании из него выступает длинный яйцеклад
(рис. 48). Самцы меньше самок. Длина их тела в сред-
нем 11,3 мм. Передние крылья бурые, с глубокой полу-
лунной выемкой на заднем крае.
В спокойном состоянии самец держит крылья не столь
собранными, как у самки. Голова его опущена, круглая,
щипики менее развиты, чем у самки, и направлены квер-
ху. При надавливании на брюшке у самцов выступает
копулятивный орган. Самцы издают своеобразный рез-
кий ароматический запах, которым они привлекают са-
мок.
Размер и цвет бабочек довольно изменчивы. Послед-
ний зависит от качества и цвета сотов, которыми пита-
ется насекомое в стадии личинки. Ротовые органы и пи-
щеварительный аппарат у бабочек недоразвиты. Взрос-
лые насекомые не питаются и живут за счет питатель-
ных веществ, накопленных ими в стадии личинки. Одна-
ко у них наблюдается выделение жидких буровато-жел-
тых экскрементов. Отмечены некоторые биологические
различия у молей из различных мест. Продолжитель-
ность жизни самки 7—12 дн.-, самца — 10—26 дн.
Взрослые бабочки выходят из куколок рано утром
с 6 до 11 ч, но чаще вечером после 17 ч. Бабочки выбе-
гают из леткового отверстия и прикрепляются к гори-
зонтальным поверхностям спинкой книзу. Здесь или на
вертикальных поверхностях они расправляют крылья.
Через 20—30 мин бабочка складывает крылья и остает-
221
ся на месте 10—20 мин. Если бабочки вышли из куко-
лок утром или вечером, то они остаются в улье до на-
ступления темноты.
Для откладки яиц самки выбирают определенные, ча-
ще сильные семьи пчел. В одну пчелиную семью могут
входить для откладки яиц каждую ночь 7—12 молей.
Прилетевшая бабочка садится среди пчел, сторожащих
гнездо, и остается без движения 1—5 мин, затем быстро
проникает в улей, где располагается на соте выше ос-
новной массы пчел. Усики бабочки направлены слегка
вперед и слабо вибрируют, брюшко прижато к соту, и
яйцеклад двигается из стороны в сторону.
Бабочки перемещаются по соту, и, когда находят под-
ходящее место для откладки яиц, их усики начинают
усиленно вибрировать. Яйца откладываются отдельны-
ми партиями на стенке ячеек со свежей пыльцой, под
крышечки частично запечатанных ячеек с медом, реже
их находят в узких (0,2 мм) щелях рамок, стенок и на
дне улья или на его наружной поверхности, под крыш-
кой. Продолжительность откладки партии (54 шт.) яиц
2 мин, самки остаются на соте до 1 ч. За час до рассве-
та они покидают улей и летят на деревья, где ведут
малоподвижный образ жизни. Откладка яиц при тем-
пературе окружающего воздуха свыше 21 °C продолжа-
ется в течение 4 ночей. За свою жизнь самка отклады-
вает до 1850 яиц.
Яйца белого цвета, круглые или слегка овальные, ве-
личиной около 0,5X0,35 мм. Развитие личинки в яйце
продолжается 5—8 сут. Вышедшая из яйца личинка дли-
ной 1 мм, передняя часть ее тела значительно шире зад-
ней, голова светло-желтого цвета, несколько уплощена;
у личинки 8 ног и на заднем конце две щетинки.
В первые 10—20 мин личинка малоподвижна, про-
двигается сверху сота вниз. Через 15—20 мин становит-
ся более активной, питается в течение 10—30 мин медом
из открытых ячеек, иногда останавливается для питания
в ячейках с пыльцой. Через 2 ч личинка вновь потреб-
ляет мед 5—10 мин и затем начинает свою разрушитель-
ную работу, поедая воск. Перевариванию этого продукта
способствуют фермент липаза и бактериальная флора ее
кишечника.
В возрасте одного дня личинки способны к активной
миграции из пораженных семей пчел в другие семьи па-
секи, проходя до 25—50 м со скоростью на отдельных
£22
участках до 90 см/мин. Легкий поток воздуха от кормо-
вых источников обеспечивает направленность движения.
Продвижение личинок останавливается при сильной ро-
се, дожде и замедляется или прекращается при высокой
температуре.
На 2-й день личинки начинают строить туннель (ход),
чаще на краю сота в стенках открытых ячеек, содержа-
щих яйца и личинок пчел, или в открытых ячейках
с пергой, прилегающих к расплоду. Туннель направлен
к средостенью сота, и личинки обычно достигают его
на 4—8-й день.
Ходы личинок большой восковой моли имеют много
ответвлений, выстланы паутиной. Паутинная оболочка в
форме трубки защищает гусеницу от пчел. От среднего
хода гусеницы начинают выедать воск по сторонам,
вдоль донышек ячеек и делают выходы с обеих сторон
сота. В процессе работы они выбрасывают из проделан-
ного хода кусочки жеваного, измельченного воска и,
выставляя в боковые отверстия задний конец тела, вы-
деляют свои испражнения — сухие частички черного
цвета, похожие на порох.
При большом количестве личинок моли на соте они
способны поедать друг друга. Когда основа сота съедена,
личинки принимаются за стенки ячеек, начиная с наибо-
лее удаленных от света. Паутиновые нити некоторое вре-
мя поддерживают поврежденные ячейки. Однако такое
поражение сот наблюдается только в ослабленных семь-
ях или в полностью опустевшем пчелином гнезде, а так-
же при неправильном хранении сотов на складах, когда
их долго не осматривают.
Гусеницы моли предпочитают темные соты, которые
содержат большее количество остатков коконов, свет-
лым, недавно отстроенным. Взрослая гусеница беловато-
серого цвета, голова бурая. Тело ее длиной около 18 мм
состоит из 13 сегментов. Оно широкое в средней части
и слегка суживается к головному и заднему концам.
Одна личинка за свою жизнь съедает в среднем 1,246 г
сота. Теоретически три поколения пяти пар моли при
беспрепятственном размножении могут уничтожить око-
ло 500 кг суши, содержащей в себе 300 кг чистого воска.
После поедания воска гусеницы начинают питаться
испражнениями предыдущего поколения моли. Закончив
рост, гусеница подыскивает подходящее место в какой-
нибудь щели, трещине улья, в складках холстиков, в
223
расширенных полостях деревянных рамок, в местах про-
сверленных отверстий для проволок. Личинки расши-
ряют эту полость. Иногда они выгрызают неглубокое
ладьеобразное углубление в соте, пенопласте и окукли-
ваются. Наружный слой кокона плотный, внутренняя
оболочка мягкая и пушистая. На прядение его гусеница
затрачивает более 2 дн. Около верхушки кокона она де-
лает надрез, чтобы облегчить выход бабочке.
Куколка вначале соломенно-желтого, а в конце раз-
вития темно-бурого цвета. Длина куколки самки 16 мм,
самца — 14 мм. Куколки часто располагаются группа-
ми, коконы лежат в рядах плотно друг к другу.
Размеры бабочек, гусениц и куколок непостоянны
и зависят от питания личинок и температуры, при кото-
рой они развиваются. При скудном и неполноценном пи-
тании, а также при поражении паразитами, они ста-
новятся очень мелкими и не превосходят по размерам
малую восковую моль.
В течение года моль дает 3 поколения. При темпе-
ратуре 30—32 °C полный цикл развития длится 47 дн.
;(яйцо— 8 дн., личинки — 30, куколка — 9 дн.), в усло-
виях улья — чаще 5—8 нед (57—63 дн.). При темпера-
туре 20 °C развитие личинки затягивается, а при 10 °C
и ниже прекращается. Зимуют в улье только личинки
и иногда куколки в состоянии оцепенения. При мину-
совых температурах пчелиная огневка погибает во всех
стадиях.
В сильных семьях пчелы противостоят моли. Медонос-
ная пчела более устойчива к моли, чем средняя индий-
ская, в силу лучшей очистки гнезда и большей способ-
ности к отстройке сотов. Соты в семьях итальянских
пчел меньше повреждаются гусеницами. Рабочие пчелы
при очистке и ремонте ячеек захватывают молодых гу-
сениц, разрывают и съедают их. Иногда, чтобы извлечь
гусениц из ходов, пчелы выгрызают часть пораженного
сота.
Гусениц моли более старших возрастов пчелы уби-
вают и выбрасывают из улья. Однако такая реакция
отмечается не во всех семьях пчел. Куколок моли в по-
лостях рамок пчелы закрывают прополисом. На вышед-
ших из куколок бабочек пчелы не реагируют, в то же
время внедряющихся в гнездо взрослых молей пчелы
хватают за ноги, крылья и не пропускают в улей. Защи-
та гнезда у пчел прекращается через 2 ч после наступ-,
224
ления темноты. На внедрившихся в это время молей
пчелы не обращают внимания, но если их возбудить, по-
стукивая по улью, то они быстро убивают вошедших
бабочек.
Одна гусеница моли может повреждать 500 ячеек и
более. Проходя в средостении сота и по донышкам яче-
ек, гусеницы слегка приподнимают личинок и куколок.
Такой приподнятый расплод пчелы запечатывают не пол-
ностью, а запечатанных куколок распечатывают, остав-
ляя середину ячейки открытой, при этом край недопе-
чатанной крышечки вокруг отверстия они утолщают и
надстраивают в виде оттянутого кверху ободка или во-
ротничка. Возникает так называемый неприкрытый, или
горбатый, трубчатый расплод. Белые или темно-синие
головки незапечатанных куколок хорошо видны на соте.
Они образуют более или менее правильные ряды по ходу
прошедшей гусеницы.
У незапечатанных пчелиных куколок гусеницы моли
иногда повреждают ножки и крылья. В жарком климате
часто одна личинка моли съедает голову и грудь у 11 ку-
колок пчел. Иногда брюшко формирующейся пчелы оп-
летается паутиной, которую она неспособна порвать
при выходе из ячейки.
Восковая моль причиняет вред также своими выде-
лениями, фекальные шарики, попавшие на дно ячеек
в результате присутствия в них, вероятно, ферментов,
нарушают конечную линьку пчел непосредственно пе-
ред их выходом. Воздух в сильно пораженном молью
улье делается неприятным, и пчелы покидают его. Не-
редко от восковой моли отмечают гибель семей пчел или
их сильное ослабление. В США восковая моль причи-
няет ущерб на сумму 4—4,5 млн. долл., в штате Фло-
рида от этого вредителя потери достигают 1 млн. долл.,
а от американского гнильца — 0,3—0,4 млн. В Болгарии
восковая моль ежегодно разрушает 30 т воскового сырья.
Малая восковая моль (Achroea grisella). Распрост-
ранена также широко, но встречается реже. Длина са-
мок в среднем 11,3 мм, размах крыльев — 23,. длина сам-
цов— 9, размах их крыльев — 17,7 мм. Передние крылья
узкие, задние короче и шире передних, в состоянии по-
коя сложены крышеобразно. Окраска варьирует от тем-
ного пепельно-серого цвета до бледного желтовато-серо-
го. Голова опущена. На лбу заметно пятно из коротких
желтых волосков. Ротовые органы недоразвиты — бабоч-
15—381
225
ки не питаются. Количество самцов и самок приблизи-
тельно одинаковое.
Самка моли откладывает яйца в щели улья, иногда
в ячейки сотов через несколько часов после спарива-
ния. Количество отложенных яиц может быть 14—460,
чаще 250—300 шт., цвет их беловато-желтый, форма круг-
лая или овальная, размер — около 0,35—0,2 мм. Из яйца
выходит белая личинка длиной 0,5 мм со светло-корич-
невой головой. Личинка цилиндрической формы, без су-
жений, проходит 5 стадий развития, взрослая нормально
развитая личинка достигает 16 мм длины и 22 мм ши-
рины. Она вьет белый шелковистый кокон. Последний
расположен одиночно в углу улья или на полу. Длина
куколки 9—12 мм. Полный цикл развития 60—120 дн.
Температурный оптимум развития 28—30 °C, ниже 16
и выше 35 °C яйца погибают. Ниже 20 °C личинки не
окукливаются и впадают в состояние оцепенения, выше
35 °C быстро погибают. В ульях зимуют только личинки.
Характер питания гусениц малой моли тот же, что и
у гусениц большой моли, но они могут хорошо разви-
ваться, питаясь .только пергой. Одна взрослая гусеница
съедает ежедневно 0,00752 г сота, в пять раз меньше,
чем одна гусеница большой восковой моли. Личинки
малой восковой моли средостения не повреждают, они
проделывают ходы в ячейках на одной из сторон сота.
Ходы покрыты крупинками воска и испражнений и выст-
ланы паутиной. Проникнув в ячейки, гусеницы могут
оплетать паутиной куколок пчел. Крышечки над пов-
режденным расплодом пчелы не допечатывают, вокруг
оставшегося отверстия края утолщены и надстроены
в виде ободка (трубчатый расплод).
Определить присутствие моли в пчелином гнезде
просто. Для этого над листом бумаги или холстиком
держат рамку, освобожденную от пчел, и стамеской уда-
ряют несколько раз по верхней планке. Потревоженные
гусеницы выскакивают из своих ходов и падают на под-
стилку. Повторяя этот прием несколько раз, можно осво-
бодить соты от большого количества гусениц.
Естественные враги восковой моли в улье — многие
членистоногие. Сюда относятся сами пчелы, которые ак-
тивно уничтожают их, ряд наездников, личинки жуков
(ветчинного кожееда), сеноеды, книжный скорпион, ухо-
вертки, муравьи, микробы, микроспоридии и вирусы.
Из семейства огневок большой ущерб могут также
226
49. Бабочки:
I — мертвая голова; 2 — совка-гамма.
наносить южная амбарная, мельничная, сухофруктовая,
какаовая, осиновая огневки, гусеницы которых питаются
пергой и разрушают ее. Разрушают воск платяная, ме-
бельная, шубная моли, как расхититель меда известна
подлежащая охране бабочка мертвая голова (рис. 49).
В ульях часто зимует американская белая бабочка=-
карантинный вид, вредитель плодовых деревьев.
Меры борьбы. Против всех видов молей и огне-,
вок на пасеках и в сотохранилищах мероприятия более
или менее одинаковые, но проводить их надо системати-
чески. На пасеках содержат сильные семьи, поддержи-
вают чистоту в ульях и сотохранилищах; следят, чтобы
пчелы содержались в исправных ульях без щелей, еже-
годно меняют не менее 1/з старых сотов на вновь отстро-
енные. Поврежденные соты удаляют.
Не допускается содержание семьи пчел на чрез-
мерно расширенном гнезде. На пасеках оборудуют спе-
циальные помещения или отдельные шкафы (ящики)
для хранения сотов. Выбракованную сушь отправляют
на завод или перетапливают на воск. Соты с кормами
или без них хранят в герметически закрытых шкафах,
ящиках или ульях в парах уксусной кислоты (см. дез-
инфекция при нозематозе). При большом количестве
суши ее обрабатывают газовой смесью ОКБЭМ (окись
этилена и бромистый метил) в дозе 50 г/м3 под поли-
этиленовой пленкой или в специальных камерах. Дли-
тельность обработки 10 ч при температуре 15°C. Обра-
ботку проводят в противогазе. Используют также сер-
нистый газ, полученный при сжигании 50—200 г серы
на 1 м3 объема (газ тяжелее воздуха, следует соблюдать
противопожарные меры!). Соты выдерживают в поме-
15* 227
щении с газом в течение 2 сут, обработку повторяют
2—3 раза через 5—10 дн. Эффективно промораживание
сот без кормов, однако при этом следует предупреждать
заплесневение. Применяют и другие методы борьбы. Об-
работка сотов не гарантирует их от повторного внед-
рения молей.
Земноводные и пресмыкающиеся. Жабы часто се-
лятся под ульями и иногда схватывают прилетающих
пчел, садящихся на траву около улья. Одна большая
жаба способна отловить до 95 пчел, однако в среднем
за вечер съедает около 8 экз. этих насекомых. Извест-
ны также случаи нападения на пчел камышовой жабы.
Озерные и прудовые лягушки уничтожают пчел —
сборщиц воды на берегах водоемов. Травяная лягушка
может ловить пчел, возвращающихся в улей в сумер-
ках или перед дождем. В условиях Закавказья пчел ло-
вит малоазиатская лягушка. В течение 15 мин она
способна проглотить до 37 пчел. Известный урон могут
наносить также остромордая, закавказская лягушки и
краснобрюхая жерлянка.
Ящерицы уничтожают отдельных пчел. В их же-
лудке находят до 20 экз. этих насекомых. Ящерицы
часто проникают под крышки ульев, особенно в жар-
кое время дня в Средней Азии и Закавказье, иногда
выгрызают соты с медом на крайних рамках. Под
крышкой улья в Киргизии обнаружен азиатский голо-
глаз, известны случаи нападения на пчел зеленой и
прыткой ящериц, агам и стеллио.
С целью предупреждения возможного ущерба от
земноводных и пресмыкающихся необходимо: выкаши-
вать траву на территории пасек и особенно около ульев,
ульи располагать на высоте 25 см над уровнем земли,
пчел содержать в плотных ульях с хорошо подогнан-
ной крышкой. Пасеки оборудуют специальными поил-
ками для пчел.
Птицы. В оценке птиц нашей фауны как вредителей
пчел следует подходить с особой осторожностью, по-
скольку в питании большинства их пчелы — случайные
объекты. Роль птиц как защитников леса и сельскохо-
зяйственных угодий огромна. Чаще других с пчелами
связаны обладающие специализированным питанием
птицы (рис. 50) следующих семейств.
Ястребиные (Accipitridae)—из этого семейства
на пчел нападают обыкновенный (Pernis apivorus) и
228
хохлатый (Р. ptilorhynchus) осоеды. Поедают они пчел
в период лета, располагаясь по линии лета или около
пасек. Целесообразно не размещать пасеки вблизи
гнезд осоедов, чаще менять стоянки пасек. В последние
годы эти виды птиц стали сравнительно редкими, по-
этому они не могут наносить значительного ущерба, и
подлежат охране.
229
Щ'урко в ы е (Meropidae) — мелкие, со скворца пти-
цы с тонким слегка изогнутым клювом, длинными остры-
ми крыльями и длинным хвостом, средние перья которого
выдаются над остальными. В фауне СССР имеется два
вида щурок: золотистая (Merops apiaster) и зеленая
(М. superciliosus).
Птицы перелетные, распространены в южных районах
страны. Гнезда устраивают в земле (по обрывам), обра-
зуют колонии. Кормятся различными насекомыми.
Щурки в силу многочисленности их в некоторых мес-
тах представляют большую угрозу пчеловодству. В ра-
ционе отдельных птиц медоносные пчелы могут занимать
от 4 до 96%, в зоне пасек — 80—90 %. Эти птицы спо-
собны даже уничтожать пчел у летка улья в дождливую
погоду. Одна щурка в день съедает до 700—1000 пчел,
или 2—3 % семьи. За 2—3 мес пара щурок унич-
тожает до 20 тыс. пчел, стая в 100 щурок делает пасеку
в 50 семей пчел бездоходной. Наибольший ущерб пасе-
кам птицы наносят в июле — августе.
С целью предупреждения вреда не следует размещать
пасеки вблизи колоний птиц, необходимо чаще менять
стоянки пасек. Птиц отпугивают проигрыванием записи
голоса сокола-чеглока. Если отпугивание не помогает, то
следует обратиться в государственную охотничью инспек-
цию исполкома за получением разрешения на отстрел
щурок.
Сорокопутовые (Laniidae) — мелкие, редко сред-
него размера птицы с характерным крючкообразным
клювом, на конце надклювья имеют зубцеобразный вы-
ступ. Населяют заросли кустарников, опушки лесов,
поймы рек, культурный ландшафт на равнинах и в горах.
Густых посадок избегают. Имеют перелетные, кочующие
и стационарные виды. Питаются позвоночными, насе-
комыми и другими беспозвоночными. В нашей стране
насчитывается 10 видов этих птиц. Поселяясь около па-
сек, птицы поедают пчел. Отмечено нападение на пчел
серого, черноголового, красноголового сорокопутов и жу-
лана.
Летом 55 % корма серого сорокопута составляют насе-
комые, из них ’/4 — шмели, осенью птицы преимущественно
(94 %) питаются насекомыми и удельный вес шмелей
в их рационе возрастает до 41 %. Крупных насекомых
(матки шмелей и пчел) сорокопуты надевают на колюч-
ки (шипы) растений, мелких (рабочих пчел) съедают
230
при отлове. Профилактика, как при щурковых. В целом
это полезные птицы, уничтожающие вредителей.
Поздней осенью и зимой на прилетных досках ульев
часто можно видеть различных синиц и дятлов. Птицы
постукивают клювом по улью и съедают выходящих пчел.
Для предупреждения повреждения семей целесообразно
делать навесы над летком из капроновой или металли-
ческой сетки, в стороне пасеки подвешивают для синиц
кусочки сала, мяса, которыми птицы охотно питаются.
Синицы и дятлы — полезные для лесов и садов птицы.
Маток и трутней иногда ловят ласточки; рабочих пчел,
отягощенных ношей, склевывают мухоловка серая, обык-
новенный воробей, поползень обыкновенный, обыкновен-
ная горихвостка, горихвостка-чернушка, белая трясо-
гузка, желтоголовый королек, очень редко — славки,
скворцы и другие птицы. Вред от них практически ничто-
жен, и особых мер защиты не требуется.
Млекопитающие. Из этой группы животных как вре-
дители гнезд пчел известны ежи (могут уничтожать пчел,
не вошедших вечером в улей), медведи, куньи (куница,
хорь, барсук) но наибольший вред наносят представи-
тели следующих семейств.
Землеройковые (Soricidae)—очень мелкие
зверьки, напоминающие мышей, отличаются от них вы-
тянутой в хоботок мордой. Хвост относительно длинный,
ноги короткие. Цвет тела бурый или серовато-бурый
(рис. 51). В фауне СССР 17 видов, относящихся к 5 ро-
дам. В гнезда пчел проникают бурозубки (Sorex) и бе-
лозубки (Crocidura)'. Отличаются по цвету вершины зу-
бов, хвост представителей второго рода покрыт отдель-
ными волосками. Малая бурозубка (S. minutus) имеет
длину 40—59 мм, хвост составляет 50—70 % длины тела;
масса 3—5 г, хоботок очень вытянут, острый. У обыкно-
61. Бурозубка.
231
венной бурозубки (S.araneus) длина тела 60—90 мм,
хвост — 45—70 % длины тела, масса 8—15 г, хоботок
относительно тупой. У альпийской бурозубки (S. alpinus)
длина тела 69—77 мм, хвост — 90 % длины тела.
Землеройки часто проникают в ульи осенью. В те-
чение зимы, поднимаясь по сотам, они уничтожают пчел,
находящихся в клубе. Иногда приводят к гибели отдель-
ные пасеки.
Меры предупреждения: размещение пасек на
сухих местах, расчистка территории от бурелома; содер-
жание семей пчел в хорошо оборудованных ульях без ще-
лей, применение летковых заградителей. Землеройки в
силу своей прожорливости являются полезными зверь-
ками, уничтожающими большое количество вредителей.
Мышеобразные (Muridae)' — мелкие зверьки с
вытянутой и заостренной мордой, хвост покрыт редки-
ми волосками, через которые видны кольчатые чешуйки
(рис. 52). В фауне СССР известно 11 видов 5 родов.
Наиболее опасны вредители пчеловодства: рыжая крыса,
пасюк (Rattus norvegicus), длина тела 150—250 мм,
хвост короче тела, уши короткие, отогнутая вперед уш-
ная раковина не достигает глаза; черная крыса (R. rat-
tus), длина тела 130—190 мм, хвост длиннее тела, ото-
гнутая вперед ушная раковина достигает глаза; домовая
мышь (Mus. musculus), длина тела до ПО мм, уши круг-
лые и сравнительно небольшие, цвет серый, брюшко бо-
лее светлое; полевая мышь (Apodemus agrarius), длина
тела 100—125 мм, цвет рыжий или бурый, по спине тя-
нется черная полоса; лесная мышь (A. sylvaticus), дли-
на тела 70—115 мм, окраска рыжая, брюхо белое, на
груди часто желтое пятно; желтогорлая мышь (A. flavi-
colis), длина тела 112—135 мм, уши большие, окраска
спины и боков коричневато-охристая, яркая; брюшко
белое, основание волос серое, на груди охристое пятно;
мышь-малютка (Micromys minutus), длина тела 47—
52. Домовая мышь.
232
70 мм, хвост равен длине тела, цвет от буро-желтого до
желто-охристого, брюшко белое.
Хом яковые (Cricetidae)—мелкие или очень мел-
кие животные, подавляющее большинство которых —
вредители сельского и лесного хозяйства. Из многочис-
ленного семейства для пчеловодства имеют значение
лишь полевки: рыжая полевка (Clethryonomys glareolus),
длина тела 80—115 мм, хвост —более 50 % длины тела,
спина ржаво-коричневая, брюшко темно-серое, хвост
сверху темный, снизу белый, обыкновенная полевка
(Microtus arvalis), длина тела 90—140 мм, хвост —
30—40 % длины тела, окраска буроватая, хвост сверху
коричневый, снизу беловатый.
Мышеобразные и хомяковые наносят большой ущерб
пчеловодству. Зимой заселяют сотохранилища, зимовни-
ки, проникают в ульи. Они повреждают соты, беспокоят
пчел и поедают мертвых и живых пчел, мед, пергу, гры-
зут инвентарь. Мыши часто устраивают в ульях свои
гнезда, загрязняют их экскрементами и мочой, запах ко-
торой пчелы обычно не выносят и покидают такие ульи.
Пчелы умерщвляют мышей, они погибают от 2—3 ужа-
лений, но чаще — от 12—14. Однако при возбуждении
пчел мыши быстро прячутся за заставной доской или ухо-
дят в утеплительные подушки. Погибших в улье мышей
пчелы покрывают прополцсом. Семьи пчел, подвергшиеся
нападению, погибают или резко ослабевают; значитель-
ный урон наносят мыши хранящимся сотам.
Для предупреждения нападения мышей ульи должны
быть без щелей, с хорошо подогнанными частями, на
летки поставлены металлические заградители. Все от-
верстия в полах и стенах зимовников, сотохранилищ за-
делывают железом, цементом или глиной со стеклом
(10 частей цемента или глины и 1 часть битого стекла).
Для уничтожения грызунов используют естественных
-истребителей. До постановки пчел в зимовник в нем ос-
тавляют кошку, способную в течение суток уничтожить
до 25 мышей. За мышами охотятся ласка, горностай.
Применяют различные мышеловки, капканы, верши,
падающие над водой площадки с приманкой и пр. Крыс
и мышей уничтожают специальными приманками, сос-
тоящими из зерен различных крупяных культур, хлеб-
ных крошек, муки или комбикормов и 10—15 % меда или
выбракованных растертых сотов, содержащих мед и пер-
гу. К смеси добавляют один из ядов в следующей ком-
233
центрации: 0,5 %-ный зоокумарин — 2%, раствор нат-
риевой соли зоокумарина—1,5; ратиндан— 0,01—0,015;
крысид—1; фосфид цинка — 2—5 %. Приманки раскла-
дывают 2—3 дня порциями по 50—500 г. Борьба с гры-
зунами с помощью химических и микробиологических
средств проводится специалистами ветеринарно-санитар-
ных отрядов или санитарно-эпидемиологических стан-
ций.
Растения. Среди растительного мира вред пчелам на-
носят различные грибы (плесени). Из гнезд пчел вы-
делено более 130 видов грибов, многие из которых пов-
реждают запасы перги в ульях и сотохранилищах. Од-
ним из специфических грибов, вызывающих такие изме-
нения в перге, является Bettsia alvei, которого следует
отличать от возбудителя аскосфероза пчел. Особенно
часто плесени развиваются в ульях весной и преиму-
щественно в слабых семьях. Нередки случаи брожения и
закисания меда в результате развития дрожжей саха-
рамицет. Последнее наступает осенью при несвоевремен-
ном позднем скармливании пчелам сахарного сиропа.
В результате потребления такой перги и меда отмеча-
ются гибель семей пчел зимой или их плохое весеннее
развитие из-за повышенного отхода молодых пчел вслед-
ствие их большей чувствительности к грибам и продук-
там их обмена.
Меры профилактики основываются на снижении
влажности в ульях, хорошей их вентиляции, зимовке се-
мей пчел в сухом непромерзающем зимовнике. Осенью
необходимо своевременно скармливать сахарный сироп,
чтобы пчелы успели его переработать. Измененные соты
с недоброкачественными кормами удаляют, замачивают
2—3 дня в 2—4 %-ном растворе питьевой соды, тщатель-
но промывают в 2—3 сменах воды, просушивают и лишь
затем используют.
Опасны для пчел также плотоядные растения (ро-
сянка круглолистная и пузырчатка обыкновенная), за-
хватывающие специальными органами садящихся на
них насекомых. Пчелы погибают также при проникнове-
нии их в цветки львиного зева, кроса полевого; попада-
нии в пазухи листьев ворсянки сукновальной, заполнен-
ные водой; запутывании в длинных нитях цветков дей-
ции; склеивании крыльев, ножек и волосков тела при
посещении цветков синеголовника, ваточника сирийско-
го, бодяка огородного и подсолнечника.
234
Меры профилактики обычно не требуются, погибают
отдельные пчелы, что в целом не отражается на жизне-
деятельности семей. При массовой гибели возможны
дрессировка пчел на растения, не обладающие вред-
ными свойствами; белковые подкормки пчел при отсут-
ствии пыльценосов в природе; вывоз пасек в места, бо-
гатые нектаро- и пыльценосами.
Опосредовательные вредители. К этой группе относят
вредителей кормовых растений пчел: вирусы, бактерии,
грибы, разнообразные членистоногие, а также некоторые
позвоночные животные, снижающие продуктивность или
вызывающие гибель растений. Уничтожение вереска от-
мечается в результате массового размножения жука
Lochmaea saturalis. Наиболее массовыми вредителями
бутонов липы в Приморском крае являются слоник Се-
менова, желтый листогрыз, галлина. На величину паде-
вого взятка с хвойных деревьев влияют в некоторые го-
ды осы, уничтожающие тлей-падевыделителей. В усло-
виях Алтайского края на медосбор значительное влия-
ние в некоторые годы оказывают бабочки-боярышницы.
В период их массового лета в июне — июле они сплошь
покрывают цветки и затрудняют доступ к ним пчелам.
На фруктовые деревья оказывает влияние водяная по-
левка, поедающая корни растений.
Меры борьбы против этой группы вредителей долж-
ны большей частью разрабатываться совместно со служ-
бой защиты растений сельского и лесного хозяйства; це-
лесообразна кочевка пасек. Для предупреждения по-
вреждения водяной полевой в садах рекомендуется по-
садка полос топинамбура.
Лабораторно-практическое занятие 8
Цель занятия. Обследовать пасеку на наличие вреди-
телей пчел. Определить названия выявленных вредите-
лей. Составить план профилактических и оздоровитель-
ных мероприятий.
Оборудование и материалы: бинокулярные лупы, препароваль-
ные иглы, ванночки, предметные стекла, ножницы, пинцеты, скаль-
пели, заградительные решетки, средства борьбы с восковыми мо-
лями и мышами.
Место проведения занятия. Учебный класс, пасека.
Методика проведения занятия. Обследование ульев
и местности на наличие вредителей пчел. Вредители пчел
235
встречаются на пасеке в течение всего года, чаще их на-
ходят в активный период жизни пчел. Для обнаружения
осматривают семьи пчел, зимовник, сотохранилище, дру-
гие складские помещения, территорию пасеки и ее ок-
рестности. При подходе к улью вниманне"'обращают на
различных членистоногих, находящихся на его крышке
и стенках, летке, предлетковой площадке (различные
виды мух, шмели, осы, жуки, муравьи, уховертки, бого-
молы и т. д.), на подульевое пространство (жабы, ля-
гушки, ящерицы).
При вскрытии улья осматривают обратную сторону
крышки (пауки, гнезда ос, уховертки, муравьи и др.),
утепления ульев (скорпионы, клещи, щетинохвостики,
уховертки, муравьи, жуки и другие членистоногие, яще-
рицы, фекалии и гнезда мышей). Особенно обильный ма-
териал скапливается по углам и на дне улья (клещи,
лжескорпионы, личинки, куколки и имаго различных на-
секомых, иногда за прилетной доской — погибшие мыши,
землеройки).
Обращают внимание на состояние сотовых рамок
(места, выгрызенные мышами, выкрошивание перги при
размножении в ней клещей, паутина, коконы восковой
моли, при ударе по рамке выход личинок моли), осмат-
ривают взрослых пчел (белые, как бы покрытые пылью —
при массе акароидных клещей) и их расплод на нали-
чие изменений.
В зимовниках обращают внимание на подмор, нали-
чие фекалий мышей, их норы; в сотохранилищах — на
состояние сотов, перги и меда в них, следы мышей; на
территории пасеки и ее окрестностей — на виды птиц и их
поведение, наличие гнезд шершней (в дуплах деревьев,
на чердаках, под крышами строений) и нор ос в земле.
Обнаруженных вредителей (членистоногих), а также
подмор, крошку со дна ульев, сор с пола сотохранилища
собирают для более углубленного исследования под лу-
пой на наличие клещей, личинок, куколок и имаго
взрослых насекомых. Составляют план профилактиче-
ских и оздоровительных мероприятий с указанием кон-
кретных мер, сроков их выполнения, ответственных и
контролирующих лиц.
Проведенные сборы различных вредителей и хищни-
ков пчел после их определения (в его правильности
можно убедиться, послав материал специалистам) важ-
но сохранить в виде коллекций, которые используют в
последующем учебном процессе. Объектами коллекцио-
236
нирования могут быть различные повреждения ульев и
его частей, утеплительного материала, холстиков, рамок,
сотов; сборы различных членистоногих, земноводных,
пресмыкающихся, млекопитающих; фото- и киномате-
риалы. Важным и непременным условием всех коллекций
является этикетирование собранного материала с обя-
зательным указанием места, времени сбора и проводив-
шего сбор лица; правильное хранение и систематизация
материала по определенным признакам. Этикетки для
энтомологических коллекций рекомендуется делать оди-
накового размера (18X7 мм) на плотной гладкой бума-
ге. Этикетки пишут черной тушью тонким пером (кроме
этикеток, вкладываемых в пробирки или флаконы со
спиртовым материалом, которые заполняют простым
карандашом).
Контрольные вопросы
1. Назовите вредителей пчел.
2. Каких хищников пчел Вы знаете?
3. Каковы биология большой восковой моли (притворяшки-вора,
ветчинного кожееда), вред, приносимый ею, как бороться с
ней (с ними)?
4. Какой вред приносит филант, его биология и как бороться с
ним?
5. Какой вред приносят осы, стрекозы, муравьи, уховертки и как
защитить семью пчел от нападения их?
6. Какие птицы питаются пчелами?
7. Какова биология щурок, сорокопутов, пчелоедов и как избе-
жать урона, наносимого пасекам этими птицами?
8. Какие млекопитающие вредят пчелам? Каковы меры борьбы с
мышами?
9. Какие животные — вредители пчел подлежат охране.
237
СОДЕРЖАНИЕ
Введение............................................... 3
Основы микробиологии. А. К.. Лихотин 6
Морфология микроорганизмов.............................. 6
Вирусы (8). Бактериофаги (8). Риккетсии (8). Микоплазмы
(спироплазмы) (8). Бактерии (9). Грибы (12). Дрожжи (14).
Простейшие (14).
Лабораторно-практическое занятие 1 ......... . 14
Контрольные вопросы ................................... 22
Физиология микроорганизмов............................ 22
Питание (22). Дыхание (24). Ферменты (26). Пигментообра-
зование (27). Токсинообразование (27). Размножение и рост
(27). Наследственность и изменчивость (28). Использование
микроорганизмов в народном хозяйстве (29).
Лабораторно-практическое занятие 2 30
Контрольные вопросы.................................. 35
Микроорганизмы и внешняя среда........................ 36
Влияние факторов внешней среды (36). Антибиотики (38).
Бактериофагия (39). Микрофлора почвы (39), воды (39), воз-
духа (40), растений (40), насекомых (40), животных (41).
Круговорот веществ в природе (42).
Лабораторно-практическое занятие 3 . 42
Контрольные вопросы................................... 47
Инфекция и иммунитет.................................. 47
Инфекция (инвазия) (47). Инфекционный (инвазионный) про-
цесс (48). Иммунитет (50). Серологическая диагностика (55).
Лабораторно-практическое занятие 4.................... 55
Контрольные вопросы................................... 61
Эпизоотические мероприятия ............................ 61
Эпизоотический процесс (61). Источник возбудителя болез-
ня (61). Способы передачи возбудителей (62). Противоэпи-
зоотические мероприятия (63).
Контрольные вопросы ............... 69
Еолезни пчел ........................................... 69
Инфекционные болезни.................................... 70
Американский гнилец (70). Европейский гнилец (78). Порош-
ковидный расплод (85). Мешотчатый расплод (86). Паралич
пчел (90). Спироплазмоз (93). Гафниоз (95). Сальмонеллез
(98). Колибактериоз (99). Септицемия (101). Аскосфероз
(103). Аспергиллез (109). Меланоз (112).
Лабораторно-практическое занятие 5..................... 115
Контрольные вопросы ................................... 125
238
Инвазионные болезни. О. Ф. Гробов ......... . 125
Нозематоз (128). Амебиаз (134). Грегариноз (136). Крита-
диоз (138). Мермитидоз (139). Акарапидоз (141). Экзоака-
рапидоз (144). Пиемотоз (146). Варрооз (148). Тропилелап-
соз (156). Мелиттифиоз (158). Браулез (159). Мелеоз (163).
Мелиттобиоз (164). Мутиллоз (166). Коиопидозы (167). Се-
нотаиииоз (169).
Лабораторно-практическое занятие 6...................... 170
Контрольные вопросы..................................... 174
Незаразные болезни...................................... 175
Углеводная недостаточность (175). Белковая дистрофия (177).
Фитотоксикозы (180). Падевый токсикоз (183). Химический
токсикоз (184). Застуженный расплод (188). Запаривание
пчел (189), Стерильные яйца (190). Генетическая летальность
(190). Болезни маток и трутней (191). Незаразные болезни
как факторы, способствующие развитию инфекционных и ин-
вазионных болезней (193). Дифференциальная диагностика
(195).
Лабораторно-практическое занятие 7...................... 199
Контрольные вопросы..................................... 200
Смешанные заболевания.............................. . 201
Контрольные вопросы..................................... 205
Вредители пчел............................................205
Клещи (206). Сольпуги (208). Пауки (208). Многоножки (210).
Стрекозы (211). Богомолы (211). Уховертки (212). Притво-
ряшка-вор (212). Ветчинный кожеед (214). Пестряк пчели-
ный (215). Ктыри (216). Складчатокрылые осы (216). Рою-
щие осы (218). Муравьи (219). Чешуекрылые (220). Большая
восковая моль (220). Малая восковая моль (225). Земно-
водные и пресмыкающиеся (228). Птицы (228). Млекопитаю-
щие (231). Растения (234). Опосредовательные вредите-
тели (235).
Лабораторно-практическое занятие 8 .......................235
Контрольные вопросы..................................... 237
Учебное издание
Гробов Олег Федорович,
Лихотин Анатолий Константинович
БОЛЕЗНИ И ВРЕДИТЕЛИ ПЧЕЛ
Зав. редакцией В. Г. Федотов
Художественный редактор Н. А. Никонова
Технический редактор Е. В. Соломович
Корректор В. Н. Маркина
ИБ № 6381
Сдано в набор 07.03.89. Подписано к печати 03.05.89. Т-03550. Фор-
мат 84Х 1О8'/з2- Бумага тип. № 2, Гарнитура Литературная. Печать
высокая. Усл. печ. л, 12,6. Усл. кр.-отт. 12,81. Уч.-изд. л. 13,37,
Изд. № 290. Тираж 185 000 экз. Заказ № 381, Цена 40 коп.
Ордена Трудового Красного Знамени ВО «Агропромиздат», 107807,
ГСП-6, Москва, Б-78, ул. Садовая-Спасская, 18.
Набрано в областной типографии управления издательств, полигра-
фии и книжной торговли Ивановского облисполкома, 153628, г. Ива-
ново, ул. Типографская, 6.
Отпечатано с матриц во Владимирской типографии Государствен-
ного комитета СССР по печати, 600000, г, Владимир, Октябрьский
проспект, д. 7,
40 коп.